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      葡萄糖和丁酸鈉對CHO-rHSA工程細(xì)胞株中rHSA產(chǎn)量的影響

      2022-09-14 09:59:30牛宇輝李向茸吳貝李洪珊李殿玉陳磊魏鎖成馮若飛
      生物技術(shù)通報 2022年7期
      關(guān)鍵詞:細(xì)胞株酸鈉葡萄糖

      牛宇輝 李向茸 吳貝 李洪珊 李殿玉 陳磊 魏鎖成馮若飛

      (1.西北民族大學(xué)生物醫(yī)學(xué)研究中心 生物工程與技術(shù)國家民委重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,蘭州 730030;2.西北民族大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,蘭州 730030)

      人血清白蛋白(human serum albumin,HSA)是一種在人體內(nèi)帶負(fù)電荷的由585個氨基酸組成的單鏈非糖基化的可溶性蛋白單體,分子量為66.5 kD[1],為人血漿中含量最多、分子較小、溶解度大、功能較多的一種蛋白質(zhì)。HSA的三級結(jié)構(gòu)由Domain-I、Domain-II和Domain-III三個結(jié)構(gòu)域所構(gòu)成,每個結(jié)構(gòu)域均由2個含有4-6個α-螺旋的亞結(jié)構(gòu)域組成,6個亞結(jié)構(gòu)域聚合形成一個不中心對稱的心型分子結(jié)構(gòu)[2-3]。HSA在人體內(nèi)的主要作用是維持血漿膠體滲透壓及總蛋白水平,人血白蛋白制劑當(dāng)前廣泛應(yīng)用于臨床醫(yī)學(xué)和生物制藥等領(lǐng)域,其中臨床上主要用于治療休克、水腫和作為血漿容量擴(kuò)充劑等;生物制劑領(lǐng)域常常被用作疫苗保護(hù)劑和無血清培養(yǎng)基添加劑等[4-6]。目前我國商品化的HSA主要是從人血漿或胎盤血中通過低溫乙醇法或柱層析法進(jìn)行提取制備的。其不足之處主要有兩點(diǎn):(1)血漿來源有限,市場供應(yīng)緊張;(2)可能增加血源性傳染疾病的擴(kuò)散,如艾滋病、肝炎[7-8]。與之相比,采用基因工程生產(chǎn)的重組人血清白蛋白(recombinant human serum albumin,rHSA)其優(yōu)點(diǎn)主要有生物活性與天然的HSA相同,還兼具可大規(guī)模生產(chǎn),來源不易受病原體污染等多種優(yōu)點(diǎn)[9-11],因此,rHSA市場蘊(yùn)含著巨大的發(fā)展?jié)摿Α?/p>

      葡萄糖作為哺乳動物細(xì)胞培養(yǎng)基中的重要的碳源物質(zhì),在CHO細(xì)胞培養(yǎng)過程中通過添加葡萄糖可以顯著提高活細(xì)胞密度和外源蛋白表達(dá)量[12]。但葡萄糖會通過糖酵解代謝產(chǎn)生乳酸,乳酸又會通過影響pH進(jìn)而影響細(xì)胞生長,故常見的CHO細(xì)胞無血清培養(yǎng)基中的葡萄糖濃度一般控制在5.0-7.0 g/L左右。丁酸鹽作為一種小分子短鏈脂肪酸可以提高細(xì)胞中多種外源蛋白的表達(dá)量,如人促紅細(xì)胞生成素[13]、嵌合抗體等[14],依據(jù)其脂肪酸特性還可誘導(dǎo)腸道抗菌肽的產(chǎn)生[15]。有研究表明,丁酸鈉可通過延緩細(xì)胞周期來提高外源蛋白表達(dá)量,但同時也抑制細(xì)胞生長[16-17]。本實(shí)驗(yàn)以表達(dá)重組人血清白蛋白的CHO-rHSA工程細(xì)胞株為研究對象,考察培養(yǎng)過程中葡萄糖及丁酸鈉對rHSA產(chǎn)量的影響,并優(yōu)選出利于rHSA表達(dá)的最佳葡萄糖及丁酸鈉組合方案,為藥用輔料級及獸用生物制品中重組人血清白蛋白的工業(yè)生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      本試驗(yàn)所用表達(dá)重組人血清白蛋白的全懸浮單克隆CHO工程細(xì)胞株CHO-rHSA由西北民族大學(xué)生物醫(yī)學(xué)研究中心提供。SFM4CHO培養(yǎng)基購自Cytiva(原Hyclone公司);HRP標(biāo)記的抗人血清白蛋白抗體(ab24438)及Human Albumin ELISA Ki(tab108788)購自Abcam公司;無水葡萄糖購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;丁酸鈉(NaBu)購自上海麥克林生化科技有限公司。

      1.2 方法

      1.2.1 葡萄糖對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響 復(fù)蘇1支CHO工程細(xì)胞株CHO-rHSA,迅速離心后棄去上清,將細(xì)胞加入至SFM4CHO培養(yǎng)基中,隨后置于37℃、5% CO2搖床中培養(yǎng),轉(zhuǎn)速為120 r/min。待細(xì)胞狀態(tài)穩(wěn)定后,以0.5×106cells/mL的密度接種至125 mL搖瓶中,培養(yǎng)體積為50 mL,培養(yǎng)條件同上。之后從第4天開始每天測定其活細(xì)胞密度、細(xì)胞活力及培養(yǎng)基中的葡萄糖含量。待培養(yǎng)基中葡萄糖含量降低至2.0或3.0 g/L時,添加葡萄糖至終濃度為5.0或7.0 g/L,以不添加葡萄糖組作為對照,具體補(bǔ)糖策略見表1。直到培養(yǎng)第14天或細(xì)胞活力降至60%以下時收獲細(xì)胞懸浮液,離心后收集上清,采用Western Blot或ELISA檢測上清中rHSA的含量。

      表1 不同的補(bǔ)糖策略Table 1 Different strategies for supplementing glucose

      1.2.2 丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響 將生長狀態(tài)良好的CHO-rHSA細(xì)胞以1.0×106cells/mL的密度傳代,培養(yǎng)體積為50 mL,置37℃、5% CO2搖床中培養(yǎng),轉(zhuǎn)速為120 r/min。傳代時SFM4CHO培養(yǎng)基中加入不同濃度的丁酸鈉(1.0、2.0及3.0 mmol/L),以不添加丁酸鈉組作為對照。從第4天開始每天測定其活細(xì)胞密度、細(xì)胞活力及培養(yǎng)基中的葡萄糖含量,待培養(yǎng)至第14天或活力降至60%以下收獲細(xì)胞懸浮液,離心后收集上清,采用Western Blot及ELISA檢測上清中rHSA的含量。

      1.2.3 葡萄糖及丁酸鈉組合使用對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響 為進(jìn)一步驗(yàn)證葡萄糖和丁酸鈉同時加入對rHSA表達(dá)量的影響,最大限度地提高工程細(xì)胞株CHO-rHSA生長密度及rHSA表達(dá)量。我們選擇1.2.1和1.2.2單因素實(shí)驗(yàn)篩選出的葡萄糖添加策略同丁酸鈉濃度進(jìn)行兩因素組合作用分析。將生長狀態(tài)良好的CHO-rHSA細(xì)胞以1.0×106cells/mL的密度傳代,培養(yǎng)體積為50 mL,置37℃、5% CO2搖床中培養(yǎng),轉(zhuǎn)速為120 r/min。傳代時SFM4CHO培養(yǎng)基中分別加入兩種濃度的丁酸鈉,同時以篩選出兩種補(bǔ)糖策略進(jìn)行補(bǔ)糖,以不添加丁酸鈉和葡萄糖組作為對照。從第4天開始每天測定其活細(xì)胞密度、細(xì)胞活力及培養(yǎng)基中的葡萄糖含量,待培養(yǎng)至第14天或活力降至60%以下時收獲細(xì)胞懸液,離心后收集上清,采用Western Blot及ELISA檢測上清中rHSA的含量。

      1.2.4 不同時間段添加丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響 為了進(jìn)一步考察丁酸鈉加入時間對CHO-rHSA生長及rHSA表達(dá)量的影響,在細(xì)胞培養(yǎng)24 h、48 h和72 h分別加入1.2.3篩選出的最佳的丁酸鈉濃度和葡萄糖添加策略進(jìn)行組合培養(yǎng)。將生長狀態(tài)良好的CHO-rHSA細(xì)胞以1.0×106cells/mL的密度傳代,培養(yǎng)體積為50 mL,置37℃、5% CO2搖床中培養(yǎng),轉(zhuǎn)速為120 r/min。分別在24 h、48 h和72 h向培養(yǎng)基中加入1.2.3篩選出丁酸鈉濃度以及相應(yīng)補(bǔ)糖策略進(jìn)行培養(yǎng)。從第4天開始每天測定其活細(xì)胞密度、細(xì)胞活力及培養(yǎng)基中的葡萄糖含量,待培養(yǎng)至第14天或活力降至60%以下時收獲細(xì)胞懸液,離心后收集上清,采用Western Blot及ELISA檢測上清中rHSA的含量。

      1.2.5 統(tǒng)計學(xué)分析 采用GraphPad Prism 8.0軟件作圖,利用單因素分析ANOVA或t檢驗(yàn)法計算各組數(shù)據(jù)間顯著性差異。數(shù)據(jù)均以均值±標(biāo)準(zhǔn)差形式表示,P 值用星號表示,*P < 0.05,**P < 0.01,***P < 0.001。

      2 結(jié)果

      2.1 不同補(bǔ)糖策略對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響

      單因素試驗(yàn)結(jié)果顯示,添加葡萄糖組工程細(xì)胞株CHO-rHSA的最高活細(xì)胞密度和rHSA表達(dá)量均高于對照組,且各補(bǔ)糖組細(xì)胞培養(yǎng)時間與對照組相比明顯延長(圖1-A和D),表明補(bǔ)糖對CHO-rHSA細(xì)胞生長和rHSA表達(dá)均具有一定的促進(jìn)作用。而對照組細(xì)胞中的葡萄糖濃度從第4天開始持續(xù)降低,活細(xì)胞密度和活力在培養(yǎng)至第8天后急劇下降(圖1-A-C),這可能是由于培養(yǎng)基中的葡萄糖等營養(yǎng)物質(zhì)消耗殆盡及代謝產(chǎn)物累積太多所致。不同補(bǔ)糖策略下CHO-rHSA細(xì)胞的活細(xì)胞密度與細(xì)胞活力相差不大(圖1-A和B),其中補(bǔ)糖方案為3.0→7.0 g/L時,rHSA表達(dá)量為36.467 mg/L,與對照組(rHSA表達(dá)量為16.432 mg/L)相比平均提高了121.93%(圖1-D)。綜合考慮,選擇補(bǔ)糖方案為3.0→5.0 g/L和3.0→7.0 g/L進(jìn)行后續(xù)葡萄糖同丁酸鈉兩因素組合作用分析。

      圖1 不同的補(bǔ)糖策略對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA產(chǎn)量的影響Fig.1 Effects of different glucose supplementation strategies on the growth of CHO-rHSA cells and the yield of rHSA

      2.2 不同濃度丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響

      結(jié)合已有研究,本文選擇了1.0 mmol/L、2.0 mmol/L和3.0 mmol/L NaBu濃度來進(jìn)行初篩,以選擇一個適宜的濃度來最大限度地提高rHSA的產(chǎn)量。結(jié)果顯示,加入不同濃度NaBu后工程細(xì)胞株CHO-rHSA的活細(xì)胞密度和細(xì)胞活力均低于對照組,且隨著NaBu濃度的增加,最大活細(xì)胞密度逐漸下降,說明高濃度的NaBu對CHO-rHSA細(xì)胞生長具有一定的抑制作用(圖2-A-C)。但3種濃度的NaBu均能顯著提高rHSA的表達(dá)(圖2-D-F),但因考慮到NaBu濃度為3.0 mmol/L時活細(xì)胞密度的下降尤為顯著,綜合考慮后選擇NaBu濃度為1.0 mmol/L和2.0 mmol/L進(jìn)行接下來的兩因素組合試驗(yàn)。

      圖2 不同濃度丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA產(chǎn)量的影響Fig.2 Effects of different concentrations of sodium butyrate on the growth of CHO-rHSA cells and the yield of rHSA

      2.3 葡萄糖及丁酸鈉組合培養(yǎng)對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響

      利用2.1和2.2單因素試驗(yàn)篩選出的補(bǔ)糖方案(3.0→5.0 g/L和3.0→7.0 g/L)和NaBu濃度(1.0 mmol/L NaBu和2.0 mmol/L NaBu)進(jìn)行兩因素組合分析,以驗(yàn)證不同濃度的葡萄糖和丁酸鈉組合培養(yǎng)對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)的影響,確定最佳的培養(yǎng)方案,為后期補(bǔ)料及生物反應(yīng)器培養(yǎng)優(yōu)化夯實(shí)基礎(chǔ)。兩因素組合作用結(jié)果顯示,丁酸鈉和葡萄糖組合使用可使CHO-rHSA工程細(xì)胞株培養(yǎng)時間從7 d左右延長到14 d左右(圖3-A-C),并且顯著地提高rHSA表達(dá)(圖3-D-F)。說明不同的葡萄糖和丁酸鈉組合方案均能明顯延長CHO-rHSA細(xì)胞培養(yǎng)周期及提高rHSA表達(dá)量。綜合考慮活細(xì)胞密度和rHSA表達(dá)水平,選擇3.0→7.0 g/L的補(bǔ)糖方案與1.0 mmol/L NaBu濃度進(jìn)行后續(xù)培養(yǎng),但由于該組合培養(yǎng)中的最高活細(xì)胞密度僅達(dá)8.154×106cells/mL,遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于對照組的最高活細(xì)胞密度10.783×106cells/mL(圖3-A),推測可能是由于添加丁酸鈉的時間不同所引起的,故接下來進(jìn)行了不同時間段添加丁酸鈉及補(bǔ)糖實(shí)驗(yàn)。

      圖3 葡萄糖及丁酸鈉組合培養(yǎng)對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA產(chǎn)量的影響Fig.3 Effects of combined culture of glucose and sodium butyrate on the growth of CHO-rHSA cells and the yield of rHSA

      2.4 不同時間段添加丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響

      為了進(jìn)一步考察丁酸鈉加入時間對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)量的影響,在細(xì)胞培養(yǎng)24 h、48 h和72 h分別加入1.0 mmol/L丁酸鈉,同時選擇上述優(yōu)化得到的葡萄糖添加策略3.0→7.0 g/L進(jìn)行組合培養(yǎng)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)第24小時加入丁酸鈉細(xì)胞生長狀態(tài)最佳(圖4-A-C),最大活細(xì)胞密度與同期對照組相差無幾,可達(dá)10.213×106cells/mL,rHSA表達(dá)量為74.616 mg/L(圖4-F),比對照組平均提高了172.26%;但第48小時加入丁酸鈉CHO-rHSA細(xì)胞的最大活細(xì)胞密度僅為8.025×106cells/mL(圖4-A),但rHSA表達(dá)量是目前本工程細(xì)胞株能達(dá)到的最高表達(dá)量,為85.642 mg/L(圖4-D),比同期對照組平均提高了212.49%,比單獨(dú)添加葡萄糖平均提高了134.85%,比單獨(dú)添加丁酸鈉平均提高了88.35%。以上結(jié)果表明,丁酸鈉添加時間對提高rHSA表達(dá)量也顯得尤為重要。綜上,確定待細(xì)胞培養(yǎng)48 h 時添加1.0 mmol/L NaBu和補(bǔ)糖方案為3.0→7.0 g/L是利于CHO-rHSA工程細(xì)胞生長和rHSA表達(dá)的最佳條件,這為后期進(jìn)一步優(yōu)化及生物反應(yīng)器培養(yǎng)提供數(shù)據(jù)支持。

      圖4 不同時間段添加丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA產(chǎn)量的影響Fig.4 Effect of adding time of sodium butyrate on the growth of CHO-rHSA cells and the yield of rHSA

      3 討論

      目前我國臨床使用的HSA 來源十分有限,HSA作為臨床醫(yī)學(xué)及生物制藥領(lǐng)域重要的藥物和原輔料,需求量逐年上升[7,18]。因此利用基因工程方法大規(guī)模生產(chǎn)rHSA即可解燃眉之急。由于研發(fā)成本過高,國內(nèi)大多數(shù)研究只限于實(shí)驗(yàn)室水平,試制產(chǎn)品純度不高,華北制藥集團(tuán)采用酵母表達(dá)人血清白蛋白取得了一定的進(jìn)展,并開發(fā)了高鹽陽離子捕獲為特征的純化工藝,但酵母表達(dá)重組白蛋白在天然修飾方面始終劣于哺乳動物細(xì)胞表達(dá)[19-20]。而CHO細(xì)胞相對于酵母和大腸桿菌而言是很好的表達(dá)細(xì)胞系,其表達(dá)產(chǎn)物在分子結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)和生物學(xué)功能等方面與天然蛋白更接近,重組乙肝疫苗、注射用重組人促紅細(xì)胞生成素等產(chǎn)品均利用CHO細(xì)胞表達(dá)平臺[21]。因此,用無血清懸浮的CHO細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)生產(chǎn)HSA相對于酵母菌和大腸桿菌等而言是更好的表達(dá)細(xì)胞系統(tǒng),能夠準(zhǔn)確的進(jìn)行轉(zhuǎn)錄后修飾,天然修飾方面更具優(yōu)勢,同時還具有培養(yǎng)基化學(xué)組分明確、無血清成分、易于工業(yè)化放大等優(yōu)點(diǎn),并且自身分泌的內(nèi)源性蛋白較少,更加有利于外源蛋白的分離純化,從而使CHO表達(dá)的rHSA更具市場潛力。

      本文研究了在CHO-rHSA細(xì)胞培養(yǎng)過程中添加丁酸鈉及葡萄糖對rHSA產(chǎn)量的影響。單因素試驗(yàn)結(jié)果表明,葡萄糖可明顯促進(jìn)細(xì)胞生長,細(xì)胞培養(yǎng)第3天開始,每48 h添加終濃度為7 g/L的葡萄糖,可使rHSA產(chǎn)量顯著增加;同時發(fā)現(xiàn)細(xì)胞培養(yǎng)第48小時時加入終濃度為1.0 mmol/L的丁酸鈉對rHSA的表達(dá)量提高最為明顯。已有文獻(xiàn)表明,丁酸鈉對細(xì)胞生長有一定的抑制作用,會誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。但同時它也可促進(jìn)與DNA結(jié)合的組蛋白的乙酰化功能從而具有顯著提高重組蛋白表達(dá)的能力[22-24]。本試驗(yàn)通過添加葡萄糖來彌補(bǔ)丁酸鈉對細(xì)胞生長的毒副作用,葡萄糖又對細(xì)胞生長具有明顯的促進(jìn)作用,最終提高重組蛋白產(chǎn)量。因此,探究丁酸鈉與葡萄糖之間平衡的點(diǎn)顯得尤為重要,同時丁酸鈉及葡萄糖在本試驗(yàn)中對細(xì)胞作用的具體機(jī)制及作用比重仍有待研究。本研究采用葡萄糖和丁酸鈉聯(lián)合應(yīng)用可把CHO-rHSA工程細(xì)胞株培養(yǎng)時間從7 d左右延長到14 d左右。葡萄糖的加入明顯減弱了丁酸鈉對CHO-rHSA細(xì)胞生長的抑制作用,葡萄糖和丁酸鈉組合使用可更高效表達(dá)外源蛋白,與對照組相比表達(dá)量平均提高了212.49%。當(dāng)然接下來的生物反應(yīng)器還有一系列培養(yǎng)條件如pH、溶氧以及攪拌轉(zhuǎn)速等參數(shù)需要進(jìn)一步優(yōu)化,因此對于工藝條件的不斷優(yōu)化是我們下一步探索的方向。

      4 結(jié)論

      本研究通過考察不同補(bǔ)糖策略、不同濃度丁酸鈉、葡萄糖及丁酸鈉組合培養(yǎng)與丁酸鈉的添加時間對CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA產(chǎn)量的影響,確定待細(xì)胞培養(yǎng)48 h 時添加1.0 mmol/L NaBu和補(bǔ)糖方案為3.0→7.0 g/L是利于CHO-rHSA細(xì)胞生長及rHSA表達(dá)的最優(yōu)條件,為接下來的補(bǔ)料培養(yǎng)及生物反應(yīng)器培養(yǎng)奠定基礎(chǔ)。

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