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    山茱萸水提物對UVB 所致HaCaT 細胞光老化模型的保護作用

    2023-06-13 08:26:00張逍遙楊筱舟張小鶯
    現(xiàn)代食品 2023年7期
    關(guān)鍵詞:山茱萸吸光存活率

    ◎ 張逍遙,楊筱舟,向 甜,張小鶯

    (陜西理工大學 生物科學與工程學院 秦巴生物資源與生態(tài)環(huán)境省部共建國家重點實驗室(培育),陜西 漢中 723000)

    由于中波紫外線(Ultraviolet B,UVB)的波長較短極易被皮膚吸收,因此是造成皮膚光老化的主要輻射類型[1]。山茱萸(Cornus officinalisSieb. et Zucc.)的成熟果肉富含酚類和環(huán)烯醚萜等多種活性成分[2]。本研究用UVB 照射HaCaT 細胞構(gòu)建光老化模型,通過檢測山茱萸水提物(Cornus officinalisWater Extract,COW)對經(jīng)UVB 照射HaCaT 細胞的抗氧化酶活力的影響,在細胞層面驗證COW 抗光老化的能力。

    1 材料與方法

    1.1 材料和儀器

    HaCaT 細胞、DMEM 培養(yǎng)基和胰蛋白酶,購自武漢尚恩生物科技公司;山茱萸果,購自陜西金慧方中藥科技公司;Cell Counting Kit-8(CCK-8)、谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-Px)、超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)、BCA 蛋白濃度和丙二醛(Malondialdehyde,MDA)試劑盒,均購自上海碧云天生物技術(shù)公司;葡萄糖、蘆丁和沒食子酸標準品,購自上海源葉生物科技公司。

    UVB 紫外燈,購自南京華強電子公司;紫外輻照檢測計和UVB-X0 探頭,購自深圳市林上科技公司。

    1.2 方法

    1.2.1 提取山茱萸水提物

    取100 g果肉加入500 mL水中,60 ℃超聲提取1 h,后20 000×g 離心20 min,收集上清,沉淀,重復上述步驟,二次離心后再重復上述步驟,合并3 次上清進行熱回流提取,經(jīng)冷凍干燥獲得COW[3]。

    1.2.2 COW 中總多糖、總多酚和總黃酮含量測定

    (1)采用苯酚-硫酸法測總多糖含量[4]。以葡萄糖標準品為對照建標準曲線,配制不同濃度梯度葡萄糖溶液為待測液(0 mg·mL-1、30 mg·mL-1、60 mg·mL-1、90 mg·mL-1和120 mg·mL-1),然后取1 mL 待測液、1 mL 6%苯酚和5 mL 濃H2SO4于25 ℃避光20 min 后30 ℃水浴25 min,測定490 nm 處吸光值;后用同樣方法測1 mg·mL-1COW 的吸光值。

    (2)采用Folin-酚比色法測總多酚含量[4]。以沒食子酸標準品為對照建標準曲線,配制不同濃度梯度的沒食子酸溶液為待測液(0 mg·mL-1、55.5 mg·mL-1、111.0 mg·mL-1、222.0 mg·mL-1和277.5 μg·mL-1),然后取100 μL 待測液與400 μL 水和500 μL Folin-酚混合避光2 min 后加入2 mL 7.5% Na2CO3溶液,于40 ℃孵育30 min,測定760 nm 處吸光值;后用同樣方法測5 mg·mL-1COW 的吸光值。

    (3)采用NaNO2-Al(NO3)3比色法測總黃酮含量[4]。以蘆丁標準品為對照建標準曲線,配制不同濃度梯度的蘆丁溶液為待測液(0 μg·mL-1、50 μg·mL-1、100 μg·mL-1、150 μg·mL-1和250 μg·mL-1),然后取100 μL 待測液與100 μL 5% NaNO2溶液混合,5 min后加入100 μL 10% Al(NO3)3溶液,5 min 后加入400 μL 4.3% NaOH 溶液室溫5 min,測定510 nm 處吸光值;后用同樣方法測5 mg·mL-1COW 的吸光值。

    1.2.3 COW 的抗氧化能力

    將COW 配制成1.00 mg·mL-1、0.50 mg·mL-1、0.25 mg·mL-1、0.10 mg·mL-1和0.05 mg·mL-1待測液。50 μL 待測液與150 μL 140 μg·mL-1DPPH·混合常溫避光30 min,測定517 nm 吸光度,以抗壞血酸(Vc)為陽性對照[4]。DPPH·清除率按公式(1)計算。

    將5 mL 7 mmol·L-1ABTS 溶 液 和43 μL 140 mmol·L-1K2S2O8溶液混合避光16 h,后用水稀釋至在734 nm 處的吸光值為0.700±0.020 時即配成ABTS 工作液。25 μL 待測液和150 μL ABTS 工作液混合測定734 nm 吸光度,以Vc 為陽性對照[4]。ABTS自由基清除率按公式(1)計算。

    式中:A1為待測液與自由基混合測定的吸光度值;A0為無水乙醇代替自由基溶液測定的吸光度值;A2為用純水代替待測樣品與自由基混合測定的吸光度值。

    1.2.4 COW 對HaCaT 細胞存活率的影響

    將HaCaT 細胞用DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)于37 ℃ 5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中,生長至對數(shù)期即可進行試驗[1]。細胞以1×104個/孔的濃度接種于96 孔板并培養(yǎng)24 h 后,將原有培養(yǎng)基按分組換為不同濃度COW 的DMEM培養(yǎng)基(10.0 mg·mL-1、8.0 mg·mL-1、6.5 mg·mL-1、5.0 mg·mL-1、4.0 mg·mL-1、3.5 mg·mL-1、3.0 mg·mL-1、2.5 mg·mL-1、2.0 mg·mL-1、1.5 mg·mL-1和1.0 mg·mL-1)培養(yǎng)24 h,使用CCK-8 試劑盒檢測細胞存活率。測定時,每孔中分別加入10 μL CCK-8,繼續(xù)培養(yǎng)2 h,測定450 nm 處吸光值。每組的存活率由該組吸光值除以空白組(0 mg·mL-1COW)吸光值得到。

    1.2.5 HaCaT 細胞光老化模型建立

    HaCaT 細胞接種于96 孔板培養(yǎng)24 h 后將原有培養(yǎng)基替換為PBS,不同劑量UVB 輻射(62.433 2 mJ·cm-2、123.634 9 mJ·cm-2、261.676 7 mJ·cm-2、389.581 7 mJ·cm-2和643.399 1 mJ·cm-2)后將培養(yǎng)基替換成DMEM 培養(yǎng)24 h,細胞存活率測定同1.2.4。在Excel 中用“Forecast”公式算出細胞存活率為50%時的UVB 輻照強度(IC50)用于建模[1]。

    1.2.6 COW 對UVB 誘導的光老化HaCaT 細胞存活率的影響

    實驗分為模型組(Model)、空白組(NC)、陽性對照組(PC)和COW 高、中和低劑量組(CH、CM和CL)。Model、NC和PC在DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng),CH、CM 和CL 在含有1.00 mg·mL-1、0.50 mg·mL-1和0.25 mg·mL-1COW 的DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng)。24 h 后將培養(yǎng)基替換為PBS,除NC 外其他組用354.128 mJ·cm-2的UVB 進行輻射,后將PBS 換為DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)4 h,細胞存活率測定同1.2.4。

    1.2.7 細胞氧化因子的檢測

    每孔加入100 μL IP 細胞裂解液,待裂解液將細胞充分裂解后,將細胞裂解液收集起來。之后利用GSHPx、SOD 和MDA 檢測試劑盒分別檢測其活力和含量。

    1.3 數(shù)據(jù)分析

    用Graphpad Prism 9、SPSS Statistics 26 和Excel 2016 軟件進行制圖和數(shù)據(jù)分析,實驗結(jié)果以平均值±標準差表示。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 COW 的總多糖、總多酚和總黃酮含量及其抗氧化能力

    總多糖、總多酚和總黃酮回歸方程及線性系數(shù)如表1所示。COW 中三者含量分別為(870.51±15.66)μg·mg-1、(37.89±1.25)μg·mg-1和(11.97±0.27)μg·mg-1。抗氧化結(jié)果表明COW 清除ABTS 自由基和DPPH 自由基的IC50為(50.19±0.22)mg Vc·g-1和(25.21±2.13)mg Vc·g-1。

    表1 總多糖、總多酚和總黃酮標準曲線表

    2.2 UVB 和COW 對HaCaT 細胞存活率的影響

    UVB 劑量越大細胞存活率越低(圖1a)。據(jù)“Foercast”函數(shù)算出UVB 對于細胞存活率的IC50值為(354.128 ± 71.93)mJ·cm-2,故選此強度構(gòu)建HaCaT 光老化模型。

    圖1 不同劑量UVB 和COW 的HaCaT 細胞存活率圖

    COW 濃度越高細胞存活率越低(圖1b)。COW濃度為1 mg·mL-1時細胞存活率為93.61%,可視為此濃度對細胞無毒性。故高、中和低劑量組COW 濃度設(shè)為1.00 mg·mL-1、0.50 mg·mL-1和0.25 mg·mL-1。

    2.3 COW 對UVB 所致光老化HaCaT 細胞存活率和氧化因子的影響

    CH 和CM 均能顯著提高經(jīng)UVB 照射后的細胞存活率,CL 組高于Model 組但并不顯著(圖2)。CH、CM 和CL 組細胞存活率隨COW 濃度減小而下降,且CH 顯著高于CL。

    圖2 不同分組的細胞存活率圖

    較NC,Model 細胞GSH-Px 和SOD 活性顯著降低,MDA 含量顯著高于NC,GSH-Px 和SOD 活性隨COW 濃度增加而提高,MDA 含量隨COW 濃度增加而減少(圖3)。

    圖3 不同分組的GSH-Px 和SOD 酶活性以及MDA 的含量圖

    3 討論

    生物體正常行使功能依賴于穩(wěn)定的氧化還原狀態(tài),此狀態(tài)的平衡靠機體內(nèi)部的氧化還原系統(tǒng)來維持[5]。過量UVB 輻射破壞皮膚氧化還原平衡,導致細胞死亡[1]。本研究發(fā)現(xiàn)COW 有抗氧化活性,故對COW 是否對UVB 所致HaCaT 光老化模型有保護作用進行研究。

    COW 能提高經(jīng)UVB 輻射后HaCaT 的SOD 和GSH-Px 活性,降低MDA 含量,從而增加細胞存活率(圖3)。黑枸杞水提物也可以提高UVB 照射后HaCaT 的存活率[1],但對比發(fā)現(xiàn)山茱萸對UVB 所致HaCaT 光老化模型保護能力更加突出。1 mg·mL-1的COW 可將HaCaT 細胞存活率提升20%,而1 mg·mL-1黑枸杞水提物僅能提升16%,這為COW 作為抗UVB輻射產(chǎn)品原料提供了理論依據(jù)。

    本研究只對COW 的抗UVB 功效進行初步了解,有必要對山茱萸不同組分和單體進行深入的研究,并從生化與細胞層面深入探究。

    4 結(jié)論

    通過超聲提取所獲得的COW 具有抗氧化能力,可明顯改善由UVB 輻射所致的HaCaT 細胞GSH-Px和SOD 酶活力下降以及MDA 含量升高,增強細胞的存活率,對HaCaT 光老化模型有保護作用。

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