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      具有鐵螯合能力的驢骨膠原肽酶解條件優(yōu)化及微觀形態(tài)

      2022-09-27 06:10:06毛嘉敏陳昱瑤王婧賢李馨雨范柳萍成向榮
      糧油食品科技 2022年5期
      關(guān)鍵詞:骨膠原亞鐵螯合

      毛嘉敏,陳昱瑤,宋 潔,張 燕,王婧賢,李馨雨,范柳萍,成向榮

      (江南大學(xué) 食品學(xué)院,江蘇 無錫 214122)

      驢產(chǎn)業(yè)是我國名優(yōu)新特產(chǎn)業(yè),正處于發(fā)展的重要戰(zhàn)略機遇期,逐漸向肉用、藥用、保健及生物制品開發(fā)等多用途的“活體經(jīng)濟”轉(zhuǎn)變[1]。驢的眾多副產(chǎn)品中,驢骨性平、味甘,入脾、肝、腎經(jīng),具有滋陰補腎,強筋壯骨的功效[2]。驢骨不僅含有豐富的鈣質(zhì),還含有骨蛋白、骨多肽、骨多糖,以及磷、鎂、錳、鋅、銅等骨生長必需的全骨營養(yǎng)素[3]。其中驢骨膠原多肽在食品、化妝品行業(yè)都具有較大的應(yīng)用前景。在目前國內(nèi)消費市場上,大多數(shù)驢骨膠原多肽的開發(fā)利用以補充膠原蛋白和鈣質(zhì)為主要方向,制備生產(chǎn)相應(yīng)的驢骨膠原鈣片、驢骨膠原肽粉等[4-5],鮮有研究關(guān)注驢骨膠原特征氨基酸對其他微量元素的潛在作用。

      鐵是人體必需的微量元素之一,影響人體各代謝通路,鐵攝入不足或吸收受到抑制時會發(fā)生缺鐵性貧血(iron deficiency anemia,IDA),出現(xiàn)疲勞、虛弱等臨床癥狀[6-7]。針對缺鐵的主要飲食策略是補充與強化[8]。在各類補鐵劑中,多肽鐵螯合物可通過肽轉(zhuǎn)運體系被機體吸收,因其較高的生物利用度與較低的副作用成為當前研究開發(fā)的熱點[9]。曹叢叢[10]的研究表明,阿膠在消化過程中產(chǎn)生的活性肽能夠與鐵離子螯合,形成的螯合物可有效促進鐵離子的吸收,具備潛在的補血活性。進一步動物試驗研究證明,這一螯合物可以提高鐵的生物利用率并改善機體鐵穩(wěn)態(tài),有效改善IDA[11],同時改善IDA小鼠的腸道炎癥,緩減IDA引起的腸道菌群失調(diào)[12]。另外,研究發(fā)現(xiàn)[13],驢骨膠和驢皮膠的膠原蛋白基本相同,同宗同源,但具體氨基酸含量有所差異,驢骨膠總蛋白含量高,為 75.3%,對比驢皮膠為 75.1%,與補血、免疫調(diào)節(jié)相關(guān)的氨基酸(甘氨酸、脯氨酸、賴氨酸、丙氨酸)含量更高。

      基于前期研究,我們推測驢骨膠原肽是一種潛在的活性成分,與驢皮膠類似,具有螯合保護亞鐵離子、促進亞鐵離子吸收的作用。因此,本研究采用酶解法制備驢骨膠原肽,并采用正交法優(yōu)化酶解條件,探究其與亞鐵離子的螯合能力,以期為后續(xù)探究驢骨膠原肽的潛在補血活性奠定基礎(chǔ),為開發(fā)驢骨膠原肽相關(guān)產(chǎn)品提供科學(xué)參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      剔肉驢骨段:市場購置;胰蛋白酶(1∶250)、木瓜蛋白酶(≥800 U/mg)、堿性蛋白酶(≥200 U/mg)、復(fù)合蛋白酶(≥120 U/mg)、風(fēng)味蛋白酶(≥20 U/mg):阿拉丁生物科技有限公司;濃鹽酸、石油醚、氫氧化鈉、乙二胺四乙酸二鈉、冰醋酸、抗壞血酸、七水合硫酸亞鐵(FeSO4·7H2O)、鄰菲羅啉、無水乙醇等試劑均為分析純:國藥化學(xué)試劑有限公司;BCA試劑盒:翌圣生物科技(上海)股份有限公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      破骨機:河北德科機械科技有限公司;KJ-300超聲波發(fā)生器:無錫市科潔超聲電子設(shè)備有限公司;高壓滅菌鍋:致微(廈門)儀器有限公司;Centrifuge 5430R臺式高速冷凍離心機:德國Eppendorf公司;HH-3A恒溫水浴鍋:常州國華電器有限公司;ST3100 pH計:常州奧豪斯儀器有限公司;Epoch酶標儀:美國 Biotek公司;SCIENTZ-10N冷凍干燥機:寧波新芝生物股份有限公司;冷場發(fā)射掃描電子顯微鏡:日本株式會社日立高新技術(shù)公司。

      1.3 實驗方法

      1.3.1 驢骨粉的制備

      取解凍后的驢骨段,去除骨髓,并浸入5%(w/v)NaOH溶液中1 h,且骨與溶液之比為1∶2(w/v)。浸泡完畢后,用去離子水反復(fù)洗滌3次并除去附著于骨段的肉,待骨段晾干至恒重后稱量。將骨段與沸程為60~90 ℃的石油醚以1∶2(w/v)的比例混合,每2 h更換溶劑并去除油脂。油脂去除后,用去離子水洗滌骨段3次并在干燥器中晾至骨段表面無明顯水分殘留后,使用 0.5 mol/L鹽酸溶液以1∶10料液比對骨段進行脫鈣處理,每三天更換一次鹽酸,共更換三次。將脫脂、脫鈣后的骨段使用粉碎機粉碎,放入烘箱中,在37 ℃下烘干至恒重并稱量。驢骨粉避光保存于干燥器中。

      1.3.2 驢骨蛋白酶解預(yù)處理

      為了提高酶解效率,需要對蛋白質(zhì)作變性預(yù)處理,該研究采用熱處理法。烘干后的驢骨粉與蒸餾水以1∶20的比例進行混合,在沒有酶參與的條件下,于121 ℃的高壓滅菌鍋中,對其進行加熱預(yù)處理。分別處理0、10、20、30、40 min。隨后離心,取上清液使用 BCA法測蛋白濃度,以確定最佳熱處理時間。

      1.3.3 驢骨酶解液的制備

      取適量高溫蒸煮過的驢骨液于4 ℃,6 000 r/min下離心20 min,取上清液20 mL于50 mL離心管中,添加相應(yīng)量的蛋白酶,并調(diào)節(jié)溫度和pH值,酶解相應(yīng)時間后高溫滅酶,冷卻至室溫后,于4 ℃,4 000 r/min離心20 min得到上清液,用0.45 μm水系微孔濾膜過濾得到濾液,即驢骨酶解液。

      1.3.4 驢骨膠原肽鐵螯合物的制備

      取2 mL驢骨酶解液放入離心管中,空白組取2 mL同等條件下保溫的驢骨原液,調(diào)節(jié)pH至5.5,加入1 mL乙酸鈉緩沖溶液,為防止Fe2+被氧化,加入200 μL抗壞血酸溶液(20 mg/mL),然后加入 1 mL FeSO4·7H2O 溶液(100 μg/mL),于恒溫振蕩器中保持37 ℃螯合30 min。

      1.3.5 螯合率的測定

      參考曹叢叢[10]鄰菲羅琳比色法測亞鐵離子含量的方法并稍作改進。

      1.3.5.1 標準曲線的繪制 配制 10 μg/mL FeSO4·7H2O 溶液,分別取 0、0.2、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、3.0 mL于10 mL離心管中,加水稀釋至6 mL,而后依次加入20 mg/mL抗壞血酸0.2 mL,乙酸鈉緩沖液1 mL,0.5%鄰菲羅啉0.4 mL,混勻,加水稀釋至10 mL。靜置反應(yīng)15 min,吸取200 μL至96孔板中,用酶標儀測定在510 nm波長下的吸光值。以吸光度值作為縱坐標,F(xiàn)e2+濃度作為橫坐標,繪制Fe2+濃度標準曲線,并計算線性回歸方程,得到回歸方程y=0.102 8x-0.006 3,R2=1。

      1.3.5.2 樣品鐵螯合率的測定 取螯合完成的樣品,加入400 μL鄰菲羅琳溶液,用去離子水定容至10 mL,混合,靜置15 min,測定在510 nm波長下的吸光值。根據(jù)標準曲線與樣品吸光值計算樣品在體系中的濃度。

      螯合率計算公式為:

      式中:X為螯合率;C1為空白阿膠體系中的游離亞鐵離子濃度;C2為樣品體系中的游離亞鐵離子濃度。

      1.3.6 最適蛋白酶篩選

      取適量高溫蒸煮過的驢骨液于4 ℃,6 000 r/min下離心20 min,取上清液20 mL于50 mL離心管中,分別添加等酶活的復(fù)合蛋白酶、木瓜蛋白酶、堿性蛋白酶、風(fēng)味蛋白酶、胰蛋白酶,在各自最佳酶解溫度和pH值下,酶解3 h后,制備驢骨膠原肽鐵螯合物并測定驢骨肽與亞鐵離子螯合率,以螯合率為主要指標,得到酶解效果最好的蛋白酶。各蛋白酶的最適溫度、pH見表1。

      表1 各蛋白酶的最適溫度、pHTable 1 Optimum temperature and pH of each protease

      1.3.7 最佳蛋白酶單因素酶解實驗

      確定最佳蛋白酶后,選取酶底比、酶解pH、酶解溫度、酶解時間四個因素對進行考察。

      1.3.7.1 酶底比對螯合率的影響 固定反應(yīng)條件酶解時間3 h、溫度50 ℃、pH=7.0,設(shè)定酶底比為750、1 000、1 250、1 500、1 750 U/mL,以亞鐵離子螯合率為主要考察指標,酶解制備驢骨膠原蛋白肽,與亞鐵離子進行螯合,探究酶底比對螯合率的影響。

      1.3.7.2 酶解 pH對螯合率的影響 固定反應(yīng)條件酶解時間3 h、溫度50 ℃、酶底比為1 250 U/mL,設(shè)定酶解pH為5.0、6.0、7.0、8.0、9.0,以亞鐵離子螯合率為主要考察指標,酶解制備驢骨膠原蛋白肽,與亞鐵離子進行螯合,探究酶底比對螯合率的影響。

      1.3.7.3 酶解溫度對螯合率的影響 固定反應(yīng)條件酶解時間3 h、酶解pH 7.0、酶底比為1 250 U/mL,設(shè)定酶解溫度為 30、40、50、60、70 ℃,以亞鐵離子螯合率為主要考察指標,酶解制備驢骨膠原蛋白肽,與亞鐵離子進行螯合,探究酶底比對螯合率的影響。

      1.3.7.4 酶解時間對螯合率的影響 固定反應(yīng)條件酶解溫度50 ℃、酶解pH 7.0、酶底比為1 250 U/mL,設(shè)定酶解時間為1、2、3、4、5 h,以亞鐵離子螯合率為主要考察指標,酶解制備驢骨膠原蛋白肽,與亞鐵離子進行螯合,探究酶底比對螯合率的影響。

      1.3.8 正交法優(yōu)化酶解條件

      根據(jù)單因素實驗結(jié)果,考慮交互作用的影響,設(shè)計四因素三水平的正交實驗,選用 L27(313)正交表進行相應(yīng)的正交實驗,計算每次實驗驢骨膠原肽和亞鐵離子的螯合率,設(shè)計如表2。

      表2 螯合正交因素水平表Table 2 Chelate orthogonal factor level table

      1.3.9 螯合產(chǎn)物形態(tài)與微觀結(jié)構(gòu)表征

      將最優(yōu)配方得到的螯合產(chǎn)物冷凍干燥后放置陰涼、密閉環(huán)境下儲存。拍照記錄產(chǎn)物形態(tài);采用冷場發(fā)射掃描電子顯微鏡(FESEM)掃描,分別放大1 000倍、5 000倍觀察其微觀結(jié)構(gòu)。

      1.4 數(shù)據(jù)分析

      實驗數(shù)據(jù)用Graphpad Prism 8.0軟件進行數(shù)據(jù)處理以及作圖,正交法優(yōu)化采用SPSS 26.0,數(shù)據(jù)為3次實驗的平均值。顯著性分析采用單因素方差分析,Duncan多重比較檢驗,以P<0.05表示為差異顯著,用小寫字母a、b、c、d表示差異。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 驢骨蛋白酶解預(yù)處理時間的確定

      高溫蒸煮可使驢骨中的蛋白溶出,這可能是由于骨蛋白受熱變性,內(nèi)部非極性基團暴露到分子表面,增強了骨蛋白的水溶性[14]。同時,熱預(yù)處理會導(dǎo)致分子間和分子內(nèi)的重排,暴露隱藏的裂解位點,增加水解部位,利于酶解[15]。

      由圖1可知,隨著預(yù)處理時間的延長,酶解驢骨蛋白的蛋白濃度逐漸增高,在121 ℃下高溫加熱30 min時蛋白濃度達到最高。超過該時間,蛋白濃度逐漸下降,原因可能為高溫加熱時間過長使大多數(shù)蛋白質(zhì)發(fā)生變性,其分子內(nèi)部和分子間發(fā)生聚合,形成了不溶解的產(chǎn)物。張永秀等[16]以牛骨粉為原料,發(fā)現(xiàn)經(jīng)121 ℃,30 min的加熱預(yù)處理能顯著提高蛋白質(zhì)水解度和氮溶出率,與本實驗結(jié)果類似,說明蛋白質(zhì)在不同變性程度時對水解度影響很大,變性程度過高反而不利于水解。因此確定驢骨蛋白酶解預(yù)處理條件為在121 ℃下高溫加熱30 min。

      圖1 不同預(yù)處理時間的蛋白液吸光度和蛋白濃度Fig.1 Absorbance and protein concentration of protein solution at different pretreatment times

      2.2 最適蛋白酶篩選

      酶解是制備降血壓肽、抗氧化肽、免疫肽等生物活性肽的有效方法。酶解可以改善食品的功能特性,而不影響其營養(yǎng)價值[17]。由于酶的不同切割特異性,選擇合適的蛋白水解酶至關(guān)重要,這會影響蛋白肽的釋放量[18]。由圖2可知,5種不同的食品級蛋白酶在各自最適反應(yīng)條件下反應(yīng),保持酶活相同,對驢骨蛋白的水解能力不同,酶解后的產(chǎn)物多肽與鐵的螯合率也不同。酶解得到的驢骨膠原肽與鐵螯合能力為:木瓜蛋白酶>胰蛋白酶>堿性蛋白酶>風(fēng)味蛋白酶>復(fù)合蛋白酶。木瓜蛋白酶為含疏基肽鏈內(nèi)切酶,能適當降解結(jié)締組織、膠原蛋白及彈性蛋白,其酶解 pH范圍為5~11,在酸性、中性、堿性環(huán)境下均能分解蛋白[19],跨度較大,利于設(shè)變量梯度。結(jié)合酶解效果,選擇木瓜蛋白酶進行下一步實驗。

      圖2 不同蛋白酶酶解效果比較Fig.2 Comparison of enzymatic hydrolysis effects of different proteases

      2.3 木瓜蛋白酶酶解條件優(yōu)化

      2.3.1 酶底比對螯合率的影響

      不同酶底比對鐵螯合率的影響如圖3所示。由圖可知,酶底比在750~1 000 U/mL的范圍內(nèi),螯合率隨著酶添加量的增多幾乎不變,無顯著差異(P>0.05),在1 250 U/mL時螯合率出現(xiàn)最大值,顯著高于其他組螯合率水平(P<0.05),而后螯合率不斷下降。這可能是由于酶底比小于1 000 U/mL時,酶與底物接觸點較少,水解出的多肽含量低,螯合位點少[20]。隨著加酶量不斷增加,多肽含量增加,螯合位點增加,但是當加酶量達到飽和之后, 酶會繼續(xù)水解小分子蛋白質(zhì)及多肽,蛋白質(zhì)水解會更加徹底,從而導(dǎo)致多肽含量的降低,螯合位點減少[21],故最適酶底比為1 250 U/mL。

      圖3 不同酶底比對螯合率的影響Fig.3 Effect of different enzyme substrate ratios on chelation rate

      2.3.2 酶解時間對螯合率的影響

      不同酶解時間對螯合率的影響如圖4所示。在酶解時間為1~3 h的范圍內(nèi),鐵螯合率基本不變,無顯著差異(P>0.05),在4 h時鐵螯合率最大,顯著高于其他組(P<0.05),4 h后鐵螯合率逐漸降低。其原因可能在于反應(yīng)初期,底物質(zhì)量濃度較高,蛋白酶與底物蛋白有充足的位點相互結(jié)合,暴露出較多的酶切位點,有利于蛋白酶進行酶切,從而產(chǎn)生多肽,提供了大量的螯合位點[22]。此外酶切位點的暴露需要時間,但是當酶解時間過長時,多肽進一步被水解成氨基酸,多肽產(chǎn)率降低,螯合位點減少。同時,隨著酶解時間的增加,底物特異性位點基本被完全反應(yīng),繼續(xù)反應(yīng)不會導(dǎo)致額外的活性基團暴露。因此,最適酶解時間選擇4 h。

      圖4 不同酶解時間對螯合率的影響Fig.4 Effect of different enzymolysis time on chelation rate

      2.3.3 酶解溫度對螯合率的影響

      不同酶解溫度對鐵螯合率的影響如圖 5所示。溫度在30~40 ℃范圍內(nèi),鐵螯合率隨溫度升高而顯著提高(P<0.05),在40 ℃達到最大值后下降。這是因為在相對較低的溫度下,酶的活性較小,分子的動能較小,酶與底物之間的碰撞也較少,反應(yīng)效率低[23]。隨著溫度的升高,分子中的非共價鍵和二硫鍵逐漸斷裂,導(dǎo)致蛋白質(zhì)的解聚和去折疊,有利于暴露更多酶切位點,從而產(chǎn)生更多具有免疫活性的肽段[15]。而當超過其最適溫度后,酶活性降低,導(dǎo)致酶解作用減弱。此時,過高的溫度開始引起底物逐漸變性(熱聚集),暴露出的酶切位點減少,具有鐵螯合能力的肽段減少,螯合能力下降。因此,最適酶解溫度選取40 ℃。

      圖5 酶解溫度對螯合率的影響Fig.5 Effect of enzymatic hydrolysis temperature on chelation rate

      2.3.4 酶解pH對螯合率的影響

      作為生物催化劑,pH對蛋白酶的催化活性影響很大。研究表明,pH主要通過影響底物的解離狀態(tài)、酶的空間結(jié)構(gòu)、活性中心及與底物結(jié)合程度等影響酶解反應(yīng)。YU等[24]認為,蛋白酶的空間結(jié)構(gòu)改變會引起更多的活性位點暴露;在一定的pH范圍內(nèi),底物蛋白中的肽鍵被破壞會產(chǎn)生一些抗氧化水解物,可以增加DPPH自由基清除活性。

      不同酶解pH對鐵螯合率的影響如圖6所示。蛋白酶作為生物活性物質(zhì),具有發(fā)揮作用的最適pH范圍,過酸和過堿都會使得酶活力下降,致使多肽產(chǎn)率降低,螯合位點減少。在 pH高于實驗酶的最適 pH條件下,驢骨液中較多的 OH-可能會抑制水解反應(yīng)的發(fā)生,影響酶對蛋白質(zhì)的水解效果[25]。pH為 8時,水解效果最好,螯合率最高,因此最適酶解pH選擇8。

      圖6 酶解pH對螯合率的影響Fig.6 Effect of enzymatic hydrolysis pH on chelation rate

      2.4 正交實驗

      根據(jù)正交表安排實驗,同時留取3列空白,作為誤差估計。按正交表實施實驗,共27個組合,考察各組合的鐵螯合率。對正交實驗結(jié)果進行了極差和方差分析,見表3和表4。

      表3 正交實驗極差分析表Table 3 Range analysis table of orthogonal test

      表4 正交實驗結(jié)果方差分析表Table 4 Analysis of variance of orthogonal test results

      本實驗指標為螯合率,要求越大越好。分析可得,因素A、AC具有顯著性(P<0.05),其他因素對指標的影響不顯著,可忽略不計,并記入誤差。因素影響主次順序為A>AC>B>D>AB>BC>C,對于高度顯著的因素A,直接由K值判斷取A1為優(yōu)水平。其中AC交互項的影響因素比C要大,所以通過二元表獲得C的優(yōu)先水平,如表5所示。

      表5 A、C交互作用二元表Table 5 A and C interaction binary table

      A1C3螯合率最大,且與A因素選擇一致,所以C因素選取C3,根據(jù)K值,并結(jié)合生產(chǎn)實際,確定優(yōu)水平組合為A1B1C3D1,由于此組合在正交實驗中并沒有出現(xiàn),進行模擬。比較發(fā)現(xiàn)螯合率為38.40%,高于表4中各組螯合率,這一表現(xiàn)也優(yōu)于同為產(chǎn)業(yè)副產(chǎn)品的椰子球蛋白多肽(30.67%)[26]、滸苔多糖(19.6%)[27]等,具有一定的開發(fā)利用價值。因此得到最優(yōu)水平為A1B1C3D1,即酶底比1 000 U/mL,時間為3 h,溫度為50 ℃,pH 7.0。

      2.5 螯合產(chǎn)物形態(tài)與微觀結(jié)構(gòu)表征

      對螯合產(chǎn)物拍照觀察。如圖7所示,該產(chǎn)物表面疏松干燥,顆粒均勻,呈現(xiàn)棕褐色粉末狀結(jié)構(gòu)。

      圖7 螯合產(chǎn)物外觀圖Fig.7 Appearance diagram of chelating product

      使用冷場發(fā)射掃描電子顯微鏡對螯合產(chǎn)物進行掃描,分別放大1 000倍和5 000倍,觀察其微觀形態(tài),如圖8??梢园l(fā)現(xiàn),該產(chǎn)物的微觀結(jié)構(gòu)為疏松多孔的片狀結(jié)構(gòu),孔洞大小較為均勻,但片狀大小不一,可能是在冷凍干燥過程中產(chǎn)生了斷裂。

      圖8 螯合產(chǎn)物的電鏡掃描圖(1 000倍、5 000倍)Fig.8 Scanning electron micrographs of chelated products(1 000 times, 5 000 times)

      3 結(jié)論

      本研究建立了一種酶解制備驢骨膠原肽的方法,通過單因素和正交優(yōu)化實驗,優(yōu)化了酶解條件,并考察了驢骨膠原肽與亞鐵離子的螯合能力。結(jié)果發(fā)現(xiàn),熱處理可以提高驢骨蛋白肽的產(chǎn)率,121 ℃蒸煮處理30 min,可以得到溶出蛋白含量最高的驢骨蛋白溶液。使用木瓜蛋白酶,在酶底比1 000 U/mL、酶解pH 7.0、酶解溫度50 ℃時酶解 3 h,得到與亞鐵離子螯合能力最強的驢骨膠原肽,螯合率達到38.40%。對螯合產(chǎn)物進行冷凍干燥,此時產(chǎn)物為疏松的棕褐色粉末狀,其微觀形態(tài)呈現(xiàn)疏松多孔的片狀結(jié)構(gòu)。對驢骨膠原肽酶解條件的優(yōu)化有利于提高酶解效率,使其表現(xiàn)出更高的鐵螯合能力和促鐵吸收潛力。這為后續(xù)研究驢骨膠原肽與亞鐵離子的螯合機制以及產(chǎn)物功效評價奠定了基礎(chǔ)。

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