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    α-地中海貧血和β-地中海貧血基因突變異尾雙鏈熒光探針雜交法的建立及應(yīng)用評價(jià)

    2022-11-15 06:20:48李仁強(qiáng)羅俊峰陳云弟
    檢驗(yàn)醫(yī)學(xué) 2022年10期
    關(guān)鍵詞:雙鏈探針雜交

    李仁強(qiáng), 羅俊峰, 陳云弟

    (上海閱爾基因技術(shù)有限公司技術(shù)研發(fā)部,上海 200433)

    地中海貧血(簡稱地貧)是由于珠蛋白基因發(fā)生缺陷,導(dǎo)致1種或幾種珠蛋白肽鏈不能合成或合成減少,鏈結(jié)構(gòu)正常但比例失衡的遺傳性溶血性血紅蛋白病。地貧是常見的遺傳病,主要分布于地中海、中東、印度、東南亞和非洲地區(qū),全球地貧基因攜帶者近2億[1-2]。地貧也是我國南方地區(qū)常見的、危害較大的遺傳病之一,其臨床異質(zhì)性較大,從無臨床表現(xiàn)到嚴(yán)重貧血,甚至死亡;尤其是β-地貧,患兒一般不會(huì)在出生時(shí)或出生后很快出現(xiàn)貧血等臨床表現(xiàn)。準(zhǔn)確、有效的基因檢測技術(shù)對于地貧的及時(shí)診斷至關(guān)重要。本研究擬建立一種基于異尾雙鏈熒光探針技術(shù)的新的檢測方法,通過3管反應(yīng)即可檢測常見的3種α-地貧非缺失突變和8種β-地貧點(diǎn)突變,同時(shí)對該方法的檢測性能進(jìn)行評價(jià)。

    1 材料和方法

    1.1 樣本制備

    從UCSC數(shù)據(jù)庫(http://genome.ucsc.edu/)獲取α-地貧基因簇和β-地貧基因簇序列[3],從人類血紅蛋白數(shù)據(jù)庫(https://globin.bx.psu.edu/hbvar/)[4]獲取α-地貧點(diǎn)突變和β-地貧點(diǎn)突變序列,并據(jù)此設(shè)計(jì)突變型質(zhì)粒,將質(zhì)粒干粉[生工生物工程(上海)股份有限公司]進(jìn)行離心處理后,用TE緩沖液梯度稀釋至2 000拷貝/μL。將正常樣本基因組DNA(上海閱爾基因技術(shù)有限公司)稀釋至7 ng/μL(約2 000拷貝/μL)。將突變型質(zhì)粒與正常樣本基因組DNA按1∶1(V∶V)混合,獲得模擬雜合突變樣本。

    每套地貧核酸檢測國家參考品(貨號360014-201701,中國食品藥品檢定研究院)為32份,其中29份為點(diǎn)突變、缺失突變參考品,3份為無突變正常參考品。

    在上海閱爾基因技術(shù)有限公司樣本庫中選取已知地貧基因型的臨床樣本200份,采用核酸提取試劑盒[天根生化科技(北京)有限公司]提取樣本DNA,用NanoDrop 2000分光光度計(jì)(美國ThermoFisher Scientific公司)測定DNA濃度和純度,嚴(yán)格按試劑盒說明書要求操作。

    1.2 異尾雙鏈熒光探針法的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    1.2.1 異尾雙鏈熒光探針構(gòu)建 本研究使用的異尾雙鏈熒光探針由熒光探針鏈和淬滅探針鏈組成[5],熒光探針鏈5'端標(biāo)記熒光基團(tuán),3'端標(biāo)記阻止延伸的基團(tuán),熒光探針鏈由5'端非同源序列區(qū)域和3'端模板互補(bǔ)區(qū)域組成;淬滅探針鏈序列和熒光探針鏈序列完全反向互補(bǔ),在3'端標(biāo)記熒光淬滅基團(tuán)。

    1.2.2 基本原理 當(dāng)反應(yīng)體系中不存在模板DNA時(shí),熒光探針鏈與淬滅探針鏈堿基互補(bǔ)配對結(jié)合,熒光基團(tuán)與淬滅基團(tuán)之間形成非熒光復(fù)合物,二者通過氫鍵以質(zhì)子偶聯(lián)的電子轉(zhuǎn)移相互作用,熒光基團(tuán)由此被淬滅。檢測樣本時(shí),首先通過不對稱聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增產(chǎn)生大量單鏈DNA片段;然后將反應(yīng)體系升溫至95 ℃,熒光探針鏈與淬滅探針鏈?zhǔn)軣岱蛛x,成為單鏈游離狀態(tài);隨后降溫至40 ℃,熒光探針鏈與單鏈DNA模板特異性雜交,熒光基團(tuán)與淬滅基團(tuán)脫離接觸發(fā)出熒光。見圖1。

    圖1 異尾雙鏈熒光探針法點(diǎn)突變檢測原理示意圖

    1.3 方法

    采用Primer Premier軟件設(shè)計(jì)PCR引物和異尾雙鏈熒光探針,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成并純化。熒光探針、淬滅探針序列及多重PCR分管見表1。PCR反應(yīng)體系:總體積為25 μL,5×GoldStar PCR Master Mix(江蘇康為世紀(jì)生物科技股份有限公司)5 μL,熒光探針或淬滅探針各0.1 μL,引物各0.2 μL,模板DNA 2 μL,用無酶水補(bǔ)足反應(yīng)體積。根據(jù)熒光探針或淬滅探針的濃度(10、20、50 nmol/L)和引物的濃度(50、200、1 000 mol/L)構(gòu)建不同的反應(yīng)體系。反應(yīng)條件:40 ℃保溫8 min,采集各熒光通道信號值;95 ℃預(yù)變性10 min;95 ℃變性30 s,64 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,50個(gè)循環(huán);95 ℃變性5 min,40 ℃保溫20 min,每分鐘檢測各通道熒光信號值。檢測儀器為ABI 7500熒光定量PCR儀(美國ABI公司)。

    表1 引物探針序列和多重PCR的分管

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    1.4.1 孔間校正 每份樣本分別進(jìn)行3管反應(yīng),記錄最后1個(gè)循環(huán)各通道熒光強(qiáng)度(F)和對應(yīng)通道空白對照的熒光強(qiáng)度(F0),F(xiàn)AM/VIC/NED/CY5通道熒光強(qiáng)度和ROX通道熒光強(qiáng)度的商即為校正的樣本熒光強(qiáng)度(Fn)和空白對照的熒光強(qiáng)度(Fn0)。

    1.4.2 熒光背景校正 以Fn0作為熒光背景,計(jì)算樣本熒光強(qiáng)度凈增量(ΔFn),計(jì)算公式為:ΔFn=Fn-Fn0。

    1.4.3 熒光強(qiáng)度凈增量計(jì)算 計(jì)算待測樣本與對應(yīng)通道野生型的熒光強(qiáng)度凈增量差值ΔΔFn,ΔΔFn=ΔFn樣本-ΔFn野生型。

    1.4.4 閾值設(shè)置 檢測突變位點(diǎn)陽性臨床樣本,計(jì)算突變位點(diǎn)目標(biāo)熒光凈增量差值ΔΔFn的均值ΔΔF,熒光閾值=ΔFn野生型+ΔΔF/2。

    1.4.5 結(jié)果判定 實(shí)際檢測時(shí)將待測樣本與野生型樣本、空白對照同時(shí)檢測,待測樣本扣除野生型樣本得到ΔΔFn值,比較ΔΔFn值與熒光閾值判定點(diǎn)突變。

    1.5 方法性能評價(jià)

    1.5.1 準(zhǔn)確性和特異性 將全套地貧核酸檢測國家參考品按說明書要求進(jìn)行檢測。(1)準(zhǔn)確性:本方法檢測范圍內(nèi)的國家陽性參考品的結(jié)果應(yīng)為相應(yīng)基因型別;(2)特異性:國家陰性參考品和本方法檢測范圍外的國家陽性參考品的結(jié)果應(yīng)為未檢出突變。

    1.5.2 靈敏度 選擇常見的非缺失α-地貧突變型與β-地貧基因點(diǎn)突變型(Hb CS、CD41/42、IVS-II-654)參考品梯度稀釋至1.0、2.5、5.0、10.0 ng/μL,每份樣本檢測3次。

    1.5.3 方法比較 將異尾雙鏈熒光探針法與PCR-反向點(diǎn)雜交法[試劑盒購自亞能生物技術(shù)(深圳)有限公司]同時(shí)檢測200份已知地貧基因型的臨床樣本,評估臨床標(biāo)本檢測的準(zhǔn)確性與特異性。2種方法結(jié)果不一致的樣本采用測序法確認(rèn)。

    2 結(jié)果

    2.1 異尾雙鏈熒光探針法的建立與評估

    按照設(shè)計(jì)方案(圖2),建立多重不對稱PCR及異尾雙鏈熒光探針雜交的反應(yīng)體系和反應(yīng)條件并進(jìn)行評估、優(yōu)化。檢測過程:首先通過多重不對稱PCR產(chǎn)生大量單鏈DNA片段;PCR反應(yīng)結(jié)束后,熒光標(biāo)記探針與單鏈DNA雜交,通過熒光信號值判定點(diǎn)突變的有無及具體類型。

    圖2 地貧基因點(diǎn)突變檢測方案

    2.1.1 PCR反應(yīng)體系 使用基因組DNA樣本評估不對稱PCR擴(kuò)增的特異性。使用人工合成單鏈DNA與異尾雙鏈熒光探針雜交,獲得可區(qū)分野生型與突變型模板的探針對。使用優(yōu)化的不對稱PCR與探針雜交體系檢測模擬雜合樣本,確定反應(yīng)體系與反應(yīng)條件。PCR反應(yīng)產(chǎn)物見圖3。

    圖3 多重不對稱PCR特異性擴(kuò)增目標(biāo)區(qū)域單鏈DNA片段

    2.1.2 熒光信號增量閾值確定 采用建立的異尾雙鏈熒光探針雜交法檢測臨床樣本,并對檢測結(jié)果進(jìn)行分析和計(jì)算,確定判定突變的熒光信號增量閾值。見表2、圖4。

    表2 3管反應(yīng)檢測結(jié)果的解釋(ΔΔFn值)

    圖4 3管反應(yīng)檢測11種突變樣本結(jié)果

    2.2 異尾雙鏈熒光探針法的檢測性能評價(jià)

    2.2.1 準(zhǔn)確性和特異性 按地貧核酸檢測國家參考品說明書要求,采用異尾雙鏈熒光探針雜交法檢測全套參考品。結(jié)果顯示,對于檢測范圍內(nèi)的11種點(diǎn)突變樣本,異尾雙鏈熒光探針雜交法檢測結(jié)果與國家參考品說明書標(biāo)示的突變類型的符合率為100%;對檢測范圍外的其他點(diǎn)突變或缺失突變樣本,異尾雙鏈熒光探針雜交法均未檢出。見表3。

    表3 國家參考品檢測結(jié)果

    2.2.2 靈敏度 采用異尾雙鏈熒光探針雜交法檢測1.0、2.5、5.0、10.0 ng/μL的α-地貧Hb CS點(diǎn)突變參考品和β-地貧CD41/42、IVS-II-654點(diǎn)突變參考品,結(jié)果均與國家參考品說明書中提供的突變類型一致。

    2.2.3 臨床樣本檢測 同時(shí)采用異尾雙鏈熒光探針雜交法和PCR-反向點(diǎn)雜交法檢測200份臨床樣本。結(jié)果顯示,異尾雙鏈熒光探針雜交法與PCR-反向點(diǎn)雜交法的符合率為100%。見表4。

    表4 2種方法檢測臨床樣本的結(jié)果比較

    3 討論

    正常人每條16號染色體上有2個(gè)α-珠蛋白基因,即α1(HBA1)基因和α2(HBA2)基因,二者表達(dá)同一種產(chǎn)物α-珠蛋白鏈。正常情況下,α2基因較α1基因的功能更強(qiáng),前者表達(dá)量為后者的2倍。α2與α1為高度同源基因,二者序列相似性約為94%,GC含量約為75%,編碼區(qū)序列完全一致,僅5'端非翻譯區(qū)與內(nèi)含子區(qū)域存在序列差異[1]。α-地貧基因簇同時(shí)存在α2、α1的同源基因HBZ和假基因HBZP1、HBM、HBQ1。中國人群常見的3種非缺失型α-地貧突變Hb WS、Hb QS和Hb CS均發(fā)生在HBA2基因編碼區(qū)[2]。與α-地貧類似,β-地貧基因HBB與HBD堿基序列高度相似,β-地貧基因簇上還存在HBG1、HBG2、HBE、HBBP1等同源基因或假基因。中國人群常見的β-地貧點(diǎn)突變均發(fā)生在HBB基因1號外顯子和2號外顯子區(qū),該區(qū)域GC含量約為50%;其中,IVS-Ⅱ-654突變位于2號內(nèi)含子深處,該區(qū)域GC含量約為15%[2,6]。

    目前,用于非缺失型α-地貧與β-地貧點(diǎn)突變檢測試劑盒主要采用PCR-反向點(diǎn)雜交法、多重?zé)晒馊劢馇€法[7]。PCR-反向點(diǎn)雜交法是一種較成熟的檢測技術(shù),臨床應(yīng)用較廣泛,檢測過程包括PCR擴(kuò)增與膜雜交顯色兩部分,可檢測常見點(diǎn)突變與缺失突變,其檢測過程耗時(shí)較長,包含大量繁瑣的手工操作,效率較低。此外,PCR產(chǎn)物開管檢測存在污染風(fēng)險(xiǎn)。多重?zé)晒馊劢馇€法近年來逐漸被用于地貧突變檢測,該方法首先進(jìn)行PCR擴(kuò)增獲得目標(biāo)片段,然后使用雙端標(biāo)記熒光探針或雙雜交熒光探針與目標(biāo)片段雜交,最后通過熔解曲線分析獲得熔點(diǎn)信息[8-10]。熒光熔解曲線法由于探針設(shè)計(jì)的特點(diǎn),對于探針覆蓋范圍內(nèi)相鄰的突變位點(diǎn),其熔點(diǎn)差異較小甚至存在熔點(diǎn)交叉,檢測結(jié)果只能判定含有2種突變中的一種,需要通過測序法才能鑒定出具體的突變類型。因此,開發(fā)一種能夠快速、簡單、準(zhǔn)確檢測非缺失型α-地貧與β-地貧點(diǎn)突變的方法具有重要的臨床意義。

    為解決上述難題,本研究采用多重不對稱PCR結(jié)合異尾雙鏈熒光探針進(jìn)行檢測。具體設(shè)計(jì)如下:(1)所有PCR引物均設(shè)計(jì)為具有較高的Tm值(Tm>70 ℃),PCR擴(kuò)增時(shí)采用較高的退火和延伸溫度,一方面使變性的雙鏈DNA維持單鏈狀態(tài)以便與引物結(jié)合和延伸;另一方面,較高的退火溫度使引物與目標(biāo)區(qū)域特異性雜交,避免相似序列干擾。(2)利用單管反應(yīng)檢測多種點(diǎn)突變時(shí),應(yīng)盡可能提高探針與目標(biāo)模板的雜交效率,盡可能降低探針與背景模板的雜交效率,從而獲得較高的信噪比。有研究發(fā)現(xiàn),在微陣列芯片的探針雜交反應(yīng)中,單鏈DNA相比雙鏈DNA有著更高的雜交效率,可獲得更高的檢測靈敏度[11-12]。本研究采用多重不對稱PCR方式,3對引物分別擴(kuò)增α2基因片段、β基因突變熱點(diǎn)區(qū)域以及IVS-Ⅱ-654區(qū)域,獲得目標(biāo)區(qū)域單鏈DNA片段。相對于熒光熔解曲線法,本研究使用的PCR反應(yīng)體系復(fù)雜度低,僅使用2條引物即可獲得目標(biāo)區(qū)域單鏈DNA片段,無需使用額外的嵌套引物或巢式引物[13],僅需優(yōu)化每條PCR引物用量即可獲得大量單鏈DNA片段,為異尾雙鏈熒光探針雜交反應(yīng)提供充足的單鏈DNA模板,并產(chǎn)生更高的熒光信號,直接通過熒光信號值即可進(jìn)行結(jié)果判定,無需采用復(fù)雜的熔解曲線分析和熔點(diǎn)判斷[14]。(3)異尾雙鏈熒光探針的探針鏈被設(shè)計(jì)為較低的Tm值(60 ℃),淬滅探針鏈被設(shè)計(jì)為極低的Tm值(40 ℃),PCR過程中熒光探針鏈、淬滅探針鏈?zhǔn)軣峤怄?,由于探針Tm值顯著低于PCR的退火、延伸溫度,熒光探針鏈、淬滅探針鏈均處于游離狀態(tài),避免了探針與DNA雜交導(dǎo)致的引物延伸受阻,以及Taq酶切割探針引起的PCR反應(yīng)前后探針總量變化。(4)由于異尾雙鏈熒光探針法通過熒光探針-模板特異性雜交與鏈置換反應(yīng)進(jìn)行檢測,探針設(shè)計(jì)具有極大的靈活性;本研究針對每個(gè)待檢測突變位點(diǎn)分別設(shè)計(jì)1對特異性的異尾雙鏈熒光探針;同時(shí),參考中國人群非缺失α-地貧與β-地貧點(diǎn)突變復(fù)合發(fā)生的位點(diǎn)與頻率信息,將常見復(fù)合雜合位點(diǎn)設(shè)置在不同反應(yīng)管中[3];通過熒光信號或熒光信號組合即可準(zhǔn)確判定突變類型,不受突變位點(diǎn)之間位置關(guān)系限制,也無需測序鑒定。與熒光熔解曲線法類似,本研究采用的異尾雙鏈熒光探針法為閉管反應(yīng)模式,只需加入DNA即可進(jìn)行PCR反應(yīng)與熒光檢測,整個(gè)檢測過程均由PCR儀在3 h內(nèi)完成,反應(yīng)結(jié)束后無需進(jìn)行開蓋處理,不存在PCR產(chǎn)物污染風(fēng)險(xiǎn)。

    地貧核酸檢測國家參考品作為國家體外診斷試劑標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),由中國人群常見的α-地貧缺失與非缺失突變、β-地貧缺失與非缺失型突變組成,用于地貧基因檢測試劑盒的性能評價(jià)。本研究按國家參考品說明書要求,采用異尾雙鏈熒光探針法進(jìn)行檢測,結(jié)果表明:(1)點(diǎn)突變型樣本,包括單堿基替換、單堿基插入與多堿基插入等變異類型,均被準(zhǔn)確檢出,不存在假陰性或非特異性結(jié)果;(2)正常樣本、缺失樣本檢測結(jié)果均為陰性,不存在假陽性結(jié)果;(3)異尾雙鏈熒光探針法檢測限為1 ng/μL,低于國家參考品說明書要求的10 ng/μL。因此,異尾雙鏈熒光探針法的性能指標(biāo)符合國家參考品要求,檢測結(jié)果準(zhǔn)確可靠。

    同時(shí),本研究檢測了200例臨床樣本,變異類型包括3種非缺失型α-地貧、8種β-地貧點(diǎn)突變。驗(yàn)證結(jié)果表明,異尾雙鏈熒光探針法對97例陽性樣本、103例陰性樣本的檢測結(jié)果與PCR-反向點(diǎn)雜交法一致。

    綜上所述,本研究利用多重不對稱PCR與異尾雙鏈熒光探針技術(shù)建立了一種通過3管反應(yīng)檢測3種非缺失型α-地貧突變與8種β-地貧點(diǎn)突變的方法。經(jīng)地貧核酸檢測國家標(biāo)準(zhǔn)品與地貧臨床標(biāo)本驗(yàn)證,其性能指標(biāo)均滿足要求,能夠準(zhǔn)確、快速、可靠地檢測11種地貧點(diǎn)突變,具有較高的臨床應(yīng)用價(jià)值。

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