王權(quán)鵬,黃崇杰,曹偉蘭,洪 滉,尹商羽,錢朦敖,劉長寶
炎癥性腸?。╥nflammatory bowel disease, IBD)是以腸黏膜屏障功能受損、黏膜通透性增加為特征的非特異性慢性腸道炎性疾病,近年其發(fā)病率升高,但是目前炎癥性腸病的具體發(fā)病機(jī)制仍不清楚[1]。熱休克蛋白70(heat shock protein 70,HSP70)結(jié)構(gòu)高度保守,通過分子伴侶作用介導(dǎo)蛋白質(zhì)的轉(zhuǎn)運(yùn)和正確裝配,調(diào)節(jié)靶蛋白的活性和功能,協(xié)助修復(fù)在炎癥、應(yīng)激狀態(tài)下折疊結(jié)構(gòu)改變的蛋白損傷[2-3]。有研究表明,HSP70參與慢阻肺、腎小管的炎癥反應(yīng)并起重要作用,但其在腸道炎癥中的作用機(jī)制尚不清楚[4-5]。激活Toll樣受體4 (toll-like receptor 4, TLR4)是觸發(fā)促炎細(xì)胞因子釋放的主要途徑,本研究以過表達(dá)和低表達(dá)HSP70的Caco-2細(xì)胞為觀察對(duì)象,研究HSP70與TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的關(guān)系,探討HSP70在腸道炎癥發(fā)生發(fā)展中的分子機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞與試劑 Caco-2細(xì)胞系購自上?;鄯f生物科技有限公司。DMEM培養(yǎng)基(貨號(hào)11054-001)及胎牛血清(貨號(hào)16400-044)購自德國Gibco公司,RIPA裂解液(貨號(hào)P0013D)、BCA蛋白定量試劑盒(P0012)、EdU-555細(xì)胞增殖檢測試劑盒(貨號(hào)C0075S)購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司,Western blotting實(shí)驗(yàn)中的HSP70、MyD88、P65、β-actin一抗抗體(貨號(hào)10995-1-AP、23230-1-AP、14220-1-AP、20536-1-AP)購自武漢三鷹生物技術(shù)有限公司,TLR4一抗抗體(貨號(hào)ab13556)購自艾博抗(上海)貿(mào)易有限公司,ECL試劑盒購自伯樂(中國)有限公司。TaKaRa MiniBEST總RNA提取試劑盒(貨號(hào)9767)、PrimeScript RT試劑盒(RR047A)及TB?PreMix Ex TaqTMII試劑盒購自寶日醫(yī)生物技術(shù)(北京)有限公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng) Caco-2細(xì)胞用含有10%胎牛血清及100 U/mL青霉素和100 mg/mL鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基在37 ℃、5%CO2的條件下培養(yǎng),待細(xì)胞匯合度至培養(yǎng)瓶80%左右進(jìn)行傳代。
1.2.2 慢病毒感染 用完全培養(yǎng)基制備密度為3×104個(gè)/mL的細(xì)胞懸液接種到培養(yǎng)板中,37 ℃培養(yǎng)24 h,至細(xì)胞匯合度為20%~30%。更換新的培養(yǎng)基并加入相應(yīng)的慢病毒感染增強(qiáng)液和病毒量。37 ℃培養(yǎng)12 h后更換為常規(guī)培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。在感染72 h,通過熒光顯微鏡觀察細(xì)胞的感染效率。然后用嘌呤霉素(2 μg/mL)篩選出感染成功的穩(wěn)定細(xì)胞株,篩選時(shí)間超過7 d。根據(jù)所用的慢病毒不同將細(xì)胞分為HSP70過表達(dá)組、HSP70過表達(dá)陰性對(duì)照組、HSP70低表達(dá)組、HSP70低表達(dá)陰性對(duì)照組和空白對(duì)照組(未加慢病毒的Caco-2細(xì)胞)。
1.2.3 細(xì)胞炎癥誘導(dǎo) 在DMEM中加入脂多糖(lipopolysaccharide, LPS),使其濃度達(dá)到 1 μg/μL,取處于對(duì)數(shù)期的各組Caco-2細(xì)胞在37 ℃的含有5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,模擬炎癥反應(yīng),未加入LPS刺激的細(xì)胞作為對(duì)照。
1.2.4 ELISA檢測IL-1β及TNF-α水平 將各組細(xì)胞在4 ℃,以1000 ×g離心10 min,然后取等量上清液分裝于EP管。根據(jù)制造商的操作說明,配置洗滌液、生物素化抗體工作液及酶結(jié)合物工作液來檢測上清液中IL-1β及TNF-α水平。
1.2.5 定量PCR 用TaKaRa MiniBEST總RNA提取試劑盒提取Caco-2細(xì)胞的總RNA后,使用含有g(shù)DNA Eraser的PrimeScript RT試劑盒反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA?;虻谋磉_(dá)水平使用TB?PreMix Ex TaqTMII試劑盒進(jìn)行熒光標(biāo)記后,檢測熒光表達(dá),引物見表1。β-肌動(dòng)蛋白為內(nèi)源性參照,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。對(duì)目的基因表達(dá)進(jìn)行歸一化處理,數(shù)據(jù)用 2?ΔΔCT方法進(jìn)行分析。
表1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR采用的引物序列
1.2.6 Western blotting 細(xì)胞培養(yǎng)皿中加入50 μL的RIPA細(xì)胞裂解液冰上裂解15 min。離心15 min,吸取上清液棄去沉淀。使用BCA法進(jìn)行蛋白定量后,加入Loading Buffer后,在100 ℃下煮沸 10 min制備蛋白質(zhì)樣品。將15 μg蛋白上樣至SDS-PAGE 凝膠孔中進(jìn)行凝膠電泳后,60 V轉(zhuǎn)膜2 h,用5%脫脂奶粉進(jìn)行封閉后,依次孵育一抗和二抗,最后用ECL發(fā)光試劑盒進(jìn)行蛋白條帶顯像,Gel Image System 進(jìn)行拍照。以β-肌動(dòng)蛋白為內(nèi)參照,檢測結(jié)果以灰度值表示。
1.2.7 EdU比色法 在6孔板中按照3×104個(gè)/mL的密度鋪板。細(xì)胞培養(yǎng)過夜并且恢復(fù)到正常狀態(tài)后,LPS組加入所需的脂多糖處理,對(duì)照組不加刺激處理等。配制EdU工作液及Click反應(yīng)液。反應(yīng)后用Hoechst 33342室溫避光染色。洗滌后,用熒光顯微鏡在波長460 nm處觀察并拍照。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 使用SPSS 19.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料以表示,多組間比較采用方差分析,組間進(jìn)一步兩兩比較用LSD-t檢驗(yàn)。P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 過表達(dá)HSP70促進(jìn)脂多糖誘導(dǎo)的炎癥反應(yīng) LPS刺激Caco-2細(xì)胞24 h,各組IL-1β和TNF-α的mRNA表達(dá)量和蛋白含量較相應(yīng)未加LPS組均有明顯上升(P < 0.05),其中HSP70過表達(dá)組IL-1β和TNF-α的蛋白表達(dá)分別為刺激前的7.73和6.60倍,過表達(dá)陰性對(duì)照組為刺激前的5.44和6.22倍,而HSP70低表達(dá)組僅為刺激前的5.10、5.62倍(P < 0.05),說明炎癥細(xì)胞造模成功。在LPS刺激后,與過表達(dá)陰性對(duì)照組相比,HSP70過表達(dá)組IL-1β和TNF-α的mRNA表達(dá)量分別升高0.57和0.59倍,蛋白含量分別升高0.22和0.31倍,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);與低表達(dá)陰性對(duì)照組比較,HSP70低表達(dá)組IL-1β和TNF-α的mRNA表達(dá)量分別降低0.18、0.13倍,蛋白含量分別降低0.27、0.20倍,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);與低表達(dá)組相比,HSP70過表達(dá)組的IL-1β和TNF-α的mRNA表達(dá)量分別為其1.87、1.94倍,蛋白含量分別為其1.77、1.57倍,說明過表達(dá)HSP70增強(qiáng)LPS誘導(dǎo)的的炎癥反應(yīng),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。見圖1。
圖1 各組細(xì)胞IL-1β和TNF-α mRNA表達(dá)和蛋白含量比較
2.2 過表達(dá)HSP70促進(jìn)細(xì)胞增殖 LPS刺激24 h,各組細(xì)胞增殖率較相應(yīng)未加LPS組均有明顯上升(P < 0.05);與過表達(dá)陰性對(duì)照組相比,HSP70過表達(dá)組的細(xì)胞增殖率為其1.41倍;與低表達(dá)陰性對(duì)照組比較,HSP70低表達(dá)組細(xì)胞增殖率為其0.69倍; 與低表達(dá)組相比,HSP70過表達(dá)組的細(xì)胞增殖率為其2.14倍,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。見圖2。
圖2 各組細(xì)胞增殖率比較
2.3 過表達(dá)HSP70激活TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)通路 LPS刺激24 h后,與過表達(dá)陰性對(duì)照組相比,HSP70過表達(dá)組HSP70、TLR4、MyD88及P65的蛋白表達(dá)量為其1.68、1.34、1.66、1.27倍,mRNA表達(dá)量為其2.56、2.03、2.09、1.88倍,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);與低表達(dá)陰性對(duì)照組比較,HSP70低表達(dá)組HSP70、TLR4、MyD88、P65 蛋白表達(dá)量為其 0.89、0.68、0.82、0.77倍,mRNA表達(dá)量為其0.41、0.62、0.64、0.71倍,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05);與低表達(dá)組相比,HSP70過表達(dá)組蛋白表達(dá)量為其1.86、1.96、2.12、1.69 倍, mRNA 表達(dá)量為 6.05、2.98、3.02、2.46 倍,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。見圖3。
圖3 各組細(xì)胞在LPS刺激24 h后TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)通路關(guān)鍵蛋白及基因表達(dá)的比較
腸道炎癥是先天免疫和獲得性免疫異常激活的結(jié)果,免疫激活、遺傳、環(huán)境因素和腸道菌群改變等多種因素共同參與誘導(dǎo)了腸道炎癥的發(fā)生發(fā)展[6-8]。自上世紀(jì)以來,從細(xì)菌和哺乳動(dòng)物來源的熱休克蛋白及其重組產(chǎn)物已經(jīng)被學(xué)者證明是免疫系統(tǒng)的強(qiáng)大誘導(dǎo)劑,其中細(xì)菌來源的HSP60、分枝桿菌HSP65和HSP70可誘導(dǎo)促炎細(xì)胞因子TNF-α、IL-1、IL-6和 IL-12等的表達(dá)和分泌[9-11],促使抗原提呈細(xì)胞釋放一氧化氮(NO)和C-C趨化因子。研究表明,HSP70與腸道炎癥發(fā)生有關(guān),潰瘍性結(jié)腸炎患者在患病期間表現(xiàn)出腸黏膜HSP70升高,經(jīng)過治療后其水平下降[12]。
Caco-2細(xì)胞來源于人克隆結(jié)腸腺癌細(xì)胞,具有微絨毛結(jié)構(gòu),并含有與小腸刷狀緣上皮相關(guān)的酶系,結(jié)構(gòu)和功能類似于分化的腸上皮細(xì)胞。本研究通過慢病毒構(gòu)建HSP70穩(wěn)定表達(dá)的Caco-2細(xì)胞,并用LPS刺激Caco-2細(xì)胞模擬腸道炎性環(huán)境,結(jié)果表明增強(qiáng)HSP70表達(dá)可導(dǎo)致下游炎癥因子IL-1β、TNF-α的表達(dá)和分泌增加。熱休克蛋白還被認(rèn)為是細(xì)胞程序性死亡的抑制劑,可以阻斷半胱氨酸蛋白酶依賴凋亡的內(nèi)在和外在途徑[13]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn)HSP70可以改善小鼠感染后腸易激綜合征癥狀[14],這可能與熱休克蛋白誘導(dǎo)炎癥免疫作用和調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖相關(guān)。本研究進(jìn)一步通過EdU實(shí)驗(yàn)對(duì)細(xì)胞增殖情況進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)HSP70表達(dá)增高具有促進(jìn)腸道細(xì)胞增殖的作用,且在炎癥環(huán)境中的細(xì)胞具有更高的增殖率。本研究結(jié)果顯示,HSP70和炎癥刺激雖然都可以使得細(xì)胞增殖率較對(duì)照組增高,但是兩者之間并無相關(guān)作用,提示炎癥刺激雖然可以導(dǎo)致Caco-2細(xì)胞增殖率增加,但可能并非通過調(diào)控HSP70表達(dá)起作用。
Toll樣受體是一種先天免疫受體,TLR受體家族可以對(duì)入侵病原體的釋放及物質(zhì)結(jié)合產(chǎn)生促炎反應(yīng),LPS作為腸道細(xì)菌內(nèi)毒素能通過誘導(dǎo)腸道TLR4表達(dá)改變腸黏膜屏障通透性[15],從而觸發(fā)MyD88信號(hào)級(jí)聯(lián)反應(yīng)。在該受體介導(dǎo)的通路中,適配蛋白MyD88通過其自身的Toll/interleukin-1 receptor(TIR)基序與受體TIR結(jié)構(gòu)域結(jié)合,而其C末端的死亡結(jié)構(gòu)域則將IL-LR相關(guān)激酶(IRAK)招募到復(fù)合物中,IRAK被自動(dòng)磷酸化并從復(fù)合物中釋放出來,與TNF受體相關(guān)因子-6(TRAF6)結(jié)合后激活NF-κB通路或MAP激酶級(jí)聯(lián),該機(jī)制與炎性腸病的病理機(jī)制相關(guān)[16-17]。有學(xué)者進(jìn)一步證實(shí)TLR2 和TLR4及其輔因子CD14是HSP70的受體,參與疾病的發(fā)生發(fā)展過程[18]。本實(shí)驗(yàn)中通過慢病毒轉(zhuǎn)染細(xì)胞調(diào)控HSP70的表達(dá),發(fā)現(xiàn)在炎性細(xì)胞環(huán)境中調(diào)高HSP70表達(dá)后能誘導(dǎo)TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)通路產(chǎn)生激活效應(yīng),在一定程度上抑制HSP70的表達(dá)后, TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)通路的激活強(qiáng)度明顯降低。說明HSP70在炎性腸病中起上游激活作用,并通過TLR4信號(hào)通路發(fā)揮相應(yīng)的作用。
綜上所述,HSP70通過激活TLR4/MyD88/NF-κB信號(hào)通路促進(jìn)炎癥因子產(chǎn)生,參與腸道炎癥反應(yīng)。這一結(jié)果有助于揭示腸道炎性疾病發(fā)病的機(jī)制,并為臨床上腸道疾病的診療提供新靶點(diǎn)。