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      紫荊、湖北紫荊中單寧化學(xué)結(jié)構(gòu)及其抗氧化活性研究

      2023-01-07 03:52:24王明豪張靜涵趙京軻張亮亮駱嘉言
      關(guān)鍵詞:甲醇溶液紫荊莢果

      王明豪, 張靜涵, 趙京軻, 張亮亮, 駱嘉言*

      (1.南京林業(yè)大學(xué) 材料科學(xué)與工程學(xué)院,江蘇 南京 210037; 2.華僑大學(xué)先進(jìn)碳轉(zhuǎn)化技術(shù)研究院,福建 廈門 361021)

      紫荊,為本土豆科植物,在我國有著廣泛的栽培,有重要的藥用價(jià)值。湖北紫荊,又名巨紫荊,為紫荊的近屬種,是一種主要用于園林綠化的喬木,尚無對其化學(xué)成分進(jìn)行研究的報(bào)道,有待于對其開展研究從而進(jìn)行開發(fā)利用?,F(xiàn)有研究表明,紫荊中富含黃酮類化合物[1],而黃酮類化合物與植物中的縮合單寧有著密切的生源關(guān)系??s合單寧又稱聚黃烷醇類多酚,是植物體內(nèi)產(chǎn)生的一類衍生于黃烷化合物的多酚類物質(zhì),為羥基黃烷類單體組成的縮合物[2],絕大部分為多聚原花色素,是一種多分散體系。實(shí)際上人們很難通過分離純化獲得單一結(jié)構(gòu)的純的多聚原花色素,往往只能得到相對分子質(zhì)量在一定范圍內(nèi)的多聚原花色素,因而對所獲得的多聚原花色素組分進(jìn)行準(zhǔn)確的結(jié)構(gòu)特征描述是非常重要的[3]。多酚類化合物作為植物的次生代謝產(chǎn)物,廣泛存在于植物界,可以幫助植物免受病原菌、真菌及昆蟲的侵害[4]。此外,單寧還具有多種生物活性,抗氧化活性便是其中之一[5]。本研究對紫荊和湖北紫荊不同部位縮合單寧的含量進(jìn)行了測定,通過NMR、RP-HPLC技術(shù)對紫荊及湖北紫荊單寧化學(xué)結(jié)構(gòu)開展研究,并對其抗氧化能力進(jìn)行了測定,以期為更好地開發(fā)利用紫荊、湖北紫荊資源提供理論基礎(chǔ)。

      1 實(shí) 驗(yàn)

      1.1 原料、試劑與儀器

      紫荊(CercischinensisBunge)、湖北紫荊(CercisglabraPampan.)葉片2021年7月采于南京林業(yè)大學(xué)校園內(nèi),湖北紫荊莢果2021年9月采于南京林業(yè)大學(xué)校園內(nèi),洗凈后于-20 ℃保存。丙酮、甲醇、鹽酸、醋酸、醋酸鈉、正丁醇、芐硫醇、三氟乙酸、三氯化鐵,均為國產(chǎn)分析純試劑;乙腈為色譜純;色譜填料Sephadex LH-20,Cytiva公司;氘代丙酮、氘代水,北化二廠;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、 2,4,6-三吡啶基三嗪(TPTZ),Sigma公司;丁基羥基茴香醚(BHA,純度98%)、抗壞血酸(Vc),分析標(biāo)準(zhǔn)品,上海麥克林生化科技有限公司;一級水。

      JJ-2BS組織搗碎機(jī),中國VRERA公司;FD-1型冷凍干燥機(jī),日本EYEIA公司;Cary 8454型紫外/可見分光光度計(jì),美國Agilent公司;AvanceⅢ 600MHz高分辨核磁共振儀,德國Bruker公司;LTQ Orbitrap XL液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀,美國Thermo公司。

      1.2 縮合單寧的提取與純化

      新鮮紫荊葉、湖北紫荊葉片及莢果洗凈后-20 ℃冰凍,凍干機(jī)中凍干后用組織搗碎機(jī)研磨成粉,儲藏于-20 ℃?zhèn)溆?。?0 g植物材料粉末,加入200 mL 70%(體積分?jǐn)?shù),下同)丙酮,浸提1 h,重復(fù)3次,合并提取液在45 ℃下旋蒸去除丙酮和部分水,水相冷凍干燥后得到單寧粗提物。粗提物用少量50%(體積分?jǐn)?shù),下同)甲醇溶液溶解后上Sephadex LH-20色譜柱,用50%甲醇溶液淋洗去除雜質(zhì),70%丙酮溶液洗脫并收集純化的單寧組分。45 ℃旋轉(zhuǎn)減壓蒸發(fā)除去丙酮和部分水,剩余水相冷凍干燥,即得純化單寧。樣品置于-20 ℃下保存?zhèn)溆?,所有后續(xù)分析均使用該純化后的樣品。

      1.3 可溶縮合單寧含量的測定

      1.3.1樣品溶液的制備 取0.1 g 3種植物原料粉末,與2 mL 70%丙酮溶液混合,于25 mL容量瓶中用甲醇定容,室溫下避光保存。

      1.3.2可溶縮合單寧含量的測定 參考文獻(xiàn)[6]的方法,取1 mL過濾后的樣品溶液,加入6 mL正丁醇-鹽酸(體積比95 ∶5,下同)溶液,沸水浴處理75 min。冷卻至室溫后在550 nm處用分光光度計(jì)測定其吸光度,甲醇作為空白對照。

      1.3.3標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 為得到更為真實(shí)的單寧含量測定結(jié)果,以純化后的植物單寧作為標(biāo)準(zhǔn)品,純化后單寧經(jīng)HPLC法檢測,純度均達(dá)到95%以上。將純化得到的植物單寧樣品配置成質(zhì)量濃度梯度為0、 100、 200、 300、 400和500 mg/L的甲醇溶液,各質(zhì)量濃度取1 mL,加入6 mL正丁醇-鹽酸溶液,按上述方法處理后,測定吸光度并繪制成相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)曲線,可得紫荊葉片單寧含量標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.965 2x+0.014 6(R2=0.996 5)、湖北紫荊葉片單寧含量標(biāo)準(zhǔn)曲線y=1.043x+0.035 7(R2=0.99)、湖北紫荊莢果單寧含量標(biāo)準(zhǔn)曲線y=1.034 4x-0.003 6(R2=0.993 4)。

      1.4 可溶縮合單寧結(jié)構(gòu)分析

      1.4.1液體13C NMR分析 參考文獻(xiàn)[7]的方法,縮合單寧的液體13C NMR用AvanceⅢ 600MHz高分辨核磁共振儀測定。120 mg的純化縮合單寧用1 mL體積分?jǐn)?shù)為95%的氘代丙酮溶液溶解后,轉(zhuǎn)移到直徑5 mm的核磁管中;在反轉(zhuǎn)門控去偶條件下測定13C NMR譜,掃描頻率為125.78 MHz,脈沖角為45°,延遲時(shí)間為3 s。

      1.4.2HPLC-MS分析 樣品在HPLC分析之前,需先經(jīng)過芐硫醇的醇解。首先配置3.3%(體積分?jǐn)?shù),下同)的鹽酸-甲醇溶液、 5%(體積分?jǐn)?shù),下同)芐硫醇-甲醇溶液及5 g/L的純化縮合單寧甲醇溶液。反應(yīng)時(shí),取50 μL樣品,50 μL 3.3%鹽酸-甲醇溶液和100 μL 5%芐硫醇-甲醇溶液,充分混勻后40 ℃水浴30 min,0.45 μm濾膜過濾。

      將經(jīng)芐硫醇硫解的樣品上機(jī)進(jìn)樣20 μL,色譜柱為Hypeisil Gold反相柱(100 mm×2.1 mm,5 μm),0.1%甲酸和乙腈為洗脫劑。流程設(shè)定如下:0~15 min,12%~80%乙腈(線性梯度);15~20 min,80%~95%乙腈;20~26 min,95%乙腈;26~27 min,12%乙腈;27~30 min,100%乙腈(線性梯度)。柱溫控制在25 ℃,洗脫液流速為0.5 mL/min,檢測波長為280 nm,紫外光譜檢測范圍設(shè)置在200~600 nm。

      ESI離子源負(fù)離子掃描;掃描范圍(m/z)為100~1 500;霧化器溫度350 ℃,霧化器流速10 L/min,霧化器壓力241.38 kPa,霧化器電壓3.5 kV。

      1.5 抗氧化活性分析

      1.5.1DPPH自由基清除率 DPPH自由基(DPPH·)清除率的測定參照Chen等[8]的方法,略作改動。配置500 mg/L 的純化單寧樣品甲醇溶液,并使用二倍稀釋法,得到質(zhì)量濃度為500、 250、 125、 62.5和31.25 mg/L 的系列樣品甲醇溶液,取不同質(zhì)量濃度的樣品溶液0.1 mL與質(zhì)量分?jǐn)?shù)0.004%的DPPH甲醇溶液3 mL于10 mL試管中,搖勻后室溫下靜置反應(yīng)30 min,使用紫外分光光度計(jì)在517 nm處測定吸光度(AS);以甲醇為空白對照,測定其在517 nm處的吸光度值(A0)。以BHA、Vc為陽性對照,配置500、 250、 125、 62.5和31.25 mg/L系列工作溶液,測定吸光度,按下式計(jì)算DPPH·清除率(η):

      η=(A0-AS)/A0×100%

      1.5.2總抗氧化能力 參考Benzie等[9]的方法,采用鐵離子還原/抗氧化能力(FRAP)分析法測定純化單寧樣品的總抗氧化能力。首先,將0.3 mol/L醋酸鈉緩沖溶液、 10 mmol/L TPTZ溶液和20 mmol/L FeCl3溶液以體積比10 ∶1 ∶1混合,配制TPTZ工作溶液。取質(zhì)量濃度為15.625~250 mg/L的各樣品、對照品溶液0.1 mL,加入3 mL TPTZ工作溶液,混勻后25 ℃反應(yīng)5 min,593 nm處測定吸光度值。

      配置0.2、 0.4、 0.6、 0.8和1.0 mmol/L的Vc標(biāo)準(zhǔn)液,以甲醇為空白對照。各標(biāo)準(zhǔn)溶液分別與TPTZ工作液反應(yīng)5 min,593 nm處測得吸光度值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,可得:y=1.279 6x+0.038 4(R2=0.999 3)。總抗氧化能力以達(dá)到相同抗氧化能力的Vc的量(mmol/g)來表示。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 可溶性縮合單寧含量

      經(jīng)測定,紫荊葉片、湖北紫荊葉片和湖北紫荊莢果3種植物原料的可溶縮合單寧質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為(151.56±13.64)、(96.75±13.96)和(198.12±7.24) mg/g。結(jié)果顯示:3種植物原料均具有較高的單寧含量,其中湖北紫荊莢果中可溶縮合單寧含量最高,紫荊葉片次之,湖北紫荊葉片中含量最低。

      2.2 可溶性縮合單寧的結(jié)構(gòu)分析

      2.2.113C NMR分析 通過13C NMR技術(shù)對縮合單寧進(jìn)行分析,可以得到其基本結(jié)構(gòu)單元的組成及其連接方式的信息。紫荊葉片、湖北紫荊葉片及莢果縮合單寧的液態(tài)13C NMR分析圖譜見圖1,相關(guān)化合物結(jié)構(gòu)式見圖2。結(jié)果分析參考已報(bào)道的解析圖譜峰信號的相關(guān)文獻(xiàn)[10-12]。

      圖1 紫荊葉片(a)、湖北紫荊葉片(b)和湖北紫荊莢果(c)縮合單寧13C NMR圖譜Fig.1 13C NMR spectra of condensed tannins from C. chinensis(a), C. glabra leaves(b) and pod(c)

      圖2 圖2 原花青素(PC)、原翠雀素(PD)和原天竺葵素(PP)的結(jié)構(gòu)Fig.2 Structure of procyanidin(PC), prodelphinidin(PD) and propelargonidin(PP)

      由圖1和圖2可知,δ157處的信號峰為PP或PD單元的C4’,而δ157~150間出現(xiàn)的峰值為PC或PD單元的C5、C7和C8a。δ146出現(xiàn)的峰值為PD單元的C3’和C5’,PC單元的C3’、C4’在δ145處出現(xiàn)峰值。PD的C4’與PC、PD的C1’均在δ131附近出現(xiàn)峰值。δ119出現(xiàn)的峰可認(rèn)定為PC單元的C6’,δ116 處出現(xiàn)的信號峰則為PC單元的C2’和C5’。δ110~90之間出現(xiàn)的聚集峰代表著PC單元的C8、C4a和C6以及PD單元的C4a、C6、C8、C2’和C6’,此外δ104~102處出現(xiàn)信號峰代表著A型連接的存在。δ90~70之間是縮合單寧結(jié)構(gòu)單元的C2,其出現(xiàn)的位置代表著黃烷-3-醇結(jié)構(gòu)單元的順式(2,3-cis)和反式(2,3-trans)結(jié)構(gòu)。以δ80為分界線,反式黃烷-3-醇單元C2的信號峰出現(xiàn)在δ85~80處,而順式黃烷-3-醇的信號峰則出現(xiàn)在δ80~75處。而順式反式對C3的化學(xué)位移并無太大影響,延伸單元C3順式和反式異構(gòu)體的信號峰均位于δ72處。δ36處的峰則代表著延伸單元的C4。此外,δ164、 147、 140、 122以及110等處峰值信號則表明縮合單寧結(jié)構(gòu)單元C3上存在有棓?;〈?。

      由圖譜分析可知,紫荊葉片、湖北紫荊葉片及莢果縮合單寧均由PC、PD、PP 3種基本結(jié)構(gòu)單元構(gòu)成。通常而言,由于PC單元B環(huán)的C3’、C4’和PD單元的C3’、C5’具有相同的弛豫時(shí)間和核歐沃豪斯效應(yīng),對二者峰面積積分可得到2種結(jié)構(gòu)單元的構(gòu)成比例。然而,通過分析圖譜可知,3種縮合單寧中均存有一定數(shù)量的棓?;〈瑮旛;螩3、C5的化學(xué)位移與PD結(jié)構(gòu)單元的C3、C5存在重疊,故而難以精確量化PC、PD單元的構(gòu)成比例。通過對比分析δ84及δ77的峰值可知,3種縮合單寧的結(jié)構(gòu)單元均主要呈順式異構(gòu)。

      2.2.2HPLC-MS分析 將縮合單寧樣品硫解后進(jìn)行RP-HPLC-ESI-MS分析,可以判斷其末端單元以及延伸單元的化學(xué)組成。芐硫醇作為親核試劑,在酸性條件下可以使縮合單寧得到有效的降解,破壞縮合單寧基本結(jié)構(gòu)單元的連接鍵,從而得到末端單元和延伸單元,其中末端單元以游離的黃烷-3-醇的形式解離出來,而延伸單元?jiǎng)t以芐硫醇加合物的形式存在。對經(jīng)芐硫醇硫解的3種植物縮合單寧樣品進(jìn)行RP-HPLC-ESI-MS分離鑒定,總離子流圖如圖3所示,參考文獻(xiàn)[13-15]對其末端單元及延伸單元與芐硫醇的加合物進(jìn)行了分析鑒定。

      1.兒茶素/表兒茶素catechin/epicatechin(C/EC); 2.棓兒茶素棓酸酯/表?xiàng)攦翰杷貤斔狨allocatechin gallate/epigallocatechin gallate(GCG/EGCG); 3.兒茶素棓酸酯/表兒茶素棓酸酯catechin gallate/epicatechin gallate(CG/ECG); 4.棓兒茶素/表?xiàng)攦翰杷仄S硫醚gallocatechin/epigallocatechin-benzylthioethers(GC/EGC-thio); 5.未知unknow; 6.兒茶素/表兒茶素芐硫醚C/EC-thio; 7.兒茶素/表兒茶素-阿福豆素/表阿福豆素C/EC-afzelechin/epiafzelechin(AF/EAF)圖3 紫荊葉片(a)、湖北紫荊葉片(b)和湖北紫荊莢果(c)縮合單寧HPLC-MS總離子流圖Fig.3 HPLC-MS total ion flow chromatograms of condensed tannins from C. chinensis(a), C. glabra leaves(b) and pod(c)

      在負(fù)離子模式下,化合物1的[M-H]-峰為m/z289.1,同時(shí)質(zhì)譜圖上還出現(xiàn)了m/z325.0[M+Cl]-的峰,m/z579.2的[2M-H]-峰,m/z615.1的[2M+Cl]-峰,與文獻(xiàn)[13]比對后鑒定為兒茶素/表兒茶素(C/EC)?;衔?的[M-H]-峰為m/z457.1,化合物3的[M-H]-峰為m/z441.1,參考相關(guān)文獻(xiàn)[14]可推測其可能為棓兒茶素棓酸酯/表?xiàng)攦翰杷貤斔狨?GCG/EGCG)及兒茶素棓酸酯/表兒茶素棓酸酯(CG/ECG)?;衔?的[M-H]-峰為m/z427.1,同時(shí)質(zhì)譜圖上還可以檢測到m/z303.0的[M-SC7H7-H2-H]-峰,m/z855.2的[2M-H]-峰;化合物6的[M-H]-峰為m/z411.1,同樣質(zhì)譜圖上可以檢測到m/z287.0的[M-SC7H7-H2-H]-峰,m/z823.2的[2M-H]-峰。與文獻(xiàn)[13]比對判定化合物4及化合物6分別為棓兒茶素/表?xiàng)攦翰杷仄S硫醚及兒茶素/表兒茶素芐硫醚的一系列同分異構(gòu)體?;衔?的[M-H]-峰為m/z563.1,參考文獻(xiàn)[15-16]推測其為由兒茶素/表兒茶素與阿福豆素/表阿福豆素(C/EC-AF/EAF)組成的B型連接的二聚黃烷-3-醇。根據(jù)主要色譜峰的保留時(shí)間、特征離子峰、分子質(zhì)量,將推測化合物總結(jié)于表1,其中尚有一種化合物無法辨別。

      表1 3種植物的縮合單寧HPLC-MS定性分析結(jié)果Table 1 Qualitative analysis results of condensed tannins from three plants by HPLC-MS

      根據(jù)質(zhì)譜鑒定結(jié)果可以推斷,3種單寧的末端單元均主要由C/EC構(gòu)成,并根據(jù)檢測出的黃烷-3-醇芐硫醚加合物可以判斷其延伸單元主要為C/EC及棓兒茶素/表?xiàng)攦翰杷亍4送赓|(zhì)譜圖中雖未檢測到阿福豆素/表阿福豆素芐硫醚的存在,但化合物7可能代表著由C/EC與AF/EAF組成的B型二聚黃烷-3-醇的存在,因而不能排除延伸單元中AF/EAF的存在。此外,結(jié)合文獻(xiàn)還鑒定出了GCG/EGCG及CG/ECG,表明3種單寧均存在棓酰基取代,與核磁結(jié)果相吻合。由此可知,3種縮合單寧均主要由原花青素及原翠雀素組成,且均存在著棓?;〈?/p>

      2.3 抗氧化活性分析

      2.3.1DPPH·清除能力 以50%自由基清除時(shí)抑制劑的質(zhì)量濃度(IC50)表示3種縮合單寧對DPPH·的清除能力。從圖4(a)可以看出,3種縮合單寧樣品對DPPH·均有較好的清除能力,IC50值均低于陽性對照組BHA(134.11 mg/L),其中紫荊葉片及湖北紫荊莢果縮合單寧表現(xiàn)出較為突出的DPPH·清除能力,其IC50值分別為69.67和67.02 mg/L,略低于陽性對照組Vc(76.65 mg/L);而湖北紫荊葉片縮合單寧的DPPH·清除能力則要稍弱一些,其IC50值為97.70 mg/L,要顯著高于Vc。

      圖4 不同樣品中單寧對DPPH·的清除能力(a)及FRAP(b)Fig.4 DPPH· scavenging activities(a) and FRAP(b) of tannins from different samples

      2.3.2總抗氧化能力 從圖4(b)和表2可以看出,隨著單寧質(zhì)量濃度增加,所有樣品的吸光度值均有所提高,表2中對應(yīng)的 FRAP值則在一定范圍內(nèi)波動。

      表2 不同樣品中單寧的總抗氧化能力Table 2 Total antioxidant activities of tannins from different samples

      由表2可知,當(dāng)質(zhì)量濃度為125 mg/L以下時(shí),紫荊葉片單寧的FRAP值要高于陽性對照BHA及其他兩種單寧樣品;當(dāng)質(zhì)量濃度為125 mg/L及以上時(shí),各組FRAP值趨于穩(wěn)定,此時(shí)各組吸光度值的大小關(guān)系為:BHA>紫荊葉片單寧>湖北紫荊葉片單寧>湖北紫荊莢果單寧。

      取125 mg/L時(shí)的FRAP值作為總抗氧化能力值。由表2結(jié)果可以發(fā)現(xiàn),此時(shí),3種植物縮合單寧樣品的FRAP值都要低于陽性對照BHA,表明樣品的總抗氧化能力要弱于BHA。在3種樣品中,紫荊葉片單寧表現(xiàn)出了最好的總抗氧化性,其FRAP值為(5.56±0.08)mmol/g,僅略低于陽性對照BHA(6.51±0.15 mmol/g)。而湖北紫荊果莢單寧雖然在DPPH自由基清除能力測試中表現(xiàn)良好,但其總抗氧化能力最弱,F(xiàn)RAP值僅為(3.51±0.39) mmol/g。

      3 結(jié) 論

      3.1紫荊葉片、湖北紫荊葉片和莢果的單寧含量測定結(jié)果表明:3種紫荊原料中可溶性縮合單寧質(zhì)量分?jǐn)?shù)均較高,在96.75~198.12 mg/g之間。

      3.2通過13C NMR和HPLC-MS分析方法對縮合單寧的化學(xué)結(jié)構(gòu)進(jìn)行了分析,結(jié)果表明:3種縮合單寧均主要由原花青素(PC)及原翠雀素(PD)組成,且均存在著棓?;〈?。

      3.33種縮合單寧樣品均表現(xiàn)出了一定的抗氧化活性,其中紫荊葉片及湖北紫荊莢果單寧對DPPH·表現(xiàn)出較為突出的清除能力,其IC50值分別為69.67和67.02 mg/L,略低于陽性對照Vc(76.65 mg/L);紫荊葉片單寧還表現(xiàn)出良好的總抗氧化能力,是值得開發(fā)的天然抗氧化劑。

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