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    一株產(chǎn)黃色素細(xì)菌的篩選鑒定及其產(chǎn)黃色素培養(yǎng)條件優(yōu)化

    2023-03-06 08:48:14尤田嚴(yán)佳佳彭亞彬何灣灣王德培高強(qiáng)
    食品研究與開發(fā) 2023年5期
    關(guān)鍵詞:谷氨酸鈉磷酸二氫鉀黃色素

    尤田,嚴(yán)佳佳,彭亞彬,何灣灣,王德培,高強(qiáng)

    (教育部工業(yè)發(fā)酵微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津市微生物代謝與發(fā)酵過程控制技術(shù)工程中心,生物工程國家級實(shí)驗(yàn)教學(xué)示范中心,天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津 300457)

    色素在日常生活與工業(yè)生產(chǎn)中有著重要的作用[1]。天然黃色素多來源于動物、植物、礦物質(zhì)和微生物[2];微生物黃色素則多產(chǎn)于細(xì)菌、酵母、絲狀真菌和微藻,在來源可控、性質(zhì)穩(wěn)定和易于下游加工等方面優(yōu)于植物和動物色素[1-3]。近年來已報道多種產(chǎn)黃色素的真菌、細(xì)菌(如紅曲霉菌),已發(fā)現(xiàn)的其產(chǎn)黃色素種類有44種,其中Takahashi等[4]研究的紅曲黃色素黃單胞菌素A和黃單胞菌素B混合物,已經(jīng)實(shí)現(xiàn)產(chǎn)業(yè)化;粒毛盤菌產(chǎn)胞外脂溶性四環(huán)三萜類衍生物黃色素對多數(shù)食品添加劑的穩(wěn)定性良好[5];海膽共生菌鞘氨醇單胞菌產(chǎn)黃色素易溶于不同極性的常見有機(jī)溶劑中,對光穩(wěn)定性好[6];藤黃微球菌產(chǎn)黃色素具有抗氧化、抗菌、抗輻射作用[7]等。可見天然微生物來源黃色素具有生理活性與保健功能,如抗氧化、抗癌、抗腫瘤、抗糖尿病、抗肥胖、抗炎等作用[8],并廣泛應(yīng)用于食品、化妝品、制藥等行業(yè)中[1,9],在國內(nèi)外市場上有著廣泛的應(yīng)用前景[10]。然而,除少數(shù)天然、半天然紅曲黃色素可大規(guī)模生產(chǎn)、銷售外,天然黃色素市場上多為植物提取類黃色素,未見其他種類微生物天然黃色素產(chǎn)品[11]。因此,篩選新的高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)黃色素菌株以及開發(fā)、生產(chǎn)安全、廉價、優(yōu)質(zhì)的天然微生物黃色素具有廣闊的應(yīng)用前景與經(jīng)濟(jì)潛力。

    本研究從蘆葦根部土壤中分離到一株產(chǎn)黃色素細(xì)菌,對細(xì)菌種屬進(jìn)行鑒定,并對其所產(chǎn)黃色素的性質(zhì)及其合成色素的培養(yǎng)條件進(jìn)行研究,為進(jìn)一步開發(fā)利用此菌株生產(chǎn)黃色素提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    酵母浸出粉、胰蛋白胨:英國Oxoid公司;葡萄糖、果糖、乳糖、蔗糖、麥芽糖:天津北方天醫(yī)試劑公司;氯化鈉、乙酸鈉、檸檬酸鈉、谷氨酸鈉、甘油、可溶性淀粉:天津市化學(xué)試劑一廠;大豆蛋白胨、酪蛋白胨、蛋白粉、豆粕粉、黃豆餅粉、花生餅粉、牛肉膏:北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;氯化銨、硫酸銨、乙酸銨、尿素:天津市永大化學(xué)試劑開發(fā)中心;甲醇(色譜純):天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;DNA聚合酶:武漢金開瑞生物工程有限公司。除特殊標(biāo)注外,其它試劑均為分析純。

    LB培養(yǎng)基:5 g/L酵母浸出粉、10 g/L胰蛋白胨、10 g/L氯化鈉。

    1.2 儀器與設(shè)備

    DELTA320型pH計(jì):梅特勒-托利多儀器有限公司;TCL-12型臺式高速冷凍離心機(jī):湖南湘儀儀器有限公司;NU-T5型紫外分光光度計(jì):天津市華偉科技有限公司;DL-820D型超聲波振蕩器:宏富信精密科技(北京)有限公司;BX-43型光學(xué)顯微鏡:日本OLYMPUS公司;伯樂T100型PCR基因擴(kuò)增儀:上海皓莊儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 產(chǎn)黃色素細(xì)菌的篩選

    取1g蘆葦根部土壤加入到50 mL滅菌的LB液體培養(yǎng)基中,37℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)12 h;取1 mL菌懸液富集培養(yǎng),將富集菌液稀釋106倍,取100 μL稀釋液涂布于LB固體培養(yǎng)基上[12],培養(yǎng)一段時間后出現(xiàn)亮黃色菌落,挑取菌落分離純化3次。挑取單菌落至LB固體斜面培養(yǎng)基上,編號BX-1菌株,置于4℃冰箱備用。

    1.3.2 菌株的鑒定

    從斜面上挑取BX-1單菌落至滅菌的LB液體培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min振蕩培養(yǎng) 12 h,取 10 μL 菌液進(jìn)行革蘭氏染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察細(xì)胞形態(tài)。

    取菌液稀釋并置于基因擴(kuò)增儀中98℃裂解10min,以裂解菌液為模板,以通用引物27F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3')和 1492R(5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3')對菌株16S rRNA基因進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增[13]。PCR 體系:模板1 μL、上游引物27F和下游引物1492R各1 μL、DNA 聚合酶 12.5 μL、ddH2O 9.5 μL。PCR 程序:95 ℃預(yù)變性 5 min、95℃變性 30 s、55℃退火 30 s、72℃延伸45 s并循環(huán)30次、72℃再延伸10 min。PCR產(chǎn)物取2 μL進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳驗(yàn)證,將產(chǎn)物送至金唯智公司測序。測序結(jié)果通過NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行同源性對比分析以明確菌株的種屬關(guān)系,選取同源性高的16S rRNA基因,并通過MEGA7軟件以鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[14]。

    1.3.3 黃色素提取與光譜特性分析

    刮取LB固體培養(yǎng)基上的BX-1菌落0.1 g,加入甲醇溶液2 mL,在40℃水浴條件下超聲裂解15 min,8 000 r/min離心5 min,獲得黃色素提取液[15]。以甲醇為空白對照,用紫外分光光度計(jì)對甲醇黃色素提取液進(jìn)行全波段掃描。

    1.3.4 固態(tài)培養(yǎng)條件優(yōu)化

    1.3.4.1 不同培養(yǎng)溫度對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響

    取2 μL BX-1活化菌液點(diǎn)種于LB固態(tài)培養(yǎng)基上,并分別放置于 37、30、28、20 ℃溫度下培養(yǎng) 240 h。因胞內(nèi)色素產(chǎn)量與其菌體量呈正相關(guān),故以菌落直徑、菌落顏色變化和初步提取胞內(nèi)色素OD438nm值作為試驗(yàn)分析依據(jù)。每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。

    1.3.4.2 不同光照條件對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響

    取2 μL BX-1活化菌液點(diǎn)種于LB固態(tài)培養(yǎng)基上,并分別放置于白熾燈光與黑暗無光條件下培養(yǎng)240 h,每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。

    1.3.5 固態(tài)培養(yǎng)基優(yōu)化

    1.3.5.1 不同碳源對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響

    在LB固體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,分別添加1%葡萄糖、果糖、乳糖、蔗糖、麥芽糖、乙酸鈉、檸檬酸鈉、谷氨酸鈉、甘油、可溶性淀粉,共10種不同的碳源。取2 μL BX-1活化菌液點(diǎn)種于添加不同碳源的固態(tài)培養(yǎng)基上培養(yǎng)240 h,每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。

    1.3.5.2 不同氮源對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響

    在LB固體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,分別添加1%酵母浸出粉、胰蛋白胨、大豆蛋白胨、酪蛋白胨、牛肉膏、蛋白粉、豆粕粉、黃豆餅粉、花生餅粉、氯化銨、硫酸銨、乙酸銨、尿素,共13種不同的氮源。取2μLBX-1活化菌液點(diǎn)種于添加不同氮源的固態(tài)培養(yǎng)基上培養(yǎng)240 h,每隔48h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。

    1.3.5.3 不同初始pH值對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響

    用4 mol/L鹽酸或氫氧化鈉溶液分別調(diào)節(jié)培養(yǎng)基初始 pH 值為 5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5、9.0、9.5、10.0、10.5、11.0。取 2 μL BX-1 活化菌液點(diǎn)種于不同初始pH值的固態(tài)培養(yǎng)基上培養(yǎng)240 h,每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。

    1.3.5.4 最適碳、氮源種類與磷元素濃度正交試驗(yàn)

    根據(jù)碳、氮源單因素試驗(yàn)分別選取3種對BX-1菌株產(chǎn)黃色素影響效果最好的碳、氮源,碳源:1%可溶性淀粉、1%谷氨酸鈉、1%葡萄糖。氮源:1%酵母浸出粉、1%豆粕粉、1%牛肉膏。查閱文獻(xiàn)[16]可知磷酸二氫鉀與硫酸鎂對細(xì)菌產(chǎn)黃色素有明顯的促進(jìn)效果。故選取0.10%、0.15%、0.20%磷酸二氫鉀與3種碳源、3種氮源,使用Minitab 18正交設(shè)計(jì)軟件,設(shè)計(jì)L9(33)正交試驗(yàn),以確定最佳碳、氮源種類與磷酸二氫鉀濃度。分別在固態(tài)培養(yǎng)基上培養(yǎng)240 h,每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表1,L9(33)正交試驗(yàn)分組見表2。

    表1 L9(33)碳、氮源種類與磷酸二氫鉀濃度正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 1 L9(33)Orthogonal experimental design of carbon and nitrogen source types and potassium dihydrogen phosphate concentration

    表2 L9(33)碳、氮源種類與磷酸二氫鉀濃度正交試驗(yàn)分組Table 2 L9(33)Orthogonal test grouping table of carbon and nitrogen source types and potassium dihydrogen phosphate concentration

    續(xù)表2 L9(33)碳、氮源種類與磷酸二氫鉀濃度正交試驗(yàn)分組Continue table 2 L9(33)Orthogonal test grouping table of carbon and nitrogen source types and potassium dihydrogen phosphate concentration

    1.3.5.5 最適碳、氮源、硫酸鎂濃度與初始pH值正交試驗(yàn)

    根據(jù)1.3.5.3與1.3.5.4的試驗(yàn)結(jié)果,選取不同濃度的谷氨酸鈉、豆粕粉和硫酸鎂,與不同初始pH值,使用Minitab 18正交設(shè)計(jì)軟件,設(shè)計(jì)L9(34)正交試驗(yàn),以確定最適谷氨酸鈉、豆粕粉和硫酸鎂濃度與初始pH值。分別在固態(tài)培養(yǎng)基上培養(yǎng)240 h,每隔48 h觀察記錄菌落形態(tài)、大小與顏色變化,每組3個平行。正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)見表3,L9(34)正交試驗(yàn)分組見表4。

    表3 L9(34)谷氨酸鈉、豆粕粉、硫酸鎂濃度與初始pH值正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 3 L9(34)Orthogonal test grouping table of concentrations of sodium glutamate,soybean meal powder,magnesium sulfate,and initial pH value

    表4 L9(34)谷氨酸鈉、豆粕粉、硫酸鎂濃度與初始pH值正交試驗(yàn)分組Table 4 L9(34)Orthogonal experimental design of concentrations of sodium glutamate,soybean meal powder,magnesium sulfate,and initial pH value

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    所有試驗(yàn)均設(shè)置3組平行,結(jié)果取平均值,并使用Origin 9.0版軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 產(chǎn)黃色素菌株的篩選結(jié)果

    對從土壤中分離獲得的亮黃色菌株以三區(qū)劃線法分離轉(zhuǎn)接純化3次,在LB培養(yǎng)基上篩選出分離純化后的亮黃色菌株,結(jié)果見圖1。

    圖1 BX-1菌株Fig.1 BX-1 strain

    由圖1可知,菌株編號為BX-1。在LB培養(yǎng)基上,BX-1菌落呈圓形凸起、表明光滑、邊緣整齊。BX-1菌株所產(chǎn)黃色素為胞內(nèi)色素,無向培養(yǎng)基滲透現(xiàn)象。

    2.2 BX-1菌株的鑒定結(jié)果

    對BX-1菌株進(jìn)行革蘭氏染色,BX-1菌株革蘭氏染色鏡檢顯微放大圖見圖2。

    圖2 BX-1菌株革蘭氏染色鏡檢顯微放大圖Fig.2 Microscopic magnification of Gram staining of BX-1 strain

    由圖2可知,在1 000倍顯微鏡下觀察,BX-1菌株呈短桿狀、密集堆疊排列、無芽孢,為革蘭氏陽性細(xì)菌。

    對BX-1菌株16S rRNA基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,結(jié)果見圖3。

    圖3 BX-1菌株16S rRNA基因PCR電泳圖Fig.3 PCR electrophoresis of 16S rRNA gene of BX-1 strain

    由圖3可知,擴(kuò)增產(chǎn)物條帶于1 500 bp處明亮清晰。將PCR擴(kuò)增序列送至金唯智公司測序。擴(kuò)增產(chǎn)物測序結(jié)果經(jīng)NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行同源性比對,選取同源性較高的16S rRNA基因序列,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果如圖4所示。

    圖4 基于16S rRNA序列BX-1菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.4 Phylogenetic tree of BX-1 strain based on 16S rRNA sequence

    由圖4可知,BX-1菌株與鹽生谷氨酸桿菌(Glutamicibacter halophytocola)的親緣關(guān)系最近[17],處于系統(tǒng)發(fā)育樹的同一分枝,確定BX-1菌株為G.halophytocola,即鹽生谷氨酸桿菌。

    2.3 黃色素提取與光譜分析結(jié)果

    BX-1菌體經(jīng)超聲波破碎,甲醇提取胞內(nèi)黃色素,全波段掃描提取液結(jié)果見圖5。

    圖5 BX-1菌株胞內(nèi)黃色素紫外吸收光譜Fig.5 Ultraviolet absorption spectra of intracellular yellow pigment of BX-1 strain

    由圖5可知,BX-1菌株胞內(nèi)黃色素共有3個吸收峰,分別處于411、438、467 nm,其中438 nm處吸收峰最高。

    葉黃素標(biāo)品的紫外吸收光譜見圖6。

    圖6 葉黃素標(biāo)品紫外吸收光譜Fig.6 Ultraviolet absorption spectrum of lutein standard

    紫外吸收光譜有助于確定色素的結(jié)構(gòu)[18],由圖6可知,葉黃素標(biāo)品的紫外吸收光譜與BX-1菌株胞內(nèi)黃色素的光譜特性相似。推測BX-1菌株產(chǎn)胞內(nèi)黃色素可能為接近葉黃素的類胡蘿卜色素。

    2.4 BX-1菌株產(chǎn)黃色素最適固態(tài)培養(yǎng)條件優(yōu)化結(jié)果

    2.4.1 不同培養(yǎng)溫度對BX-1產(chǎn)黃色素的影響

    按1.3.4.1中的方法在不同溫度下培養(yǎng)BX-1菌株,菌落直徑測量結(jié)果見圖7。

    圖7 BX-1菌株在不同培養(yǎng)溫度下的菌落直徑與產(chǎn)黃色素OD值Fig.7 Colony diameter of BX-1 strain at different culture temperatures and OD value of yellow pigment

    由圖7可知,在20℃與37℃培養(yǎng)條件下,菌株生長均較為緩慢;在30℃與28℃培養(yǎng)條件下生長較快、菌苔厚實(shí)。肉眼觀察菌落顏色,可知培養(yǎng)至240 h時,只有20℃培養(yǎng)條件下菌落呈現(xiàn)亮黃色。其它溫度下,菌體生長呈現(xiàn)出部分淺黃色或乳白色。在相同條件下提取不同菌落的黃色素,可見20℃條件下培養(yǎng)的BX-1菌株產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值最高,明顯高于其它溫度條件。故推測,BX-1菌株為溫敏型黃色素產(chǎn)生菌[19],可能存在黃色素合成溫度調(diào)控元件,低溫環(huán)境時啟動相關(guān)基因的表達(dá)轉(zhuǎn)錄[20]。考慮試驗(yàn)條件與資源能耗的合理利用,選擇20℃作為BX-1菌株產(chǎn)黃色素的培養(yǎng)溫度。

    2.4.2 不同光照條件對BX-1產(chǎn)黃色素的影響

    BX-1菌株經(jīng)不同光照條件培養(yǎng)的菌落直徑與產(chǎn)黃色素OD值見圖8。

    圖8 BX-1菌株經(jīng)不同光照條件培養(yǎng)的菌落直徑與產(chǎn)黃色素OD值Fig.8 Moss diameter of BX-1 strain cultured under different light conditions and OD value of yellow pigment

    由圖8可知,白熾燈光與黑暗無光條件下BX-1菌株培養(yǎng)至240 h均可快速生長,白熾燈光照培養(yǎng)生長較快,黑暗條件生長較慢。肉眼觀察菌落顏色,可見白熾燈光照條件下,BX-1菌株培養(yǎng)至48 h即產(chǎn)生黃色素,至240 h菌落呈亮黃色且菌苔厚實(shí);黑暗條件下培養(yǎng)至144 h時菌落才呈現(xiàn)黃色。在相同條件下提取不同菌落的黃色素,白熾燈光照培養(yǎng)的BX-1菌株產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值最高,明顯高于黑暗組。

    由圖8可知,光照的刺激會誘導(dǎo)BX-1菌株大量合成黃色素。光是自然界的能量來源,也是調(diào)節(jié)生命活動的重要信號,光能影響細(xì)菌的生長發(fā)育、生理周期及次生代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生[21]。Mohana等[22]研究表明生存在高輻射環(huán)境下的藤黃微球菌所產(chǎn)黃色素可吸收紫外線來保護(hù)自身。故BX-1菌株受可見光光照刺激時,合成黃色素相關(guān)代謝途徑可能會更加活躍,產(chǎn)生大量黃色素以對抗外部環(huán)境變化。

    根據(jù)培養(yǎng)BX-1菌株時的菌落形態(tài)變化發(fā)現(xiàn),菌株培養(yǎng)超過240 h后,菌落呈現(xiàn)老化現(xiàn)象,故統(tǒng)一培養(yǎng)觀察至240 h,以保證試驗(yàn)的穩(wěn)定性與準(zhǔn)確性。綜上,BX-1菌株產(chǎn)黃色素最適固態(tài)培養(yǎng)條件優(yōu)化結(jié)果為BX-1菌株放置于20℃光照培養(yǎng)240 h。

    2.5 BX-1菌株產(chǎn)黃色素最適固態(tài)培養(yǎng)基優(yōu)化結(jié)果

    2.5.1 碳源對BX-1產(chǎn)黃色素的影響

    不同碳源培養(yǎng)240 h的BX-1菌株的菌落直徑測量結(jié)果見圖9。

    圖9 BX-1菌株在不同碳源培養(yǎng)基上的菌落直徑Fig.9 Bacterial moss photos of BX-1 strain cultured on different carbon sources

    由圖9可知,BX-1菌株具有多種碳源適應(yīng)性,培養(yǎng)至240 h均可快速生長。其中,以可溶性淀粉作為碳源的BX-1菌株生長最快,菌落直徑最大;其次為蔗糖、葡萄糖、果糖、谷氨酸鈉;以檸檬酸鈉、乙酸鈉為碳源的BX-1菌株生長緩慢。肉眼觀察菌落顏色,可見培養(yǎng)至240h,在谷氨酸鈉、檸檬酸鈉、可溶性淀粉作為碳源的培養(yǎng)基上BX-1菌落均呈現(xiàn)亮黃色且菌苔厚實(shí);BX-1在其他7類碳源上菌落顏色較淺,呈白色或淺黃色。

    因此,BX-1菌株最適產(chǎn)黃色素碳源為可溶性淀粉。BX-1菌株可產(chǎn)生淀粉酶來分解利用可溶性淀粉以促使菌落快速生長,同時在分解淀粉的代謝過程中可促使菌株積累次生代謝產(chǎn)物黃色素[23]。

    2.5.2 不同氮源對BX-1產(chǎn)黃色素的影響

    不同氮源培養(yǎng)的BX-1菌株,菌落直徑測量結(jié)果見圖10。

    圖10 BX-1菌株在不同氮源培養(yǎng)基上的菌落直徑Fig.10 BX-1 bacterial moss diameter on different nitrogen source medium

    由圖10可知,BX-1菌株對多種有機(jī)氮源均可很好利用,其中以大豆蛋白胨為氮源時,BX-1菌株長勢最快,菌落直徑最大;豆粕粉、黃豆餅粉、花生餅粉等有機(jī)氮源也可促使菌株快速生長;BX-1菌株在無機(jī)氮源尿素、乙酸銨、硫酸銨、氯化銨中生長最緩慢。肉眼觀察菌落顏色,可見培養(yǎng)至240 h時,以牛肉膏、酵母浸出粉、胰蛋白胨、酪蛋白胨、豆粕粉、黃豆餅粉為氮源時,BX-1菌落呈現(xiàn)亮黃色且菌苔厚實(shí);在其他氮源上,BX-1菌落則呈現(xiàn)白色、乳白色或淺黃色。

    BX-1菌株利用天然有機(jī)蛋白質(zhì)作為氮源可積累大量黃色素,能夠利用無機(jī)氮源生長但產(chǎn)黃色素量較低。可見其黃色素積累可能受天然有機(jī)蛋白質(zhì)中某些氨基酸分子或小肽的誘導(dǎo),促使胞內(nèi)黃色素的快速代謝合成[24]。大豆蛋白胨可以促使菌株快速生長但不誘導(dǎo)菌株產(chǎn)黃色素,所以初步選擇豆粕粉作為氮源。

    2.5.3 初始pH值對BX-1產(chǎn)黃色素的影響

    不同初始pH值培養(yǎng)基上培養(yǎng)的BX-1菌落直徑測量結(jié)果見圖11。

    圖11 BX-1菌株在不同初始pH值培養(yǎng)條件下的菌落直徑Fig.11 BX-1 bacterial moss diameter under different initial pH conditions

    由圖11可知,BX-1菌株在pH6.0~11.0范圍內(nèi)均可快速生長。在初始pH值為6.0時,BX-1菌株生長最快,菌落直徑最大;在初始pH值為6.5~8.5時,菌落直徑相近無明顯差異。在初始pH值大于10.0或小于6.0時,BX-1菌株生長緩慢,菌落直徑較小。肉眼觀察菌落顏色,可見培養(yǎng)至240 h時,在不同初始pH值下BX-1菌落均呈現(xiàn)不同程度的黃色。初始pH值為6.0~8.5與10.0時菌落呈亮黃色,其他初始pH值下菌落顏色較淺。

    由此可知,BX-1菌株在pH6.0~10.0范圍內(nèi)均可產(chǎn)黃色素。說明BX-1菌株有著極廣泛的酸堿適應(yīng)性,在偏酸環(huán)境下更有利于菌株的生長,但在中性偏堿環(huán)境下更有利于菌株合成積累黃色素。綜合菌株生長與產(chǎn)黃色素兩個因素,初步選擇pH6.0作為最適初始pH值。

    2.5.4 最適碳、氮源種類與磷元素濃度正交試驗(yàn)結(jié)果

    為研究不同碳、氮源交互作用對BX-1菌株產(chǎn)黃色素的影響,分別選擇對BX-1菌株產(chǎn)黃色素較好的3種不同碳源、氮源,并與不同濃度磷酸二氫鉀進(jìn)行正交試驗(yàn)。BX-1菌落直徑測量結(jié)果見圖12。

    圖12 BX-1菌株L9(33)正交試驗(yàn)菌落直徑Fig.12 Colony diameter of BX-1 strain L9(33)in orthogonal experiment

    由圖12可知,9組正交試驗(yàn)BX-1菌株菌落直徑均高于對照組(0組,LB培養(yǎng)基),說明正交試驗(yàn)添加的碳、氮源與磷酸二氫鉀可以有效促使BX-1菌株積累黃色素。其中,以第5組最佳,即1%谷氨酸鈉、1%豆粕粉、0.2%磷酸二氫鉀,菌落直徑明顯高于其他組。肉眼觀察菌落顏色,可見培養(yǎng)至240 h,1~6組試驗(yàn)組與對照組BX-1菌落均呈亮黃色,菌苔厚實(shí)致密。7、8、9組中BX-1菌落則呈現(xiàn)部分淺黃色。

    正交試驗(yàn)分析結(jié)果見圖13。

    圖13 BX-1菌株L9(33)正交試驗(yàn)分析結(jié)果Fig.13 Results of orthogonal experiment of BX-1 strain L9(33)

    由圖13可知,均值主效應(yīng)圖中縱坐標(biāo)均值的均值數(shù)據(jù)分析顯示,B氮源最高點(diǎn)B2與最低點(diǎn)B3差值最大,C磷酸二氫鉀最高點(diǎn)C3與最低點(diǎn)C1差值最小,所以氮源對BX-1菌株的生長影響最為明顯,碳源次之,磷酸二氫鉀影響最小;圖13分析預(yù)測可促使BX-1菌株生長產(chǎn)黃色素的最佳點(diǎn)分別是A2谷氨酸鈉、B2豆粕粉、C30.20%磷酸二氫鉀,所以正交試驗(yàn)結(jié)果分析的最適組合為碳源谷氨酸鈉、氮源豆粕粉、0.20%磷酸二氫鉀,與正交試驗(yàn)組中的最佳組合(第5組)一致。由圖13可知,磷酸二氫鉀濃度增加對BX-1菌株產(chǎn)黃色素呈正向促進(jìn)作用,且圖中沒有出現(xiàn)拐點(diǎn),需增設(shè)磷酸二氫鉀濃度單因素試驗(yàn)以找出最適值。

    增設(shè)磷酸二氫鉀0.20%~0.35%濃度,觀察其對BX-1菌株生長和產(chǎn)黃色素的影響,結(jié)果見圖14。

    圖14 BX-1菌株在不同磷酸二氫鉀濃度下培養(yǎng)的菌落直徑與產(chǎn)黃色素量OD值Fig.14 Moss diameter of BX-1 strain cultured under different potassium dihydrogen phosphate concentrations and OD values of yellow pigment

    由圖14可知,磷酸二氫鉀濃度為0.25%~0.30%時,BX-1菌落直徑大小相近,均大于另外2組。肉眼觀察菌落顏色,可見0.20%~0.35%濃度的磷酸二氫鉀培養(yǎng)至240 h的BX-1菌落均厚實(shí)且呈亮黃色。在相同條件下提取不同菌落的黃色素,可見0.25%磷酸二氫鉀濃度組的BX-1菌株所產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值最高,明顯高于其他組。

    由此得出,BX-1菌株最適培養(yǎng)基組成為1%谷氨酸鈉、1%豆粕粉、0.25%磷酸二氫鉀。相比于可溶性淀粉與葡萄糖,谷氨酸鈉可以直接進(jìn)入三羧酸循環(huán),更有利于被BX-1菌株吸收利用,為菌株生長與合成黃色素提供能量;豆粕粉來源廣泛、價格便宜且富含各類營養(yǎng)物質(zhì),尤其含有多種氨基酸與小分子多肽類物質(zhì),易于吸收利用,可以使菌株快速合成并積累黃色素;磷是輔酶、輔基、腺嘌呤核苷三磷酸等物質(zhì)的組成成分,能調(diào)節(jié)代謝流向與次級代謝產(chǎn)物的合成,在合適的濃度下能促使BX-1菌株高產(chǎn)黃色素[25]。

    2.5.5 最適碳、氮源、硫酸鎂濃度與初始pH值正交試驗(yàn)結(jié)果

    在不同谷氨酸鈉、豆粕粉、硫酸鎂濃度和不同初始pH值正交組合下培養(yǎng)的BX-1菌落直徑測量結(jié)果見圖15。

    圖15 BX-1菌株L9(34)正交試驗(yàn)菌落直徑Fig.15 Coat diameter of BX-1 strain L9(34)in orthogonal experiments

    由圖15可知,第4組a2b1c2d3組合,即谷氨酸鈉3%、豆粕粉3%、硫酸鎂0.05%、初始pH值6.0條件下所培養(yǎng)的BX-1菌落直徑最大,明顯高于其他組合。肉眼觀察菌落顏色,可見9組BX-1菌株培養(yǎng)至240 h均呈現(xiàn)亮黃色。

    正交試驗(yàn)分析結(jié)果見圖16。

    圖16 BX-1菌株L9(34)正交試驗(yàn)分析結(jié)果Fig.16 BX-1 strain L9(34)orthogonal experimental analysis results

    由圖16可知,均值主效應(yīng)圖中縱坐標(biāo)均值的均值數(shù)據(jù)分析顯示,a谷氨酸鈉濃度最高點(diǎn)a2與最低點(diǎn)a1差值最大,c硫酸鎂濃度最高點(diǎn)c1與最低點(diǎn)c3差值最小,所以谷氨酸鈉濃度對BX-1菌株的生長影響最大,豆粕粉濃度與初始pH值次之,硫酸鎂濃度對BX-1菌株生長影響程度最??;圖16分析預(yù)測可促使BX-1菌株生長產(chǎn)黃色素最佳點(diǎn)分別是a2谷氨酸鈉3%、b1豆粕粉3%、c1硫酸鎂0.1%、d2初始pH值7.0,所以正交試驗(yàn)分析結(jié)果最佳組合為3%谷氨酸鈉、3%豆粕粉、0.1%硫酸鎂、初始pH7.0,即a2b1c1d2組合。與正交試驗(yàn)中的最佳組第4組a2b1c2d3組合存在差異,需試驗(yàn)驗(yàn)證以篩選最優(yōu)組合。均值主效應(yīng)圖中未出現(xiàn)豆粕粉濃度的拐點(diǎn),無法確定最適豆粕粉濃度,需補(bǔ)做試驗(yàn)加以確定。

    BX-1菌株L9(34)正交驗(yàn)證試驗(yàn)菌落直徑與產(chǎn)黃色素量OD值見圖17。

    圖17 BX-1菌株L9(34)正交驗(yàn)證試驗(yàn)菌落直徑與產(chǎn)黃色素量OD值Fig.17 BX-1 strain L9(34)orthogonal validation test moss diameter and OD value of yellow pigment

    由圖17可知,不同組合驗(yàn)證試驗(yàn)所培養(yǎng)的BX-1菌落直徑相近。肉眼觀察菌落顏色無差別,兩組菌株培養(yǎng)至240 h均呈現(xiàn)亮黃色。在相同條件下提取不同菌落的黃色素,可見正交試驗(yàn)分析所得a2b1c1d2組合產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值明顯高于正交試驗(yàn)組中的第4組a2b1c2d3組合。a2b1c1d2組合相較于a2b1c2d3組合硫酸鎂濃度更高,初始pH值7.0為中性。研究表明中性偏堿環(huán)境更適于多數(shù)細(xì)菌的生長代謝,偏酸環(huán)境會對細(xì)菌生長有抑制作用;鎂離子能調(diào)控信號傳遞、參與蛋白質(zhì)的合成,是細(xì)菌新陳代謝過程中必不可少的微量元素[17]。上述試驗(yàn)結(jié)果表明,0.1%硫酸鎂與中性初始pH值組合更能促使BX-1菌株大量合成黃色素。

    BX-1菌株在不同豆粕粉濃度下培養(yǎng)的菌落直徑與菌株產(chǎn)黃色素量OD值見圖18。

    圖18 BX-1菌株在不同豆粕粉濃度下培養(yǎng)的菌落直徑與菌株產(chǎn)黃色素量OD值Fig.18 Moss diameter of BX-1 strain cultured in different soybean meal concentrations and OD value of yellow pigment

    由圖18可知,在1%~3%濃度范圍內(nèi),豆粕粉濃度增加對BX-1菌株產(chǎn)黃色素呈正向促進(jìn)作用,推測最適豆粕粉濃度應(yīng)大于等于3%,故分別以2%、3%、4%、5%濃度豆粕粉培養(yǎng)BX-1菌株。如圖18所示,當(dāng)豆粕粉濃度為3%時,BX-1菌落直徑最大,明顯高于其它組。肉眼觀察菌落顏色,菌苔均呈現(xiàn)亮黃色無明顯差別。在相同條件下提取不同菌落的黃色素,可見3%豆粕粉濃度的BX-1菌株所產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值最高,明顯高于其它濃度。

    由此可見,最適碳氮、源、硫酸鎂濃度與最適初始pH值正交試驗(yàn)的最優(yōu)結(jié)果為3%谷氨酸鈉、3%豆粕粉、0.1%硫酸鎂、最適初始pH7.0。

    3 結(jié)論

    本研究以一株從蘆葦根部鹽堿地土壤中分離篩選出的產(chǎn)黃色素菌株BX-1為研究對象,以LB培養(yǎng)基為基礎(chǔ)優(yōu)化培養(yǎng)基,通過形態(tài)學(xué)觀察發(fā)現(xiàn)BX-1菌落呈圓形凸起、表明光滑、邊緣整齊、亮黃色、產(chǎn)胞內(nèi)黃色素。經(jīng)由革蘭氏染色鏡檢與分子生物學(xué)方法鑒定出BX-1菌株為不產(chǎn)芽孢的短桿狀革蘭氏陽性細(xì)菌,鹽生谷氨酸桿菌(Glutamicibacter halophytocola)。對BX-1菌株胞內(nèi)黃色素進(jìn)行提取,可知該黃色素易溶于甲醇,為脂溶性色素,紫外光譜掃描顯示其在411、438、467 nm 3處有吸收峰,438 nm處吸收峰最高,與葉黃素光譜特性相似,推測BX-1黃色素可能為接近葉黃素的類胡蘿卜素,其提取純化產(chǎn)物及分子結(jié)構(gòu)還需大量試驗(yàn)分析驗(yàn)證。培養(yǎng)溫度與光照條件的單因素試驗(yàn)表明,BX-1菌株最適生長溫度為30℃,合適產(chǎn)黃色素溫度為20℃,即BX-1菌株為溫敏型黃色素產(chǎn)生菌,產(chǎn)黃色素需低溫誘導(dǎo)以開啟相關(guān)調(diào)控元件,同時也需要外部光照刺激菌株大量合成黃色素,故BX-1菌株最適固態(tài)培養(yǎng)條件為20℃光照培養(yǎng)240 h。設(shè)計(jì)碳、氮源、初始pH值、無機(jī)鹽的單因素與正交試驗(yàn),通過記錄分析菌株在不同條件下的菌落生長直徑、肉眼觀察菌落顏色變化以及測量比較不同條件生長BX-1菌株產(chǎn)黃色素在438 nm處OD值,得出最適BX-1菌株生長與合成黃色素的固態(tài)培養(yǎng)基組成為3%谷氨酸鈉、3%豆粕粉、0.5%酵母浸出粉、1%氯化鈉、0.25%磷酸二氫鉀、0.1%硫酸鎂、初始pH7.0。上述研究結(jié)果鑒定了BX-1菌株的種屬,初步確定了促使BX-1菌株產(chǎn)黃色素的培養(yǎng)條件與培養(yǎng)基組成以及BX-1黃色素的部分性質(zhì),為BX-1菌株產(chǎn)黃色素的進(jìn)一步開發(fā)利用以及BX-1黃色素結(jié)構(gòu)的研究分析提供參考。

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