耿照明,周清滕,郭 明,胡智燕,朱杰麗
(1.浙江農(nóng)林大學(xué)化學(xué)與材料工程學(xué)院,浙江 杭州 311300;2.浙江省林業(yè)科學(xué)研究院,浙江 杭州 310023)
柚皮揮發(fā)性有機化合物(pomelo volatile organic compounds,PVOC)因具有獨特的香味及存在大量具有抗菌消炎的烯萜和醛酮類化合物,在醫(yī)藥食品、化學(xué)化工等方面具有潛在應(yīng)用價值[1]。而揮發(fā)性活性物質(zhì)的藥理活性需要與載體蛋白結(jié)合轉(zhuǎn)運至相應(yīng)作用靶點方能發(fā)揮作用[2]。蛋白質(zhì)可與PVOC分子發(fā)生可逆或不可逆結(jié)合,二者的相互作用高度依賴于PVOC分子的性質(zhì)、蛋白質(zhì)的天然結(jié)構(gòu)、蛋白質(zhì)與PVOC分子結(jié)合時的結(jié)構(gòu)變化以及溫度和pH等參數(shù)。探究兩者的作用本質(zhì)和規(guī)律是一個系統(tǒng)且復(fù)雜的工作。在處理揮發(fā)性物質(zhì)樣品進行分析時,確保其完整性非常重要。頂空固相微萃?。╤eadspace-solid phase microextraction,HS-SPME)是一種無溶劑的樣品處理技術(shù),具有成本低、所需樣品少、靈敏度高、重現(xiàn)性好和操作簡單快捷的特點,能較準(zhǔn)確地反映樣品的揮發(fā)物組成[3],可與氣相色譜-質(zhì)譜技術(shù)聯(lián)用(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS),實現(xiàn)揮發(fā)性樣品成分的快速分析[4-5]。光譜學(xué)可用于評估生理條件下蛋白質(zhì)配體相互作用。借助多光譜方法,如熒光猝滅、三維熒光、圓二色性光譜和紫外吸收,可研究蛋白質(zhì)分子相互作用和結(jié)構(gòu)變化的主要作用力。分子建??梢灶A(yù)測蛋白質(zhì)和配體之間的最佳結(jié)合構(gòu)象[6-7]。
牛乳鐵蛋白(bovine lactoferrin,BLF)是一種源自轉(zhuǎn)鐵蛋白的鐵結(jié)合糖蛋白,主要從牛乳中提取。BLF具有抗氧化、抗癌、抗炎防止微生物感染、維持鐵在正常范圍內(nèi)的平衡和調(diào)節(jié)鐵在腸道的吸收等一系列功能特性[8],因此被廣泛應(yīng)用于營養(yǎng)補充劑和嬰兒配方食品中。而BLF若在胃內(nèi)消化程度過高,將失去一些生物活性功能,如失去輸運鐵和對抗自由基的功能,可能引起食物過敏,降低在腸道發(fā)揮生理功能的可能性[9-10]。為保證BLF作為一種有效的鐵轉(zhuǎn)運蛋白,必須在到達特定受體之前保持其穩(wěn)定性。因此,尋找一種蛋白質(zhì)-活性物復(fù)合物保護機制來保持蛋白質(zhì)穩(wěn)定性尤為重要。
本研究對PVOC物質(zhì)組與BLF的吸附結(jié)合進行探索,選取低豐度蛋白BLF(圖1)作為PVOC物質(zhì)組小分子的蛋白受體,采用HS-SPME/GC-MS技術(shù)分離、鑒定PVOC,采用光譜和分子建模技術(shù)從微觀角度探究PVOC與載體蛋白之間的相互作用機制,結(jié)合組學(xué)闡釋PVOC物質(zhì)組與載體蛋白作用的分子機制。
Fig.1 Three-dimensional structure of bovine lactoferrin(BLF)(low abundance)
一、二和三級琯溪蜜柚及南非葡萄柚和以色列青柚(3個品種各級挑選1個樣品,依次編號為S1~S9)均采自福建省漳州市平和果園,所選柚子長勢相近,無病蟲害,果實直徑約10 cm,采后4℃保存?zhèn)溆谩-檸檬烯〔(+)-dipentene,Dt,純度≥95%)〕,上海薩恩化學(xué)技術(shù)有限公司;乙酸芳樟酯(linalylacetate,La,純度≥95%),上海梯希愛化成工業(yè)發(fā)展有限公司;圓柚酮(nootkatone,Nt,純度≥98%)和BLF(80 ku,純度≥95%),上海源葉生物科技有限公司;醋酸鈉(CH3COONa,NaAc,純度≥98%),國藥集團化學(xué)試劑有限公司;冰醋酸(CH3COOH,HAc,純度≥98%),上海凌峰化學(xué)試劑有限公司。7890A/5975C氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀和DB-17MS色譜柱(30 m×250 μm×0.25 μm),美國Agilent公司;AL204電子天平,上海梅特勒托利多國際貿(mào)易有限公司;SPME手柄和固相微萃取頭(50 μm/30 μm DVB/CAR/PDMS),美國 Supelco公司;F-4500型熒光分光光度計,日本HITACHI公司;UV-2600型紫外光譜儀,日本SHIMADZU公司;ZD-2型酸度計,上海精密科學(xué)儀器有限公司;J-810CD光譜儀,日本Jasco公司。ChemDraw 2019軟件,美國CambridgeSoft公司;Discovery Studio 2.5軟件,美國Biovia公司;AutoDock4.2.6軟件,美國Scripps Research公司;Origin 2021軟件,美國OriginLab公司。
配制0.2 mol·L-1HAc-NaAc緩沖液(pH=7.4),然后使用該緩沖液配制BLF 5×103mg·L-1溶液。PVOC 1.0×10-5mol·L-1單分子及混合液標(biāo)準(zhǔn)品均使用無水乙醇配制。通過5次連續(xù)進樣考察儀器的精密度、穩(wěn)定性及重復(fù)性。將采集的柚子樣品取果皮并切成小塊(2 mm×2 mm),分別稱取0.5 g置于頂空瓶中,25℃于固相微萃取儀上平衡萃取,萃取結(jié)束后,采用GC-MS技術(shù)獲得PVOC指紋圖譜。樣品在GC進樣口熱解吸2 min。色譜條件:氦氣作為載氣,掃描速度3.2 amu·min-1,初始溫度為50℃,保持1 min,然后以10℃·min-1程序升溫至260℃,保持2 min;前進樣口、傳輸線、離子源和四極桿溫度分別為260℃,260℃,230℃和150℃。質(zhì)譜條件:電子轟擊源(electron Impact,EI)電離能量為-70 eV,質(zhì)量掃描范圍為質(zhì)荷比(m/z)50~500,溶劑延遲時間為4.5 min??傔\行時間24 min。
將收集的9種柚皮PVOC分別定量通入盛有2 mL BLF蛋白溶液的頂空瓶中,密封。室溫低轉(zhuǎn)速平衡攪拌10 min,使PVOC與BLF充分結(jié)合至飽和后進行HS-SPME定時平衡萃取,采用GC-MS技術(shù)獲得PVOC與BLF吸附結(jié)合的指紋圖譜[11]??瞻讓φ战M(2 mL HAc-NaAc緩沖溶液0.05 mol·L-1)按上述步驟操作。
在NIST98.L標(biāo)準(zhǔn)譜庫中對GC-MS分析得到的質(zhì)譜數(shù)據(jù)進行檢索,查尋有關(guān)質(zhì)譜資料,對基峰、m/z和相對豐度等進行分析,分別對各峰所代表物質(zhì)的化學(xué)結(jié)構(gòu)和名稱進行確認(rèn),獲得PVOC物質(zhì)組成分信息[12],采用峰面積歸一法分析相對含量。采用Origin 7.5軟件建立GC-MS指紋圖譜;以9個柚皮PVOC物質(zhì)組共有成分相對含量為特征,采用離差平方和法,選用歐式距離為測度,對樣品進行聚類分析[13]。
使用ChemDraw構(gòu)建PVOC配體結(jié)構(gòu),并進行MM2能量最優(yōu)化處理,在Autodock軟件中添加原子類型后保存文件。PDB蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫導(dǎo)出“1BLF”晶體結(jié)構(gòu)作為BLF的對接模板。在Pymol中打開配體文件對其進行去水和加氫的前期處理。利用Autodock 4.2.6軟件添加AD4原子類型并保存。利用Autodock進行分子對接,體系盒子大小設(shè)置為X:70,Y:70,Z:70(X,Y和Z分別表示各方向上格點的數(shù)量),格點間隔默認(rèn)0.375 ?(1 ?=0.1 nm),格子的中心移至格子整體包覆住Try523,Try524,Try526和Try560,采用拉馬克遺傳算法(LGA)進行內(nèi)部構(gòu)象搜索,通過AutoDock軟件包的python腳本,運行AutoGrid,進行分子對接,輸出保存為pdb格式。對接結(jié)束后,根據(jù)Autodock 4.2.6軟件內(nèi)分子間結(jié)合能高低進行分子模型評估,首選對接排名較高的對接結(jié)果。在這一步中,PyMol軟件用于pdb文件的可視化和生成。
使用F-4500熒光分光光度計分別在298和310 K檢測BLF的固有熒光發(fā)射,激發(fā)波長設(shè)置為282 nm,發(fā)射波長設(shè)置為270~450 nm。分別用PVOC單分子(Dt,La和Nt)標(biāo)準(zhǔn)液及物質(zhì)組(Dt,La和Nt)混合液對BLF溶液進行連續(xù)滴定至飽和。對于所有樣品,滴定結(jié)束時乙醇的含量不超過3%(V/V)。根據(jù)式①進行內(nèi)濾效應(yīng)校正[14]。
其中FObs和FCorr分別為初始熒光強度和內(nèi)濾波效應(yīng)校正后的熒光強度。AExc和AEmi分別是PVOC在最大激發(fā)波長處的熒光值和最大發(fā)射波長處的熒光值。
分別取BLF溶液、PVOC單分子標(biāo)準(zhǔn)液及物質(zhì)組混合液各3 mL于比色皿中,測定200~500 nm紫外可見吸收光譜。收集BLF固有熒光發(fā)射數(shù)據(jù)與PVOC單分子的紫外吸收數(shù)據(jù),根據(jù)F?rster的偶極-偶極非輻射能量轉(zhuǎn)移理論,得到蛋白質(zhì)與配體間作用結(jié)合距離[15]。
通過Stern-Volmer方程(式②)分析熒光猝滅數(shù)據(jù)[16],探索BLF與PVOC物質(zhì)組結(jié)合機制。
式中,F(xiàn)0,F(xiàn),Kq,KSV,τ(010-8s)和L分別表示無猝滅劑和有猝滅劑時的熒光強度、猝滅速率常數(shù)、Stern-Volmer猝滅常數(shù)、分子平均壽命和猝滅劑濃度。
確認(rèn)熒光猝滅機制后,用雙對數(shù)Stern-Volmer方程(式③)計算PVOC物質(zhì)組在BLF上的結(jié)合位點數(shù)[17]。
其中,K為結(jié)合常數(shù),n為結(jié)合位點數(shù),L為PVOC樣品濃度。
使用Hill方程(式④)消除約束模型中的假設(shè),減少建模條件之間的差異[18]。
式中,θ為熒光飽和度,F(xiàn)sat為蛋白熒光強度最小時的熒光值,Ka為結(jié)合常數(shù),nH為Hill系數(shù),L為PVOC物質(zhì)組樣品濃度。
根據(jù)Ross理論[19],可由體系的焓變(ΔH)、熵變(ΔS)和自由能變(ΔG)來判斷生物大分子與小分子之間相互作用力的類型。配體與蛋白受體分子作用的作用力有氫鍵、靜電作用力、范德華力和疏水作用力。體系的ΔH,ΔS和ΔG可反映蛋白受體與配體之間相互作用力的類型,ΔS>0表示作用力為疏水作用力和靜電力;ΔS<0表示氫鍵和范德華力;ΔH>0,ΔS>0表示疏水作用力;ΔH<0,ΔS<0表示為氫鍵和范德華力[20]。通過熒光光譜極點測取,并根據(jù)Van't Hoff方程(式⑤和⑥)[21-23],得到體系的ΔH和ΔG。
根據(jù)Gibbs-Helmholtz方程(式⑦),計算獲得作用體系的ΔS。
式⑧中,E為能量轉(zhuǎn)移效率,R0為能量轉(zhuǎn)移效率為50%時分子間的距離,r為供受體分子間的實際距離。式⑨中,溶液折射常數(shù)N=1.336;供體的熒光量子產(chǎn)率Φ=0.118;K2是取向因子,一般將溶液中的供受體當(dāng)作混亂取向,從而取K2=2/3計算R0;式⑩中,J是蛋白熒光發(fā)射譜與猝滅劑紫外吸收譜的重疊積分,λ為波長,F(xiàn)(λ)為波長λ處的熒光值,ε(λ)為波長λ處的紫外吸收值。
移取BLF溶液3 mL于比色皿中,以HAc-NaAc緩沖液為參比溶液,記錄圓二色性(circular dichroism,CD)光譜儀上BLF的遠(yuǎn)紫外-CD譜,再分別測定添加等摩爾濃度的3種PVOC單分子及其混合物溶液的CD譜。檢測波長為190~260 nm。BLF的二級結(jié)構(gòu)中占主導(dǎo)作用的α-螺旋含量變化由式[11]計算得出,將數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換為摩爾橢圓率[θ](deg·cm2·dmol-1),并繪制CD譜圖。BLF蛋白的α-螺旋結(jié)構(gòu)的特征是在208 ~210 nm處出現(xiàn)負(fù)帶[25],β-折疊結(jié)構(gòu)的特征是在190~200 nm處有一個強的正帶,在210 nm附近有一個負(fù)帶。結(jié)合CD譜圖及式[12]計算α-螺旋含量。以α-螺旋含量反映二級結(jié)構(gòu)變化。
式中,θObs是儀器測定的CD光譜強度;MRE是橢圓率;CP是蛋白物質(zhì)的量分?jǐn)?shù);l是樣品池的厚度;n是氨基酸殘基基團的數(shù)目。
使用F-4500型熒光分光光度計在298 K檢測記錄BLF的三維熒光數(shù)據(jù),然后再分別測定添加等體積的3種PVOC單分子及其混合物溶液時BLF三維熒光數(shù)據(jù)。激發(fā)波長(λEx)范圍為220~310 nm,增量為10 nm;發(fā)射波長(λEm)范圍為220~500 nm,增量為5 nm。將三維熒光數(shù)據(jù)導(dǎo)出,使用Origin2021軟件進行可視化分析。以λMax紅移程度或藍(lán)移程度反映蛋白質(zhì)構(gòu)象變化的程度。以特征峰λEX=280 nm處Peak1的變化反映Tyr和Trp殘基的光譜特征;以λEX=230 nm處Peak2的變化反映多肽骨架結(jié)構(gòu)熒光特征,同時反映蛋白二級結(jié)構(gòu)特征。
選擇PVOC物質(zhì)組單分子(Dt,La和Nt)分別在BLF上的最佳結(jié)合模型進行配體與蛋白的分離,將蛋白與配體分別導(dǎo)入到分子動力學(xué)模擬軟件中,將蛋白置于盒子中心且距離盒子邊緣3 nm,采用AMBER3力場,并向盒子中填充TIP3P周期性水模型,并添加Na+/Cl-以中和電荷,保證體系的穩(wěn)定性。能量優(yōu)化首先采用最陡下降法進行1000步能量優(yōu)化,再采用共軛梯度法進行2000步能量優(yōu)化,之后再進行壓力和溫度平衡。最后系統(tǒng)溫度為298 K,時間步長設(shè)置為2.5 fs。每隔100 ps保存一次能量和坐標(biāo)信息,體系進行100 ns的非限制動力學(xué)模擬。非鍵分子間作用距離截斷值設(shè)置為10.0 ?,每100 ps保存一次能量和坐標(biāo)信息。結(jié)合能計算采用MM/PBSA方法[26]。最后對100 ns模擬結(jié)果進行Cα原子的均方根偏差(root mean square deviation,RMSD)和氨基酸殘基均方根浮動(root mean square fluctuation,RMSF)分析,以此判斷對接模型的構(gòu)象穩(wěn)定性。
方法學(xué)考察結(jié)果表明,各共有峰的相對保留時間及相對峰面積RSD均<3%,說明儀器的精密度、穩(wěn)定性和重復(fù)性良好。以出峰最多且峰型較完整的一級以色列青柚揮發(fā)物作為樣品對照峰,測定S1~S9 PVOC物質(zhì)組的總離子流色譜(total ionic chromatography,TIC)(圖2A),共篩選出21種共有成分(表1);通過峰面積歸一化法確定PVOC的相對含量,并采用平方和法和歐氏距離進行聚類分析,經(jīng)聚類分析篩選出Dt,La和Nt等活性PVOC物質(zhì)組特征成分[27]。利用HS-SPME/GC-MS測定BLF對柚皮PVOC物質(zhì)組平衡吸附的GC-MS總離子流圖(圖2B),BLF對柚皮PVOC物質(zhì)組平衡吸附的GC-MS數(shù)字化指紋圖譜見表2。
午飯后,辦公室沒人,淼哥坐在辦公桌前看毛姆的《刀鋒》。娟妹一陣風(fēng)似的跑過來坐下興奮地說:“淼哥、淼哥,剛吃飯的時候刷手機,看到一則新聞?wù)f是,一男子三亞游泳,水里擼管致10名女子懷孕。我的天啦,嚇?biāo)缹殞毩?,差點兒沒讓我把剛吃下的雞腿吐出來。你說我們總是遇到那么多不懷孕來做輔助生育的,她們這也太好懷孕了吧?真是人比人,氣死人?!?/p>
Fig.2 Total ion chromatography of volatile organic compounds(PVOCs)of 9 pomelo peels before(A)and after adsorption with BLF(B).S1-S3,S4-S6 and S7-S9:the first,second and third grade Guanxi pomelo(S1-S3),South African grapefruit(S4-S6)and Israel green pomelo(S7-S9),respectively;R:contrast fingerprint of volatile compounds in pomelo peels.
Tab.1 ldentification results of peaks of PVOCs in 9 pomelo peels in Fig.2A
Tab.2 Digital fingerprint of adsorption and binding degree of common aroma between BLF and PVOCs of 9 pomelo peels
由圖2可知,排除溶劑干擾,9種柚皮的PVOC在與BLF溶液平衡吸附后,指紋圖譜中峰高均有不同程度降低,表明BLF吸附結(jié)合柚皮PVOC的能力較強?,g溪蜜柚和南非葡萄柚的共有特征峰峰高明顯降低,由于出峰位置基本未變,初步判斷該成分與BLF進行結(jié)合。比較圖2A和2B中共有峰峰高并結(jié)合表2中緩沖液與BLF溶液對揮發(fā)物吸附數(shù)據(jù),可見BLF溶液對9種柚皮的PVOC的吸附量>緩沖液對揮發(fā)物的吸附量,因此可排除溶劑吸附揮發(fā)物的影響。
對BLF與9種柚皮PVOC共有吸附結(jié)合程度結(jié)果進行聚類分析,以組間分類距離為橫坐標(biāo),樣品編號為縱坐標(biāo)繪制聚類分析圖(圖3)。結(jié)果在組間距離為10時,存在3條直線能夠連接所有樣品組分,因此PVOC與BLF的吸附結(jié)合程度也被分為3類,即一、二和三級以色列青柚(S7~S9)PVOC是第一類;一、二和三級南非葡萄柚(S4~S6)PVOC為第二類;一、二和三級琯溪蜜柚(S1~S3)PVOC則是第三類。根據(jù)表2分別計算3類PVOC與BLF的吸附結(jié)合程度總和,發(fā)現(xiàn)琯溪蜜柚PVOC與BLF的吸附結(jié)合程度最強是27.492,其次是以色列青柚(21.856)和南非葡萄柚(17.280)。
Fig.3 Systematic cluster analysis tree of degree of common aroma adsorption and binding between BLF and PVOCs of 9 pomelo peels
由建立的PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合的分子模型(圖4)可知,3種PVOC單分子Dt,La和Nt均與BLF上的活性位點Trp560存在氫鍵及不同類型的疏水作用力(圖4B~D)。疏水性配體Nt的羰基氧以4.54 ?的距離與BLF上的Thr636產(chǎn)生氫鍵作用,并被BLF中的Trp560,Asp508,Asp509,Glu521,Lys522,Glu353,Arg531,Ala558,Thr636,Glu635,Lys637,Thr527,Gly528,Lys520形成的疏水封閉球型包裹。
Fig.4 Optimal conformation of BLF combined with PVOCs.A:distribution of PVOCs on BLF;B,C and D:molecular docking model of PVOCs monomolecular Dt,La and Nt binding with BLF,respectively.
La的2個酯基氧分別以5.77 ?和5.74 ?的距離與BLF上的Trp560和Arg531產(chǎn)生氫鍵作用,整個La分子被包裹在BLF中由Trp560,Thr636,Ser519,Thr527,Leu639,Gly525,Tyr524,Gly528,Glu521,Lys522,Arg531及Ala558形成的疏水口袋中。Dt結(jié)構(gòu)中不存在氧原子,與BLF無氫鍵作用,但其上的雙鍵及環(huán)己烯基與BLF上的Trp560和Ala558聯(lián)合產(chǎn)生交叉疏水作用,同時周圍還存在Thr636,Thr527和Arg531等范德華力輔助結(jié)合作用。
由熒光譜(圖5)可見,Nt和PVOC物質(zhì)組混合液均能強烈猝滅BLF的內(nèi)源熒光,由于Dt和La對BLF內(nèi)源熒光的猝滅效果相較于Nt不明顯,因此未展示結(jié)果。對比圖5A和5B可看出,在相同的濃度比條件下,PVOC物質(zhì)組對BLF內(nèi)源熒光的猝滅程度強于Nt。在進行的10次滴定過程中,BLF的內(nèi)源熒光強度共降低了372,同時引起B(yǎng)LF熒光發(fā)射譜紅移34 nm。表明PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合后,BLF的Tyr殘基所處的微環(huán)境疏水性降低,極性增加。從而推斷PVOC物質(zhì)組與BLF發(fā)生了較強的結(jié)合作用。對比圖5A和5B可以看出,Nt與BLF的相互作用則無PVOC物質(zhì)組強烈,前者引起B(yǎng)LF熒光猝滅的程度是后者的1/2倍,且未引起B(yǎng)LF熒光發(fā)射峰紅移或藍(lán)移現(xiàn)象。表明Nt與BLF間的相互作用對BLF結(jié)合位點氨基酸殘基的微環(huán)境影響較小。
Fig.5 Fluorescence spectra and Hill equation fitting curve of BLF combined with Nt and PVOCs mix.A and B:the fluorescence spectra of BLF combined with Nt and PVOCs at 298 K;C and D:fitting curves of Hill equation for BLF+Nt system and BLF+PVOCs system at 298 and 310 K.Curves 1→10 correspond to different concentrations of PVOCs(0-8.64×10-6mol·L-1,pH 7.4).The variation of fluorescence spectra at 310 K is similar to that at 298 K,not given in the figure.
從圖5C和5D可以看出,溫度升高時,Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF的結(jié)合位點數(shù)n值(方程斜率值)增高,分別從2.03,2.23升高到2.58與2.59。表明PVOC分子與蛋白相互作用時溫度增大(蛋白活性范圍內(nèi)),PVOC分子熱運動劇增,觸碰蛋白的活性位點機會增多。
由圖5C和5D中Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF作用后R2高線性趨勢可排除同時發(fā)生靜態(tài)和動態(tài)猝滅現(xiàn)象的可能性[28-29]。此外,PVOC物質(zhì)組與BLF作用后Kq均高于2×1010L·mol·s-1,證實二者的結(jié)合是靜態(tài)猝滅機制。Hill方程對熒光猝滅數(shù)據(jù)的擬合結(jié)果見表3。Dt,La,Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合的nH值分別為 1.64,1.38,2.03和2.23,Dt和La與BLF結(jié)合的結(jié)合位點數(shù)更接近1,而物質(zhì)組和Nt與BLF結(jié)合的結(jié)合位點數(shù)大于2。表明Dt和La在BLF中存在獨立結(jié)合位點,而物質(zhì)組和Nt在BLF中則有多個結(jié)合位點且依然存在協(xié)同關(guān)系。此外,Dt,La,Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF作用后R2均具有較高的線性相關(guān)度,同時Kq值均高于2×1010L·mol·s-1,進一步表明Dt,La,Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF形成復(fù)合物是靜態(tài)猝滅機制。
Tab.3 Binding characteristics of BLF with Dt,La,Nt and PVOCs mix at 298 K by fitting fluorescence quenching data with Stern-Volmer and double logarithmic model and Hill model
由Van't Hoff方程及Gibbs-Helmholtz方程計算所得各體系焓變ΔH、自由能變ΔG和熵變ΔS結(jié)果見表4。PVOC物質(zhì)組與BLF的自由能變ΔG均為負(fù)值,以焓為驅(qū)動力自發(fā)結(jié)合,且隨溫度升高,該自發(fā)趨勢增大。此外,Dt+BLF,Nt+BLF和PVOCs mix+BLF體系中ΔH<0,ΔS<0,表明范德華力和氫鍵是其主要分子間相互作用力。而La+BLF體系中ΔS>0,ΔH<0,表明疏水作用力和范德華力是其主要分子間相互作用力。與圖4分子對接顯示的PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合的主要作用力類型一致。
Tab.4 Spontaneous tendency and main binding force types of Dt,La,Nt and PVOCs mix with BLF
分子間作用的能量轉(zhuǎn)移機制分為輻射和非輻射2種,前者會導(dǎo)致生物大分子熒光峰形發(fā)生畸變,而后者不會導(dǎo)致生物大分子的熒光發(fā)射峰峰形發(fā)生畸變。PVOC與BLF相互作用的熒光光譜中,BLF的熒光發(fā)射峰形狀未發(fā)生畸變(圖5),可判斷Dt,La和Nt及PVOC物質(zhì)組與BLF間的作用熒光譜為非輻射能量轉(zhuǎn)移。根據(jù)的偶極-偶極非輻射能量轉(zhuǎn)移理論,得到Dt,La和Nt及PVOC物質(zhì)組與BLF的結(jié)合距離r(圖6)分別為3.99,4.76,1.27和1.64 nm。以上4個體系通過計算得出0.5R0<r<1.5R0,即PVOC與BLF間的作用距離均<7 nm,說明PVOC與BLF間的作用為短程分子間作用,進一步驗證了PVOC與BLF間發(fā)生了分子間作用,同時也說明Dt,La和Nt與BLF的能量轉(zhuǎn)移主要是通過非輻射熒光共振能量轉(zhuǎn)移進行的。
Fig.6 Fluorescence-UV overlapping spectra of Dt(A),La(B),Nt(C)and PVOCs(D)combined with BLF.
將得出的CD光譜數(shù)據(jù)通過Origin2021軟件進行可視化分析,如圖7所示。
Fig.7 Circular dichrogram of BLF combined with PVOCs.A-D:the change of circular dichromatography before and after BLF was combined with Dt,La,Nt and PVOCs mix;E:the change of the proportion of α-helix,β-sheet,β-turn and other secondary structure in BLF.
Dt和La分別與BLF結(jié)合后,BLF α-螺旋結(jié)構(gòu)的負(fù)帶特征峰增強,β-折疊結(jié)構(gòu)的正帶特征峰增強(圖7A和7B),α-螺旋結(jié)構(gòu)和β-折疊結(jié)構(gòu)所占比例均有所增大(圖7E)。Nt與BLF結(jié)合后,BLF的α-螺旋負(fù)帶特征峰削弱,而對β-折疊結(jié)構(gòu)在190~200 nm處的正帶特征峰正性增強(圖7C),說明Nt的介入使BLF的α-螺旋結(jié)構(gòu)減少,β-折疊結(jié)構(gòu)增加(圖7E)。而PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合則使得α-螺旋負(fù)帶特征峰負(fù)性和在190~200 nm處的正帶特征峰正性增加,說明其與BLF結(jié)合后導(dǎo)致BLF的α-螺旋松動和β-折疊結(jié)構(gòu)增多。
BLF與Nt和PVOC物質(zhì)組間作用前后的三維熒光光譜見圖8。與二維熒光結(jié)果一致,Nt與PVOC物質(zhì)組均能有效猝滅BLF內(nèi)源熒光;同樣,由于Dt和La對BLF內(nèi)源熒光的猝滅效果相較于Nt不明顯,因此結(jié)果未展示。BLF+Nt、BLF+PVOC物質(zhì)組相互作用體系三維熒光光譜中2個主要檢測峰Peak1和Peak2的變化結(jié)果見表5。表5中可以看出BLF由于Nt和物質(zhì)組的介入,使得λEX=230 nm處Peak2有較明顯的紅移,且熒光強度降低也較為顯著,這說明,Nt和物質(zhì)組對BLF的二級結(jié)構(gòu)影響較大,導(dǎo)致BLF中大量的α-螺旋松動及部分β-折疊結(jié)構(gòu)增加,這與圓二色性光譜所得結(jié)果高度一致。
Tab.5 Three-dimensional fluorescence spectra of BLF before and after combination with Nt and PVOCs mix
如等高線圖(圖8)所示,Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合后Peak1的熒光強度下降,且伴隨輕微的紅移,說明Nt和PVOC物質(zhì)組與BLF發(fā)生了結(jié)合,并分別結(jié)合在BLF的熒光基團當(dāng)中。同時也說明相互作用引起蛋白熒光基團殘基微環(huán)境的改變,對其三級結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了影響。結(jié)合圖4分子對接結(jié)果,Nt結(jié)合在BLF上的Trp560殘基上,結(jié)合距離為3.60 ?。而Trp560是BLF上的熒光基團殘基。表明光譜實驗與分子模擬的結(jié)果一致。
Fig.8 3D contour spectra of BLF combined with Nt(A)and PVOCs mix(B)
為了探索PVOC物質(zhì)組與不同蛋白受體相互作用規(guī)律,分別對BLF受體蛋白單體體系和由分子對接甄選出的Dt+BLF,La+BLF,Nt+BLF最佳結(jié)合模型體系進行100 ns的分子動力學(xué)模擬,在各個體系中均以初始蛋白構(gòu)象為參照,在模擬時間內(nèi)對系統(tǒng)Cα原子的RMSD進行計算。BLF蛋白質(zhì)單體系的主鏈RMSD平均值為0.208 ?,>0.2 ?,各二元復(fù)合物體系Dt+BLF,La+BLF,Nt+BLF的蛋白質(zhì)主鏈RMSD平均值分別為0.187 ?,0.191 ? 和0198 ?(圖9A~C),所有結(jié)果均<0.2 ?,表明所有的動態(tài)模擬軌跡平衡性是合理的,而且當(dāng)PVOC物質(zhì)組單分子進入BLF蛋白質(zhì)活性位點后,使得二元復(fù)合物體系的穩(wěn)定性增強。
Fig.9 Mean values of RMSD and RMSF for C α atoms of various systems.A-C:the mean root mean square deviation(RMSD)values for the Cα atoms of systems of BLF and Dt+BLF,BLF and La+BLF,and BLF and Nt+BLF.C-E:the mean root mean square fluctuation(RMSF)values for the Cα atoms of systems of BLF and Dt+BLF,BLF and La+BLF,and BLF and Nt+BLF.
Dt+BLF,La+BLF和Nt+BLF最佳結(jié)合模型的穩(wěn)定性通過分子動力學(xué)模擬估算后,對各個體系分子動力學(xué)平衡后氨基酸殘基波動情況進行分析(圖9A~C)。結(jié)果表明,BLF在被Dt,La和Nt分子進攻結(jié)合前,整個氨基酸殘基RMSF波動值波動較大,當(dāng)Nt配體分子進入BLF蛋白活性位點之后,RMSF波動值的波動幅度減弱,說明BLF氨基酸殘基能夠與Nt或溶劑產(chǎn)生某種程度的結(jié)合作用。結(jié)合對接可視化結(jié)果,Nt與BLF Thr636殘基以4.54 ?的距離產(chǎn)生氫鍵作用(圖4D)可能導(dǎo)致了BLF構(gòu)象的改變。如圖9D所示,Dt進入BLF蛋白活性位點后,BLF整個氨基酸殘基RMSF波動值波動幅度減小,且BLF Trp560殘基RMSF波動值明顯減小,說明Dt的介入使得BLF蛋白氨基酸殘基剛性增大。結(jié)合圖4B對接可視化結(jié)果,Dt的雙鍵及環(huán)己烯基于BLF Trp560和Ala558殘基聯(lián)合產(chǎn)生交叉疏水作用可能導(dǎo)致了BLF構(gòu)象的變化,這與CD光譜得出的結(jié)論較為一致。
本研究利用HS-SPME/GC-MS、多光譜驗證、理論計算及分子建模研究柚皮PVOC物質(zhì)組與BLF的相互作用,發(fā)現(xiàn)BLF對柚皮PVOC物質(zhì)組有較強的親和力,結(jié)合常數(shù)為1.42×105L·mol-1。BLF對烯類PVOC的親和力及結(jié)合力均較強,對酮類及酯類的均較弱。但若將烯類、酯類及酮類同時與BLF進行結(jié)合作用,BLF對柚皮PVOC物質(zhì)組的親和力及結(jié)合力的總和增大,說明柚皮PVOC物質(zhì)組對BLF的結(jié)合作用可能存在強抵消和弱助長的協(xié)同作用關(guān)系。在BLF作為載體時,與BLF親和力較低但活性高的PVOC單分子能與親和力較高的PVOC單分子混合作用于BLF載體蛋白,這可能為提高柚皮PVOC物質(zhì)組單分子的生物利用度提供可行途徑。
BLF與柚皮PVOC物質(zhì)組結(jié)合后,BLF的Tyr殘基所處的微環(huán)境疏水性降低,極性增加,PVOC分子熱運動劇增,觸碰蛋白的活性位點機會增多。Dt和La在BLF中存在獨立結(jié)合位點與BLF形成復(fù)合物是靜態(tài)猝滅機制,而物質(zhì)組和Nt在BLF中則有多個結(jié)合位點且依然存在協(xié)同關(guān)系。Dt,La,Nt和柚皮PVOC物質(zhì)組與BLF間的作用熒光譜為非輻射能量轉(zhuǎn)移。二級結(jié)構(gòu)上PVOC物質(zhì)組與BLF結(jié)合使得α-螺旋負(fù)帶特征峰負(fù)性和在190~200 nm處的正帶特征峰正性增加,α-螺旋松動和β-折疊結(jié)構(gòu)增多??紤]到BLF由于小分子的嵌入結(jié)合,可能導(dǎo)致的蛋白三維結(jié)構(gòu)疏松不利于保持蛋白的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性,本研究對蛋白結(jié)合柚皮PVOC物質(zhì)組前后進行了分子動力學(xué)模擬,從模擬的RMSD結(jié)果可以得出,BLF與柚皮PVOC物質(zhì)組的結(jié)合對蛋白的分子結(jié)構(gòu)不會有較大影響,反而在于物質(zhì)組結(jié)合后蛋白的構(gòu)象更趨于穩(wěn)定;但是通過RMSF結(jié)果發(fā)現(xiàn),由于物質(zhì)組的結(jié)合,BLF分子運動的自由度受到了限制。這也可能對維持蛋白的結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性有一定的促進作用。另外,光譜及分子模擬共同評估了柚皮PVOC物質(zhì)組與BLF的結(jié)合作用的結(jié)合距離、結(jié)合作用力、結(jié)合位置、結(jié)合前后蛋白的二和三級結(jié)構(gòu)變化及束縛PVOC氣體分子的關(guān)鍵氨基酸殘基。組學(xué)角度下綜合闡述柚皮PVOC物質(zhì)組與載體蛋白的選擇結(jié)合的分子機制,可為深入研究活性化合物的藥理學(xué)及毒理學(xué)提供有益參考。