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    miR-34a基于AKT/mTOR通路對骨關(guān)節(jié)炎大鼠的影響及作用機制研究

    2022-11-15 03:20:06周倫丁源呂洲
    關(guān)鍵詞:骨關(guān)節(jié)炎通路關(guān)節(jié)

    周倫 丁源 呂洲

    青島市市立醫(yī)院骨關(guān)節(jié)科,青島 266000

    骨關(guān)節(jié)炎是常見的骨骼疾病,疼痛、僵硬等臨床特征嚴(yán)重影響關(guān)節(jié)的承重能力,我國有80%的患者出現(xiàn)關(guān)節(jié)活動受限,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量[1]。目前關(guān)于該病的研究表明,骨關(guān)節(jié)炎主要是由于細(xì)胞外基質(zhì)、關(guān)節(jié)軟骨的合成、降解紊亂所造成[2]。當(dāng)前基于微小RNA(miRNA)治療多種疾病已有大量研究,同時對于臨床具有較大的診斷、治療潛能,但治療骨關(guān)節(jié)炎的研究較少[3]。有研究表明,微小核糖核酸-34a(microRNA-34A,miR-34a)具有調(diào)控細(xì)胞周期和抗增殖能力,同時表達(dá)異常會引起細(xì)胞的凋亡、細(xì)胞周期停滯等現(xiàn)象[4]。蛋白激酶B(AKT)/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mTOR)信號通路主要對于細(xì)胞的調(diào)控、自噬具有重要作用,其中通過抑制該通路可以改善機體的炎性反應(yīng)[5]。目前缺少通過AKT/mTOR 信號通路來調(diào)節(jié)miR-34a 對骨關(guān)節(jié)炎的干預(yù)效果研究?;诖耍疚闹荚谘芯縨iR-34a 基于AKT/mTOR通路對骨關(guān)節(jié)炎大鼠的影響及作用機制。

    動物與材料

    1、研究動物

    研究時間為 2020 年 2 月至 2021 年 5 月。選取 43 只 6~9 周齡雄性SD 大鼠作前瞻性研究,體質(zhì)量200~250 g,由北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司提供,動物許可證號SCXK(京)2017-0022,喂養(yǎng)標(biāo)準(zhǔn)大鼠飼料,室溫(24±3)℃,相對濕度(48±7)%,12 h 光照交替。本次試驗操作均參照動物試驗倫理要求的相關(guān)規(guī)定,且經(jīng)青島市市立醫(yī)院倫理委員會批準(zhǔn)同意。

    2、方法

    2.1、骨關(guān)節(jié)炎大鼠建模[6]選取 43 只大鼠,從中隨機選取10 只大鼠為空白組,其余33 只建立骨關(guān)節(jié)炎模型大鼠,腹腔注射10%水合氯醛(青島宇龍海藻有限公司,H37022673)麻醉,切開2 cm 雙側(cè)膝關(guān)節(jié)內(nèi)側(cè),暴露關(guān)節(jié)腔,用生理鹽水清洗,止血,縫合。在關(guān)節(jié)中注射碘乙酸鈉溶液(上海信裕生物科技有限公司,型號305-53-3),飼養(yǎng)2 周,建模關(guān)節(jié)出現(xiàn)腫脹及屈伸功能障礙,表示建模成功。成功建模30只。

    2.2、分組及干預(yù) 選取10 只大鼠為空白組,成功建模的30 只模型大鼠隨機分為模型組、上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組,各 10 只。通過 Lipofectamine 2000 將 miR-34a inhibitor 轉(zhuǎn)染到上調(diào) miR-34a 組、沉默 miR-34a 組,分別為400 nm 和 200 nm,6 h 后換成含10% 血清的DMEM 培養(yǎng)基(廣東環(huán)凱生物科技有限公司,貨號:XB01XLS),37 ℃,CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h,實時熒光定量PCR(RT-PCR)法檢測miR-34a inhibitor 轉(zhuǎn)染效果。模型組、空白組均給予等體積的生理鹽水干預(yù),各組均連續(xù)干預(yù)2周。

    2.3、檢測炎癥指標(biāo) 采用酶聯(lián)免疫吸附測定法檢測白細(xì)胞介素(interleukin,IL)-1β、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、IL-4、IL-10,在干預(yù)結(jié)束后抽取尾靜脈血5 ml,以離心半徑5 cm、轉(zhuǎn)速3 000 r/min 離心處理10 min,分離上層血清,-80 ℃保存待檢。嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行。酶聯(lián)免疫吸附試劑盒由上海酶聯(lián)生物科技有限公司提供。

    2.4、病理組織觀察 干預(yù)50 d 后,處死大鼠,觀察關(guān)節(jié)是否有積液,取4 塊脛骨內(nèi)側(cè)、脛骨外側(cè)為標(biāo)本,標(biāo)本使用中性甲醛溶液固定70 h,脫水,包埋,切片,蘇木精-伊紅(HE)染色,根據(jù)Mankin關(guān)節(jié)軟骨病理評分標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行評估。

    2.5、采用實時熒光定量PCR 檢測miR-34a 采用Trizol一步法提取總RNA,所有步驟按說明書嚴(yán)格進(jìn)行。引物設(shè)計如下 , miR-34a正 向引物 :5’ -GTGCAGGGTCCGAGGT-3’ , 反 向 引 物 :5’-GCCGCTGGCAGTGTCTTAGCTG-3’;GAPDH正向引物:5’ -AGCCACATCGCTCAGACA-3’ , 反 向 引 物 :5’-TGGACTCCACGACGTACT-3’。采用 2-△△Ct方法計算出需要檢測的miR-34a相對表達(dá)量。

    2.6、檢測磷酸化蛋白激酶B(pAKT)、磷酸化哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(pmTOR) 采用蛋白免疫印跡法將標(biāo)本提取液,根據(jù)蛋白濃度取適量進(jìn)行SDS-PAGE 電泳分離蛋白。其余步驟嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行,結(jié)果用LabWorks3.0軟件以目的條帶β-肌動蛋白(β-actin)的會度值進(jìn)行分析。重復(fù)試驗5次。

    3、統(tǒng)計學(xué)處理

    采用SPSS 19.0 統(tǒng)計軟件進(jìn)行分析處理。應(yīng)用Kolmogorov-SmiRnov 檢驗數(shù)據(jù)是否符合正態(tài)分布,符合正態(tài)分布的計量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()描述,多組間比較采用方差齊性檢驗,兩組間比較采用獨立樣本t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    結(jié) 果

    1、病理組織

    如圖1 所示,圖1A 為空白組:未見明顯關(guān)節(jié)結(jié)構(gòu)破壞,表面光滑沒有裂痕,骨細(xì)胞排列分布均勻;圖1B 為模型組:表面明顯粗糙,有裂隙,骨細(xì)胞減少偏平,分布紊亂;圖1C為沉默miR-34a 組:表面較為光滑無裂痕,骨細(xì)胞分布均勻,層次分明;圖1D 為上調(diào)miR-34a 組:表面粗糙,骨細(xì)胞減少,分布較為紊亂。

    圖1 各組大鼠病理學(xué)觀察(HE ×400)。A 為空白組大鼠病理圖,B 為模型組大鼠病理圖,C 為沉默miR-34a 組大鼠病理圖,D為上調(diào)miR-34a組大鼠病理圖

    2、miR-34a在各組中的表達(dá)水平比較

    如表1 所示,與空白組相比,模型組、上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組的miR-34a 表達(dá)較高,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與模型組相比,上調(diào) miR-34a 組、沉默miR-34a組miR-34a表達(dá)較低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);沉 默 miR-34a 組 與 上調(diào) miR-34a 組相 比,沉 默miR-34a 組miR-34a 表達(dá)較低,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。

    表1 miR-34a在各組大鼠中的表達(dá)水平比較()

    表1 miR-34a在各組大鼠中的表達(dá)水平比較()

    注:空白組不做處理,模型組建立骨關(guān)節(jié)炎模型,上調(diào)miR-34a組、沉默miR-34a 組建立骨關(guān)節(jié)炎模型后分別轉(zhuǎn)染400 nm 和200 nm miR-34a inhibitor;miR-34a 為微小核糖核酸-34a;與空白組相比,aP<0.05;與模型組相比,bP<0.05;與上調(diào)miR-34a 組相比,cP<0.05

    miR-34a 0.94±0.08 2.39±0.26a 2.12±0.23ab 1.54±0.17abc 25.290 0.001組別空白組模型組上調(diào)miR-34a組沉默miR-34a組F值P值n 10 10 10 10

    3、各組Makin評分比較

    如表2 所示,與空白組相比,模型組、上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組的Makin 評分較高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與模型組相比,上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組的Makin 評分較低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);沉默miR-34a 組與上調(diào) miR-34a 組相比,沉默 miR-34a 組 Makin評分較低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。

    表2 Makin評分在各組大鼠中的比較(分,)

    表2 Makin評分在各組大鼠中的比較(分,)

    注:空白組不做處理,模型組建立骨關(guān)節(jié)炎模型,上調(diào)miR-34a組、沉默miR-34a 組建立骨關(guān)節(jié)炎模型后分別轉(zhuǎn)染400 nm 和200 nm miR-34a inhibitor;miR-34a 為微小核糖核酸-34a;與空白組相比,aP<0.05;與模型組相比,bP<0.05;與上調(diào)miR-34a 組相比,cP<0.05

    Makin評分0.35±0.05 4.13±0.19a 3.02±0.16ab 1.15±0.09abc 91.260 0.001組別空白組模型組上調(diào)miR-34a組沉默miR-34a組F值P值n 10 10 10 10

    4、各組炎性反應(yīng)比較

    如表3 所示,與空白組相比,模型組、上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a組IL-1β、TNF-α較高,IL-4、IL-10較低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與模型組相比,上調(diào)miR-34a組、沉默 miR-34a 組IL-1β、TNF-α 較低,IL-4、IL-10 較高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);沉默miR-34a 組與上調(diào)miR-34a 組相比,沉默 miR-34a 組 IL-1β、TNF-α 較低,IL-4、IL-10較高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。

    表3 各組大鼠的炎性反應(yīng)比較()

    表3 各組大鼠的炎性反應(yīng)比較()

    注:空白組不做處理,模型組建立骨關(guān)節(jié)炎模型,上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組建立骨關(guān)節(jié)炎模型后分別轉(zhuǎn)染400 nm 和200 nm miR-34a inhibitor;miR-34a 為微小核糖核酸-34a;IL 為白細(xì)胞介素,TNF-α 為腫瘤壞死因子-α;與空白組相比,aP<0.05;與模型組相比,bP<0.05;與上調(diào)miR-34a組相比,cP<0.05

    IL-10(pg/ml)106.49±17.51 60.85±10.23a 76.81±13.07ab 91.05±15.02abc 10.676 0.001組別空白組模型組上調(diào)miR-34a組沉默miR-34a組F值P值n 10 10 10 10 IL-1β(ng/L)3.68±0.37 7.51±1.23a 5.72±0.95ab 4.63±0.72abc 14.144 0.001 TNF-α(ng/L)37.45±4.85 62.05±7.49a 56.26±6.25ab 43.85±5.10abc 13.077 0.001 IL-4(pg/ml)115.75±16.81 50.43±9.42a 75.82±11.94ab 93.85±13.86abc 16.080 0.001

    5、各組AKT/mTOR通路蛋白相對表達(dá)量對比

    如表4 所示,與空白組相比,模型組、上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a組pAKT、pmTOR較高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與模型組相比,上調(diào)miR-34a 組、沉默miR-34a 組pAKT、pmTOR 較低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);沉默miR-34a組與上調(diào)miR-34a組相比,沉默miR-34a組pAKT、pmTOR 較低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。各組大鼠pAKT、pmTOR蛋白免疫印跡圖見圖2。

    圖2 空白組、模型組、沉默miR-34a組、上調(diào)miR-34a組大鼠pAKT、pmTOR蛋白免疫印跡圖

    表4 各組大鼠的pAKT、pmTOR蛋白相對表達(dá)量對比()

    表4 各組大鼠的pAKT、pmTOR蛋白相對表達(dá)量對比()

    注:空白組不做處理,模型組建立骨關(guān)節(jié)炎模型,上調(diào)miR-34a組、沉默miR-34a組建立骨關(guān)節(jié)炎模型后分別轉(zhuǎn)染400 nm和200 nm miR-34a inhibitor;miR-34a 為微小核糖核酸-34a,pAKT 為磷酸化蛋白激酶,pmTOR 為雷帕霉素靶蛋白;與空白組相比,aP<0.05;與模型組相比,bP<0.05;與上調(diào)miR-34a組相比,cP<0.05

    pmTOR 1.00±0.01 1.89±0.24a 1.56±0.25ab 1.25±0.15abc 17.580 0.001組別空白組模型組上調(diào)miR-34a組沉默miR-34a組F值P值n 10 10 10 10 pAKT 1.00±0.01 1.95±0.29a 1.71±0.26ab 1.51±0.26abc 15.525 0.001

    討 論

    骨關(guān)節(jié)炎是一種退行性疾病,主要是以關(guān)節(jié)基質(zhì)破壞、關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞減少為特點,嚴(yán)重者可導(dǎo)致患者出現(xiàn)關(guān)節(jié)畸形、功能喪失等問題,當(dāng)時該病的發(fā)病機制尚未明確[7]。關(guān)于該病的治療目前沒有較好的方法,主要是以減輕疼痛、改善關(guān)節(jié)功能為主要治療方式,以提高生活質(zhì)量為主要目的[8]。但是治療方式不甚理想,因此應(yīng)更加深入了解病理機制,挖掘防治靶點。

    miRNA 是一種普遍存在于生物體的小分子,其可以通過調(diào)節(jié)別的miRNA 來實現(xiàn)基因的調(diào)控,參與多種疾病中,尤其對于人體神經(jīng)分化、細(xì)胞凋亡、增殖具有重大作用,是一重要的調(diào)節(jié)因子[9-10]。隨著對miRNA 的深入了解發(fā)現(xiàn),miR-34a 與骨質(zhì)疏松癥、骨腫瘤、骨關(guān)節(jié)炎等疾病的發(fā)生、發(fā)展具有密切關(guān)系。主要是因為miR-34a 可調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、凋亡等生理學(xué)行為[11-12]。有研究結(jié)果顯示,通過miR-34a 進(jìn)行沉默,可以起到保護(hù)軟骨細(xì)胞的作用,同時可以抑制軟骨細(xì)胞凋亡,延緩關(guān)節(jié)退變的速度,對于治療骨關(guān)節(jié)炎提供了較好的理論支持[13]。本文研究結(jié)果顯示,在骨關(guān)節(jié)炎中miR-34a 表達(dá)較高,通過沉默miR-34a 可以降低大鼠miR-34a 表達(dá),減輕大鼠的炎性反應(yīng),從而影響骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)生、發(fā)展。主要是因為miR-34a 通過誘導(dǎo)p53 基因,進(jìn)而導(dǎo)致細(xì)胞周期停止、凋亡、衰老等生物學(xué)行為,同時通過導(dǎo)致基因的變化對細(xì)胞進(jìn)行較好的干預(yù),因此對骨關(guān)節(jié)炎造成一定的影響[14]。

    IL-1β、TNF-α、IL-4、IL-10 是較為經(jīng)典的炎性指標(biāo),對于骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)病機制有一定影響。miR-34a 對于細(xì)胞的自噬作用有一定影響,而自噬是機體中較為穩(wěn)態(tài)的一種機制,主要是通過吞噬受損的細(xì)胞器、蛋白質(zhì),從而釋放原料,為機體提供新的能量,因此在炎癥、免疫等指標(biāo)中具有重要作用[15]。由此說明,miR-34a 對于炎癥指標(biāo)有一定影響性。本文研究結(jié)果顯示,沉默miR-34a 可以使骨關(guān)節(jié)炎大鼠的IL-1β、TNF-α降低,IL-4、IL-10升高,減輕炎性反應(yīng)。主要是因為IL-1β 可以誘導(dǎo)軟骨產(chǎn)生較多的IL-6、IL-8 等炎癥介質(zhì)[16]。TNF-α 可抑制軟骨膠原產(chǎn)生,與病變具有密切關(guān)系[17]。IL-10對軟骨細(xì)胞具有保護(hù)作用,充分說明該炎癥指標(biāo)與骨關(guān)節(jié)炎的發(fā)生、發(fā)展具有密切的相關(guān)性。

    mTOR 與細(xì)胞的增殖、凋亡、分化具有密切的相關(guān)性,同時有學(xué)者研究發(fā)現(xiàn),以mTOR 為交點的正向信號通路有AKT/mTOR 通路[18]。同時有研究表明,AKT/mTOR 參與調(diào)控細(xì)胞的凋亡、自噬,可以影響更多的反向效應(yīng)分子,從而起到抑制細(xì)胞自噬作用[19]。本文研究結(jié)果顯示,沉默miR-34a可以降低骨關(guān)節(jié)炎大鼠pAKT、pmTOR 表達(dá)。分析原因主要是因為沉默miR-34a 可以通過去磷酸化的三磷酸磷脂酰肌醇抑制AKT 活性,而激活A(yù)KT/mTOR 信號通路之后,可以引起一系列反應(yīng),包括調(diào)控細(xì)胞的生長、增殖、自噬[20]。

    綜上所述,沉默miR-34a 通過AKT/mTOR 信號通路調(diào)控,進(jìn)而改善pAKT、pmTOR 表達(dá),提高大鼠的關(guān)節(jié)功能,減少炎性反應(yīng),為臨床骨關(guān)節(jié)炎靶向治療提供理論依據(jù)。但因樣本量較少,在數(shù)據(jù)統(tǒng)計時可能存在一定的偏倚,存在一定的局限性,且未對其具體作用機制進(jìn)行深入分析,因此還需后續(xù)進(jìn)一步分析。

    利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突

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