文│王林浩 丁樹龍 陳鼎 藺凡 羅瑤瑤 劉金平(青島易邦生物工程有限公司)
在生豬養(yǎng)殖中很容易感染豬細小病毒(PPV),導(dǎo)致妊娠期母豬流產(chǎn)、死胎、畸形胎等,還可能致使母豬不孕,仔豬出現(xiàn)皮膚炎癥與腹瀉等情況。此類病毒在全世界豬群內(nèi)傳播,威脅著整個養(yǎng)豬業(yè)的發(fā)展。在20世紀(jì)60年代發(fā)現(xiàn)PPV后,許多國家陸續(xù)檢測到其抗體與病毒,并開始研究滅活疫苗。本試驗以PPV HN-4株為例,根據(jù)其生物學(xué)特性,針對不同佐劑對PPV滅活疫苗在豬體中的免疫效果進行對比分析,為臨床PPV預(yù)防和治療提供科學(xué)依據(jù)。
1.材料與設(shè)備。
試驗材料:PPV油乳佐劑疫苗、PPV鋁膠佐劑疫苗、納米鋁膠佐劑疫苗、市場銷售的油乳劑疫苗與PPV蜂膠疫苗;所用動物為出生一個月的斷奶仔豬,數(shù)量為24頭,經(jīng)過HI和ELISA檢驗后,PPV抗體呈陰性。
儀器設(shè)備:源于蘇靜集團的超凈工作臺;源于上海寶峰集團的全波長酶標(biāo)儀,型號為Thermo Fisher Scientific;源于欣康醫(yī)療器械公司的微量96孔血凝板;源于美國的型號為Accuri C6流式細胞儀;源于BioXL公司的ELISA試劑盒;源于日本Sanyo的二氧化碳培養(yǎng)箱。
2.操作方法。將試驗所用的24頭仔豬隨機分成6組,每組4頭。A組注射PPV油乳佐劑疫苗,每頭2毫升;B組注射PPV鋁膠佐劑疫苗,每頭2毫升;C組注射納米鋁膠佐劑疫苗;D組注射市場銷售的油乳劑疫苗;E組注射PPV蜂膠疫苗,每頭2毫升;F組注射生理鹽水,每頭2毫升。上述各組均采用頸部肌肉免疫方式,在間隔14天后以相同劑量再次免疫。
3.測定方法。
(1)抗體水平檢測。在接種0~6周之內(nèi),每周隨機選取3頭豬,對其前腔靜脈位置采集血液樣本,將血清分離后備用;將分離后的血清放入溫度為56℃的環(huán)境下,水浴0.5小時,通過酸性為25%高嶺土處理后,再用HI檢驗其抗體水平,生成抗體動態(tài)規(guī)律曲線;根據(jù)ELISA試劑盒的操作流程進行檢測,借助ELISA原理對PPV抗體進行檢驗;抗體效價以標(biāo)記酶的OD630指標(biāo)為衡量標(biāo)準(zhǔn),如若結(jié)果超過0.4,則為“陽性”;如若在0.2~0.4范圍內(nèi)則為“可疑”,如若結(jié)果低于0.2則為“陰性”。
(2)T淋巴細胞亞群檢測。在接種0~6周之內(nèi),每周隨機選取3頭豬,對其前腔靜脈位置采集血液樣本,檸檬酸鈉抗凝,分離淋巴細胞,利用PBS溶液控制細胞數(shù)量,將其提升到5.0×106/毫升,再利用流式細胞儀對T淋巴細胞亞群進行檢驗。
(3)血清抗體效價測定。在免疫接種3周后,隨機選取3頭豬進行靜脈采血,血清分離后,放入溫度為-20℃的冰箱內(nèi)保存,以備檢測。按照MEM培養(yǎng)液體積1%接種PPV疫苗,放入96孔板內(nèi),每個孔為100微升,在溫度為37℃、濃度為5%的二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),加入冷卻后的乙醇,100微升孔固定,風(fēng)干后,再加入5%脫脂乳到孔中,密封30分鐘,用PBST洗滌3次。將事先準(zhǔn)備好的血清用PBS稀釋,再將100微升孔加入到96孔板內(nèi),在溫度為37℃的搖床內(nèi)孵育60分鐘,利用PBSH洗滌3次后,將96孔板放入熒光顯微鏡下觀察可得。
4.統(tǒng)計學(xué)處理。利用Excel和SPSS12.5軟件對測定數(shù)據(jù)進行整合分析,得出各項指標(biāo)均值,以Means±SD形式表示,再用SPSS軟件實施Dun can’s深層分析。
1.免疫豬血清HI檢測結(jié)果。根據(jù)HI試驗結(jié)果可知,不同組別的樣本在接種后均會對豬體產(chǎn)生刺激,進而形成HI抗體,且抗體水平與免疫時長具有正相關(guān)關(guān)系,在接種后第一周,C組抗體水平明顯超過B組;在接種第3周后,C組抗體水平達到最高值,與A組相比提前14天,與B組相比提前7天;A組抗體峰值相對最高,為11.58log2,C組次之,為11.24log2,B組排名第三,為10.95log2;以上三種疫苗在抗體峰值方面均超過D組與E組。在抗體水平方面,接種后第6周C組的抗體滴度達到9.72log2,A組為11.45log2,B組為9.87log2,這意味著B組的抗體滴度流失相對較快,A組相對較慢。
2.豬血清內(nèi)抗體水平。經(jīng)過ELISA試劑盒檢測后,對不同時段收集到的血清抗體樣本進行匯總,根據(jù)試驗結(jié)果可知,不同組別樣本在接種疫苗后均會使豬體受到刺激,形成抗PPV抗體,但在抗體水平、峰值時間方面有所區(qū)別。在接種后第二周,C組抗體水平超過B組;在接種第3周后,C組的抗體水平達到最大值,與A組相比提前7天;在接種第4周后,A組的抗體水平提高到最大,且與剩余組別間的差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.05;在抗體峰值方面,A組為最高,OD630值為0.624,C組次之,為0.431,B組排名第三,為0.264。
3.外周血內(nèi)T淋巴細胞亞群變化。根據(jù)圖1可知,在接種完畢后,各組樣本的外周血T淋巴細胞亞群均發(fā)生改變,且數(shù)量與原本相比都有一定程度的提升,C組領(lǐng)先,與F組間差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.05;各組間差異不存在統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.05。
1.HI檢測后豬抗體水平分析。血凝試驗在PPV檢測中的意義重大,該試驗的操作便捷、經(jīng)濟性強,但對試劑配置要求較高,試劑準(zhǔn)確度、判定時間、豚鼠紅細胞配置濃度等都會影響試驗成敗。在試驗期間,為了確保準(zhǔn)確性與特異性不受影響,可用酸性高嶺土對準(zhǔn)備檢測的血清進行處理,將內(nèi)部非特異性血凝制物去除。根據(jù)研究結(jié)果可知,A組、B組和C組在接種后均會形成較高抗體滴度。三者中的C組抗體峰值出現(xiàn)時間較早,在接種后第三周便可達到最大值,與B組相比提前7天,與A組相比提前14天,且C組抗體水平在接種后首周明顯超過B組,二者差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.05,但C組抗體滴度消耗相對較快,在三種疫苗中,A組抗體峰值水平為最高。
2.ELISA檢測抗體水平分析。針對每周采集到的血清樣本利用ELISA試劑盒進行檢測,在接種后不同組別樣本在接種疫苗后均會使豬體受到刺激,形成抗PPV抗體,但在抗體水平、峰值時間方面有所區(qū)別。在接種后第二周,C組抗體水平超過B組;在接種第3周后,C組的抗體水平達到最大值,與A組相比提前7天;在接種第4周后,A組的抗體水平提高到最大,與剩余組差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,P<0.05。對于上述兩種抗體檢測方式來說,在抗體消長規(guī)律方面基本相同,根據(jù)結(jié)果可知,三種佐劑疫苗中的C組抗體產(chǎn)生時間、峰值產(chǎn)生事件均相對較早,但抗體消降速度也較快,A組雖然抗體產(chǎn)生時間較晚,但消降速度較慢,持續(xù)時間相對較長。本研究對納米佐劑能夠提前誘導(dǎo)PPV的抗體應(yīng)答進行驗證,結(jié)果與前人研究基本相同,說明納米佐劑之所以能夠促進豬抗體應(yīng)答提高,可能受納米佐劑中的載體結(jié)構(gòu)特性影響。
◎圖1 免疫后豬外周血內(nèi)T淋巴細胞占比情況
3.疫苗誘導(dǎo)細胞免疫應(yīng)答。該試驗對豬體外周血內(nèi)的T淋巴細胞群進行檢驗,通過流式細胞儀完成,對多種佐劑疫苗接種后的細胞應(yīng)答情況進行研究。根據(jù)研究結(jié)果可知,各組疫苗均可對豬體產(chǎn)生刺激,激發(fā)細胞免疫力,但不同組別之間差異無統(tǒng)計學(xué)意義,P>0.05。與B組相比,C組T淋巴細胞亞群的占比相對較高,二者無統(tǒng)計學(xué)意義,P>0.05,這說明三種疫苗均可對豬體細胞免疫起到一定強化功效。該試驗制備的三種PPV疫苗在經(jīng)過接種后,利用HI檢測與ELISA檢測后,均說明該疫苗可對豬體特異性產(chǎn)生促進作用,借助流式細胞技術(shù)對T淋巴細胞亞群變動情況進行檢測,根據(jù)研究結(jié)果可知,PPV疫苗均可促進機體細胞免疫功能提升,說明具有較強的免疫原性、反應(yīng)原性,為PPV疫苗研發(fā)與推廣應(yīng)用打下堅實基礎(chǔ)。