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      大蒜擴(kuò)展蛋白基因AsEXPA8的分離及其參與滲透脅迫響應(yīng)的分析

      2022-10-29 03:09:46王廣龍劉夢(mèng)婷王云鵬任旭琴陳伯清熊愛生
      核農(nóng)學(xué)報(bào) 2022年12期
      關(guān)鍵詞:細(xì)胞壁殘基大蒜

      王廣龍 劉夢(mèng)婷 王云鵬 任旭琴 陳伯清 熊愛生

      (1 淮陰工學(xué)院生命科學(xué)與食品工程學(xué)院,江蘇 淮安 223003;2 淮陰工學(xué)院應(yīng)用技術(shù)學(xué)院,江蘇 淮安 223003;3 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院/作物遺傳與種質(zhì)創(chuàng)新國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/農(nóng)業(yè)農(nóng)村部華東地區(qū)園藝作物生物學(xué)與種質(zhì)創(chuàng)制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 南京 210095)

      擴(kuò)展蛋白(expansin,EXP)又稱膨脹素,是植物細(xì)胞壁的重要組成部分。該物質(zhì)可以打斷細(xì)胞壁中纖維素與半纖維素的非共價(jià)鍵,釋放細(xì)胞壁多聚物的機(jī)械張力,繼而加強(qiáng)細(xì)胞壁的柔韌性,使植物細(xì)胞壁松弛和伸展[1-2]。

      1992年,在黃瓜(Cucumissativus)細(xì)胞壁中首次鑒定得到2個(gè)擴(kuò)展蛋白CsEXP1和CsEXP2。上述蛋白可以在酸性條件下誘導(dǎo)細(xì)胞壁的擴(kuò)展伸長(zhǎng)[3]。后續(xù)研究發(fā)現(xiàn),擴(kuò)展蛋白具有一個(gè)龐大的基因家族。在植物中發(fā)現(xiàn)的擴(kuò)展蛋白主要分為4類,包括α擴(kuò)展蛋白(α-expansin,EXPA)、β擴(kuò)展蛋白(β-expansin,EXPB)、類擴(kuò)展蛋白A(expansin-like A,EXLA)和類擴(kuò)展蛋白B(expansin-like B,EXLB)[4]。目前,在許多植物中已經(jīng)分離得到擴(kuò)展蛋白基因,如在胡蘿卜(Daucuscarota)中獲得24個(gè)DcEXPA基因、4個(gè)DcEXPB基因、1個(gè)DcEXLA基因和1個(gè)DcEXLB基因[5]。其中,以EXPA的研究較為廣泛和深入,其在種子萌發(fā)[6]、果實(shí)成熟[7]、花粉管發(fā)育[8]以及產(chǎn)量形成[9]等植物生命活動(dòng)中發(fā)揮著重要作用。

      研究發(fā)現(xiàn),EXPA除參與上述生命活動(dòng)外,還參與植物應(yīng)對(duì)非生物脅迫的進(jìn)程。在小麥(Triticumaestivum)中過表達(dá)TaEXPA2提高了抗氧化酶的活性,促進(jìn)了側(cè)根形成,繼而增強(qiáng)了植株對(duì)干旱的適應(yīng)性[10];小麥中的TaEXPA8基因可以調(diào)控抗氧化酶活性以及可溶性蛋白和脯氨酸含量,增強(qiáng)植株在低溫條件下的抗性[11]。在煙草(Nicotianatabacum)中的研究發(fā)現(xiàn),相對(duì)于對(duì)照,EXPA4過表達(dá)植株在干旱和鹽脅迫下呈現(xiàn)出更好的生長(zhǎng)狀態(tài)[12]。楊樹(Populustomentosa)PtoEXPA12基因影響植株對(duì)Cd的吸收和積累,同時(shí)也改變了植株對(duì)Cd毒害的耐受性[13]。

      大蒜(AlliumsativusL.)是重要的蔬菜作物,在世界范圍內(nèi)廣泛種植。我國是世界上大蒜種植面積和產(chǎn)量最多的國家,同時(shí)也是最大的大蒜消費(fèi)國[14-15]。但大蒜栽培過程中,容易遭受土壤干旱和鹽漬化等非生物脅迫的侵害。挖掘抗逆基因可提高定向選育效率和水平,為高抗大蒜種質(zhì)創(chuàng)新提供理論依據(jù)。鑒于此,本研究從大蒜中分離擴(kuò)展蛋白基因AsEXPA8,對(duì)其進(jìn)行序列分析,并檢測(cè)其在大蒜不同組織和滲透脅迫下的表達(dá)模式,以期為鑒定該基因的生物學(xué)功能,以及為改造大蒜抗逆特性奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 植物材料及處理

      供試大蒜品種為蒼山四六瓣,來源于山東蘭陵,蒜瓣一般為4~6片,肉質(zhì)飽滿,質(zhì)地清脆,辣味濃郁,品質(zhì)較高。

      將大蒜蒜瓣分別于2017年10月3日和2018年10月12日播種于蛭石和有機(jī)質(zhì)組成的混合基質(zhì)(體積比為1∶1)中,分別于20 d(2017年)和16 d(2018年)后將幼苗移至Hogland標(biāo)準(zhǔn)營(yíng)養(yǎng)液中培養(yǎng)。7 d后進(jìn)行鹽脅迫(200 mmol·L-1NaCl)和模擬干旱脅迫(15% PEG6000)處理,時(shí)間為0、1、4和12 h,分別取5株大蒜的葉片、根和蒜瓣進(jìn)行液氮凍樣并保存在 -80℃ 超低溫冰箱中,用于后續(xù)分析。其中,葉片取樣選擇第1和第2片葉的中間部位各一半進(jìn)行混合,根取樣選取所有須根的中間部位進(jìn)行混合,蒜瓣取樣選取整個(gè)種瓣。

      1.2 RNA提取及cDNA合成

      采用天根生化科技(北京)有限公司的RNAprep Pure植物總RNA提取試劑盒提取大蒜根、葉片和蒜瓣的總RNA,利用南京諾唯贊生物科技有限公司的HiScriptⅡ QRT SuperMix for qPCR反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。

      1.3 大蒜擴(kuò)展蛋白基因AsEXPA8的克隆

      根據(jù)淮陰工學(xué)院設(shè)施蔬菜綠色高效栽培及生理實(shí)驗(yàn)室測(cè)定的大蒜轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫[16],檢索AsEXPA8基因。設(shè)計(jì)克隆引物AsEXPA8-F(5′-A T G A C T A A C T C A T C T A C T G C C C C TT-3′)和AsEXPA8-R(5′-C T A A A T C T G G C T T C C C T C G A A G G TC-3′),以大蒜蒼山四六瓣cDNA為模板進(jìn)行擴(kuò)增。根據(jù)2×Tag Master Mix試劑盒(南京諾唯贊生物科技有限公司)的說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄PCR(reverse transcription PCR, RT-PCR),擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),并用瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒(大連TaKaRa公司)回收和純化,連接pMD19-T載體并轉(zhuǎn)化DH5α大腸桿菌,將轉(zhuǎn)化產(chǎn)物均勻涂于溶菌肉湯(lysogeny broth, LB)平板上培養(yǎng),挑取單菌落進(jìn)行菌液PCR驗(yàn)證,將陽性菌液送南京金斯瑞生物科技有限公司測(cè)序。

      1.4 序列分析

      采用ExPASy蛋白質(zhì)組分析工具中的ProtParam軟件預(yù)測(cè)相對(duì)分子量和等電點(diǎn);通過NCBI數(shù)據(jù)庫BLAST功能檢索其他植物的EXPA序列,利用MEGA 5.1軟件構(gòu)建同源進(jìn)化樹;使用DNAMAN 6.0軟件對(duì)預(yù)測(cè)的AsEXPA8及其他植物的EXPA8氨基酸進(jìn)行多序列比對(duì);利用Plant-mPLoc server在線軟件預(yù)測(cè)亞細(xì)胞定位;采用SignalP 5.0軟件進(jìn)行信號(hào)肽預(yù)測(cè)分析;采用TMHMM 2.0軟件進(jìn)行網(wǎng)上運(yùn)行分析跨膜結(jié)構(gòu)域;使用STRING網(wǎng)站預(yù)測(cè)蛋白的相互作用。

      1.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR

      以大蒜SAND作為內(nèi)參基因[17],其表達(dá)引物為BD-SAND-F(5′-G C G T C A A C G A A T G T T C C A A T T A C CA-3′)和BD-SAND-R(5′-T C T C T T C A G T C T C A A C T T C A T C A G C AT-3′)。根據(jù)從大蒜中分離的AsEXPA8序列設(shè)計(jì)表達(dá)檢測(cè)引物BD-AsEXPA8-F(5′-C A C G G C G T T G T T C A A T A A T G G A C TT-3′)和BD-AsEXPA8-R(5′-G T A T G C G T T G C T C T G C C A G T T CT-3′)。按照南京諾唯贊生物科技有限公司提供的ChamQ SYBR qPCR Master Mix試劑盒進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng),目的基因相對(duì)表達(dá)水平用2-ΔΔCt法[18]進(jìn)行計(jì)算。

      1.6 數(shù)據(jù)分析

      采用Microsoft Office Excel 2019進(jìn)行數(shù)據(jù)整理,采用SPSS 24.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,并采用Duncan法分析基因表達(dá)水平在P=0.05水平上的差異顯著性。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 大蒜AsEXPA8基因的分離

      以大蒜品種蒼山四六瓣cDNA為模板,以AsEXPA8-F和AsEXPA8-R為上下游引物進(jìn)行擴(kuò)增,得到一條介于750~1 000 bp的產(chǎn)物(圖1)。測(cè)序結(jié)果發(fā)現(xiàn),該基因含有1個(gè)774 bp的開放閱讀框,編碼257個(gè)氨基酸(圖2)。預(yù)測(cè)其蛋白質(zhì)相對(duì)分子量為27.75 kDa,理論等電點(diǎn)為7.57。

      注:M:DNA分子量標(biāo)準(zhǔn);1:AsEXPA8基因。Note: M: DNA marker. 1: AsEXPA8 gene.圖1 大蒜AsEXPA8基因的RT-PCR擴(kuò)增圖譜Fig.1 RT-PCR amplification pattern of AsEXPA8 gene from garlic

      注:*表示終止密碼子。Note: * indicate termination codon.圖2 大蒜AsEXPA8基因的核苷酸序列及其編碼的氨基酸序列Fig.2 Nucleotide acids and deduced amino acid sequences of AsEXPA8 gene from garlic

      2.2 大蒜AsEXPA8的進(jìn)化樹分析

      采用MEGA 5.1軟件中將大蒜AsEXPA8和擬南芥(Arabidopsisthaliana)的20個(gè)EXPA一同構(gòu)建進(jìn)化樹(圖3)。結(jié)果顯示,大蒜AsEXPA8與擬南芥的AtEXPA8(NP_181 593.1)在進(jìn)化關(guān)系上最為接近,并且與AtEXPA2同屬于一個(gè)分支。

      圖3 大蒜與擬南芥EXPA氨基酸序列的進(jìn)化樹Fig.3 Phylogenetic tree of EXPA from garlic and Arabidopsis

      2.3 大蒜AsEXPA8的氨基酸序列分析

      將大蒜AsEXPA8氨基酸序列與擬南芥的AtEXPA8、萵苣(Lactucasativa)的LsEXPA8(XP_023737376.1)、 大桉(Eucalyptusgrandis)的EgEXPA8(XP_010031088.1)、棉花(Gossypiumhirsutum)的GhEXPA8(XP_016729402.1)和大麻(Cannabissativa)的CsEXPA8(XP_030506062.1)等進(jìn)行比對(duì)(圖4)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),來源于不同植物的EXPA8序列高度保守,序列一致性均高于70%,其中,AsEXPA8與大桉和棉花的EXPA8的一致性高達(dá)78.38%。AsEXPA8基因推導(dǎo)的氨基酸序列具有典型的擴(kuò)展蛋白特征,有1個(gè)組氨酸-苯丙氨酸-天冬氨酸(His-Phe-Asp,HFD)基序,N端含有8個(gè)保守的半胱氨酸(Cys)殘基,C端含有4個(gè)保守的色氨酸(Trp)殘基。

      注:紅色橫線表示保守功能結(jié)構(gòu)域;*表示8個(gè)保守的半胱氨酸殘基;#表示4個(gè)保守的色氨酸殘基。Note: Red lines represent the conserved functional domain. * indicates 8 conserved Cys residues. # indicates 4 Trp residues.圖4 AsEXPA8與其他植物EXPA的氨基酸序列比對(duì)Fig.4 Alignment of the deduced amino acid sequences of AsEXPA8 and EXPA from other plants

      2.4 亞細(xì)胞定位、信號(hào)肽和跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)

      用Plant-mPLoc server對(duì)AsEXPA8進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè),結(jié)果發(fā)現(xiàn),AsEXPA8主要存在于細(xì)胞壁中。用SignalP 5.0檢測(cè)到第1到第30個(gè)氨基酸的一段信號(hào)肽,序列為M T N S S T A P S S K N T L F L F L F S L Y Y L T T S I FA(圖5)。進(jìn)一步通過ExPASy中的在線工具TMHMM 2.0對(duì)AsEXPA8進(jìn)行跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè),結(jié)果表明,在AsEXPA8氨基酸中存在1個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)域,在第13和第35個(gè)氨基酸之間(圖6)。

      圖5 大蒜AsEXPA8信號(hào)肽預(yù)測(cè)分析Fig.5 Signal peptide prediction of garlic AsEXPA8

      圖6 大蒜AsEXPA8氨基酸序列的跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè)Fig.6 Transmembrane domain prediction of amino acid sequences of the garlic AsEXPA8

      2.5 大蒜AsEXPA8的蛋白相互作用網(wǎng)絡(luò)

      通過STRING在線網(wǎng)站,以擬南芥AtEXPA8為模板構(gòu)建了AsEXPA8的蛋白相互作用網(wǎng)絡(luò)(圖7)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),EXPA8可與細(xì)胞壁重構(gòu)相關(guān)的木葡聚糖內(nèi)轉(zhuǎn)糖苷酶/水解酶15(xyloglucan endotransglucosylase/hydrolase protein 15,XTH15)和果膠裂解酶超家族蛋白(pectin lyase-like superfamily protein,AT3G07010/AT5G63180)作用。激素響應(yīng)蛋白如赤霉素調(diào)節(jié)蛋白6(gibberellin-regulated protein,GASA6)、小生長(zhǎng)素上調(diào)RNA(small auxin up RNA,SAUR)SAUR26和SAUR15也與EXPA8作用密切。螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋(helix-loop-helix,HLH)轉(zhuǎn)錄因子多效唑抗性(paclobutrazol resistance,PRE)蛋白PRE1和PRE5也參與了EXPA8的蛋白作用網(wǎng)絡(luò)(圖7)。

      圖7 大蒜AsEXPA8的蛋白相互作用網(wǎng)絡(luò)預(yù)測(cè)Fig.7 Prediction of protein-protein interaction network of garlic AsEXPA8

      2.6 大蒜AsEXPA8基因在滲透脅迫條件下的表達(dá)分析

      采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)檢測(cè)大蒜AsEXPA8基因在模擬干旱脅迫和鹽脅迫條件下的表達(dá)特性(圖8)。AsEXPA8在各組織中均可以表達(dá),且鹽脅迫和干旱脅迫均顯著誘導(dǎo)了AsEXPA8轉(zhuǎn)錄水平的變化。

      注:A:15% PEG6000; B:200 mmol·L-1 NaCl。相同組織內(nèi)不同字母表示在P<0.05水平差異顯著。Note: A: 15% PEG6000. B: 200 mmol·L-1 NaCl. Different lowercase letters in the same tissue represent significant differences at 0.05 level.圖8 大蒜AsEXPA8基因在模擬干旱脅迫(A)和鹽脅迫(B)下的表達(dá)Fig.8 Expression profiles of garlic AsEXPA8 gene under simulated drought stress(A) and salt stress(B)

      由圖8-A可知,干旱脅迫處理1 h后,AsEXPA8在蒜瓣中的表達(dá)水平升至最高,之后隨著脅迫時(shí)間的延長(zhǎng),轉(zhuǎn)錄水平下降;葉片中的AsEXPA8基因表達(dá)水平在PEG6000誘導(dǎo)后呈持續(xù)下降的趨勢(shì),至處理12 h時(shí)較對(duì)照降低了95.79%;根中的AsEXPA8轉(zhuǎn)錄水平在干旱脅迫處理呈先升高后下降的趨勢(shì),并在處理4 h時(shí)達(dá)到最高。由圖8-B可知,鹽脅迫處理后,AsEXPA8基因在蒜瓣中的表達(dá)水平呈現(xiàn)先下降后升高的趨勢(shì),在處理4 h時(shí)最低;在葉片中,AsEXPA8基因在鹽脅迫誘導(dǎo)后迅速下降,之后立即升高,且顯著低于對(duì)照;鹽脅迫后根中的AsEXPA8基因表達(dá)水平在處理1 h時(shí)迅速升至最高,為對(duì)照的1.97倍。

      3 討論

      滲透脅迫指由于環(huán)境因素導(dǎo)致植物不能充分吸水甚至失水的一種現(xiàn)象,會(huì)對(duì)作物的產(chǎn)量和品質(zhì)造成重大威脅,嚴(yán)重時(shí)可導(dǎo)致植株死亡。常見的滲透脅迫因素有干旱、鹽害及凍害等[19-20]。細(xì)胞壁是細(xì)胞抵御外界環(huán)境變化的第一層屏障。研究逆境條件下細(xì)胞壁及其重構(gòu)關(guān)鍵基因的響應(yīng)特征對(duì)于作物抗逆育種和栽培實(shí)踐具有重要意義[21-22]。本研究從大蒜中克隆了1個(gè)編碼細(xì)胞壁關(guān)鍵組分?jǐn)U展蛋白的基因AsEXPA8,對(duì)其序列特征和在滲透脅迫條件下的表達(dá)進(jìn)行了分析,研究結(jié)果為大蒜等作物抗逆育種提供了理論依據(jù)。

      植物中的擴(kuò)展蛋白一般分為4類,而在大蒜中尚鮮見關(guān)于擴(kuò)展蛋白結(jié)構(gòu)及其功能的報(bào)道。本研究中分離的擴(kuò)展蛋白屬于EXPA類,含有1個(gè)組氨酸功能域HFD基序,8個(gè)保守的半胱氨酸(Cys)殘基和4個(gè)保守的色氨酸(Trp)殘基,具備擴(kuò)展蛋白的典型特征。另外,本研究鑒定的AsEXPA8含有一段信號(hào)肽,并具有跨膜結(jié)構(gòu)域,這可能與其功能行使具有重要關(guān)系[1-2]。蛋白互作網(wǎng)絡(luò)結(jié)果顯示,本研究鑒定的AsEXPA8可能與其他細(xì)胞壁組分共同參與細(xì)胞壁重構(gòu),同時(shí)其可能受到赤霉素、生長(zhǎng)素和油菜素內(nèi)酯等激素信號(hào)的調(diào)控[23-25],說明激素可通過調(diào)節(jié)植物細(xì)胞壁的重構(gòu),參與植物響應(yīng)逆境的過程,這為改造植物細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和特性以及誘導(dǎo)植物抗逆性提供了新的方向。

      前人研究表明,擴(kuò)展蛋白基因在植物體內(nèi)不同組織中具有特異的表達(dá)模式。擬南芥中AtEXPA1在保衛(wèi)細(xì)胞中特異表達(dá),其可通過控制保衛(wèi)細(xì)胞結(jié)構(gòu)調(diào)節(jié)氣孔開度[26]。在向日葵(Helianthusannuus)中的研究發(fā)現(xiàn),子房、種皮和胚中擴(kuò)展蛋白基因的特異表達(dá)可能與其產(chǎn)量形成密切相關(guān)[27]。本研究中AsEXPA8基因在葉片中表達(dá)較高,說明其可能參與大蒜葉片發(fā)育的過程。越來越多的研究表明,擴(kuò)展蛋白基因可能在植物應(yīng)對(duì)外界環(huán)境變化的過程中發(fā)揮重要作用。擬南芥中過表達(dá)月季(Rosahybrida)RhEXPA4基因改變了葉片表皮結(jié)構(gòu)、葉綠素含量和側(cè)根生長(zhǎng),繼而提高了植株在逆境環(huán)境條件下的抗性[28]。水稻(Oryzasativa)中的Osexpa7基因可以通過鈉離子轉(zhuǎn)運(yùn)、活性氧清除以及細(xì)胞壁松弛等過程調(diào)控植株在鹽脅迫下的生長(zhǎng)[29]。這些研究結(jié)果表明,擴(kuò)展蛋白可能通過改變細(xì)胞壁結(jié)構(gòu),調(diào)節(jié)植株對(duì)外界環(huán)境變化的適應(yīng)性。本研究鑒定的AsEXPA8能夠同時(shí)響應(yīng)干旱和鹽脅迫,說明其可能參與大蒜植株抵御或適應(yīng)干旱和鹽脅迫的過程。后續(xù)研究可以聚焦于明確該基因的具體功能和作用機(jī)制,并挖掘其在大蒜等作物抗逆育種中的潛力。

      4 結(jié)論

      大蒜AsEXPA8基因開放閱讀框全長(zhǎng)774 bp,編碼的蛋白含有257個(gè)氨基酸,具有擴(kuò)展蛋白典型的HFD基序,N端和C端分別含有8個(gè)保守的半胱氨酸殘基和4個(gè)保守的色氨酸殘基。干旱和鹽脅迫在不同組織內(nèi)均誘導(dǎo)了AsEXPA8基因的表達(dá),說明其可能參與了大蒜植株應(yīng)對(duì)滲透脅迫的過程,具體的作用機(jī)制仍需進(jìn)一步鑒定。

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