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    高糖微環(huán)境下EMD對鈦表面BMSCs成骨分化的影響及其機(jī)制研究

    2022-08-19 03:17:40孟茂花夏茜成璐李英陳鏡橋王勤英葉朝陽董強(qiáng)
    關(guān)鍵詞:成骨高糖種植體

    孟茂花 夏茜 成璐 李英 陳鏡橋 王勤英 葉朝陽 董強(qiáng)

    糖尿病(diabetes mellitus,DM)患者種植體周圍炎發(fā)生的概率較高,與健康患者相比,骨結(jié)合較慢,種植體的存留率相對較低,種植術(shù)后并發(fā)癥的控制和治療較難,因此,糖尿病是口腔種植修復(fù)關(guān)注的主要基礎(chǔ)疾病之一[1]。釉基質(zhì)衍生物(enamel matrix derivatives,EMD)是從幼豬牙胚中提取的釉基質(zhì)蛋白的衍生物,主要由釉原蛋白、成釉蛋白和類生長因子物質(zhì)等共同構(gòu)成, 在口腔相關(guān)基礎(chǔ)研究和臨床治療中,體現(xiàn)出較好的組織再生效果[2]。有研究發(fā)現(xiàn),EMD可以促進(jìn)糖尿病大鼠頜骨缺損的骨組織再生[3], EMD治療種植體周骨缺損,10 年種植體存留率為90.7%,同時在種植體骨缺損治療中獲得長期穩(wěn)定的效果[4]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)可定向分化,是良好的種子細(xì)胞,經(jīng)過處理和誘導(dǎo)后,能促進(jìn)牙周組織缺損修復(fù),在牙周組織再生中有較好的治療前景[5]。BMSCs是牙槽骨損傷修復(fù)的重要細(xì)胞,有較好的歸巢功能[6],在種植體植入后,BMSCs通過血液募集到種植體表面,為種植體提供較好的骨結(jié)合條件。因此,在DM患者種植體周圍骨缺損修復(fù)的過程中,BMSCs在損傷部位的成骨和黏附起著至關(guān)重要的作用。經(jīng)典的Wnt/β-catenin信號通路是BMSCs成骨分化的重要通路,即使在高糖微環(huán)境下也是如此[7]。

    噴砂酸蝕(sandblasted and acid-etched,SLA)是鈦種植體常用的表面改性技術(shù)之一,其細(xì)微粗糙的表面促進(jìn)細(xì)胞黏附[8]。EMD可以促進(jìn)SLA鈦表面牙齦成纖維細(xì)胞[9]和成骨細(xì)胞[10]的增殖、黏附和成骨分化。因此推測EMD是否也能促進(jìn)高糖微環(huán)境下BMSCs在SLA鈦表面上的成骨和黏附的性能?目前,EMD在高糖微環(huán)境下,對SLA鈦表面BMSCs的成骨分化和黏附的作用及其機(jī)制尚不清楚。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn),EMD可以促進(jìn)正常糖狀態(tài)下的BMSCs的成骨分化,并且可能是通過激活Wnt/β-catenin信號通路來實(shí)現(xiàn)的[11]。本研究體外采用5.5 mmol/L正常糖(normal glucose,NG)和25 mmol/L高糖(high glucose,HG),通過細(xì)胞遷移、堿性磷酸酶活性、茜素紅半定量、電鏡掃描、RT-qPCR和WB的檢測方法,在SLA鈦表面上對BMSCs進(jìn)行成骨和黏附性能檢測和分析,EMD在高糖微環(huán)境下,對SLA鈦表面BMSCs的成骨和黏附的作用及其機(jī)制進(jìn)行初步探討。

    1 資料與方法

    1.1 主要試劑

    10 只2 周齡SD大鼠(SPF級);EMD(Straumann,瑞士);DMEM (Gibcol,美國);胎牛血清、青-鏈霉素(Biological Industeries,以色列);成脂誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基[賽業(yè)(蘇州)生物科技有限公司];Anti-Runx2 (CST,美國);一抗Osterix、β-catenin、Fibronecti、Integrinβ1(Abcam,英國);Anti-Col-1(北京博奧森生物技術(shù)有限公司); XAV-939(MedChemExpress,美國);抗體CD45、CD90、CD29、CD11b(BioLegend,美國);Trizol、PrimeScript?RT反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara,日本);SYBRTMGreenMasterMix和ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒(Thermo Fisher Scientific,美國);PVDF膜(Millipore,美國);SLA鈦片(西安泰金工業(yè));ALP活性測定試劑盒(南京建成);氯化十六烷基吡啶一水(大連美侖生物技術(shù)有限公司);二抗(泰安普美生物科技有限公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 BMSCs提取及鑒定 SD大鼠脫頸處死,剝離脛骨和腓骨,PBS沖洗骨髓腔,收集細(xì)胞,貼壁篩選法分離培養(yǎng),取第3代用于后續(xù)試驗。流式細(xì)胞技術(shù)進(jìn)行CD29、CD90、CD45、CD11b檢測。成骨誘導(dǎo)(10%FBS,1%青-鏈霉素,50 μmol/L L-抗壞血酸-2-磷酸鈉、10 mmol/L β-甘油磷酸鈉、100 nmol/L地塞米松)21 d,1%茜素紅染色。SD大鼠干細(xì)胞成脂誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基,21 d油紅O染色。

    1.2.2 SLA鈦片培養(yǎng)細(xì)胞 用直徑10 mm,厚1 mm,SLA表面處理的鈦片,放入48 孔板,按2×105/孔,成骨誘導(dǎo),用于后續(xù)檢測。

    1.2.3 EMD試劑工作濃度配制 EMD為30 mg/mL,工作濃度為75 μg/mL,取EMD加入培養(yǎng)基中,渦旋震蕩混勻。

    1.2.4 細(xì)胞遷移實(shí)驗 取BMSCs,3×103/孔,200 μL DMEM重懸,加入Transwell小室中。24 孔板孔內(nèi)加入800 μL培養(yǎng)基(NG,HG,HG+75 μg/mL EMD),培養(yǎng)48 h,4%多聚甲醛固定,0.5%結(jié)晶紫染色。

    1.2.5 ALP活性檢測 BMSCs在SLA鈦表面成骨誘導(dǎo)7 d,提取蛋白,BCA蛋白定量,使用ALP活性檢測試劑盒,520 nm波長,酶標(biāo)儀測定A值。

    1.2.6 茜素紅半定量實(shí)驗 BMSCs在SLA鈦表面成骨誘導(dǎo)21 d,4%多聚甲醛固定,茜素紅染色,每孔加200 μL 10%氯化十六烷基吡啶37 ℃搖床孵育1 h,取100 μL加入96 孔板中,562 nm波長,酶標(biāo)儀測定A值。

    1.2.7 電鏡掃描 BMSCs在SLA鈦表面成骨誘導(dǎo)28 d,2.5%戊二醛4 ℃固定過夜,酒精(50%、70%、80%、90%)逐級脫水,使用100%酒精脫水3 次,在鈦片表面噴金,掃描電鏡(SEM)拍照觀察。

    1.2.8 RT-qPCR BMSCs在SLA鈦表面成骨誘導(dǎo)7 d,收集細(xì)胞,Trizol法提取總RNA,檢測純度和濃度后進(jìn)行定量,逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,使用SYBR Green熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)檢測試劑盒進(jìn)行RT-qPCR,相關(guān)基因引物序列均由中國上海生工生物有限公司合成,以β-actin為內(nèi)參,檢測各組mRNA相對表達(dá)量(表 1)。

    1.2.9 Western blot BMSCs在SLA鈦表面成骨誘導(dǎo)7 d,收集細(xì)胞,提取蛋白。10% SDS-PAGE電泳,0.45 μm PVDF膜,5%BSA封閉1 h,一抗孵育過夜,二抗孵育1 h,化學(xué)發(fā)光儀曝光,保存蛋白條帶,Image J檢測蛋白條帶的灰度值。

    表 1 引物序列設(shè)計

    1.2.10 Wnt/β-catenin信號通路抑制劑 細(xì)胞分組:NG,HG,HG+EMD、NG+XAV-939、HG+XAV-939、HG+EMD+XAV-939),使用10 μg/mL XAV-939[12],成骨誘導(dǎo)7 d,WB檢測成骨和黏附相關(guān)蛋白的表達(dá)變化。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)分析

    應(yīng)用GraphPad Prism 8.0軟件進(jìn)行單因素方差分析并作圖,以P<0.05為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,所有實(shí)驗重復(fù)3 次。

    2 結(jié)果

    2.1 BMSCs鑒定

    細(xì)胞貼壁,呈纖維樣和漩渦樣生長 (圖 1A、B)。茜素紅染色可見紅色礦化結(jié)節(jié)(圖 1C),油紅O染色可見脂滴形成(圖 1D)。干細(xì)胞表面標(biāo)志物 CD29和CD90表達(dá)呈陽性,非干細(xì)胞相關(guān)的標(biāo)志物CD45和 CD11b表達(dá)呈陰性(圖 1E)。

    圖 1 BMSCs培養(yǎng)及鑒定(A~D, ×100)

    2.2 EMD在高糖微環(huán)境下促進(jìn)BMSCs遷移

    Transwell檢測EMD在高糖微環(huán)境下對BMSCs遷移的影響(圖 2A),遷移細(xì)胞計數(shù)(圖 2B),HG組低于NG組,HG+EMD組數(shù)量有明顯上升,表明在高糖微環(huán)境下BMSCs遷移受到抑制,EMD可以改善遷移抑制。

    圖 2 Transwell細(xì)胞遷移

    2.3 BMSCs成骨分化

    使用ALP活性檢測早期成骨標(biāo)志物(圖 3A),HG組低于NG,添加EMD后活性有明顯上升。茜素紅染色半定量(圖 3B)檢測成骨晚期礦化程度,HG組較NG組減低明顯,EMD誘導(dǎo)后,礦化程度有上升。

    圖 3 成骨分化能力檢測

    2.4 礦化結(jié)節(jié)表面形態(tài)

    SEM觀察SLA鈦片表面BMSCs礦化結(jié)節(jié)(圖 4),NG組的礦化結(jié)節(jié)較大,突出鈦片表面較高,礦化面積最多,NG組明顯降低,EMD作用后礦化面積增加。

    圖 4 SLA鈦表面礦化結(jié)節(jié)(SEM)

    2.5 WB檢測成骨和黏附蛋白

    WB檢測成骨和黏附相關(guān)的蛋白的表達(dá)(圖 5A)和灰度值(圖 5B),HG組較NG組成骨和黏附相關(guān)蛋白(Osterix、Runx2、COL-1、Integrin β1和Fibronectin)顯著降低,HG+EMD組有不同程度的增加。

    2.6 RT-qPCR檢測成骨和黏附相關(guān)基因

    RT-qPCR檢測Osterix、Runx2、COL-1、Integrin β1和Fibronectin基因表達(dá)(圖 5C),HG組成骨和黏附的mRNA的表達(dá)低于NG組,HG+EMD組升高。

    2.7 β-catenin基因與蛋白表達(dá)

    WB和RT-qPCR檢測β-catenin的蛋白和mRNA表達(dá)(圖 6);HG組β-catenin蛋白表達(dá)較量最少,EMD作用后增高,基因表達(dá)趨勢與蛋白相一致。

    圖 6 β-catenin基因和蛋白的表達(dá)

    2.8 XAV-939處理后下游的蛋白的表達(dá)變化

    WB檢測XAV-939處理后Wnt/β-catenin信號通路下游的成骨和黏附相關(guān)蛋白(圖 7A)和灰度值(圖 7B),HG組較NG組的蛋白(Osterix、Runx2、β-catenin、Integrin β1和Fibronectin)表達(dá)降低,HG+EMD表達(dá)增加,趨勢與之前的檢測相符合。XAV-939組的蛋白均呈下降趨勢,下游的成骨和黏附相關(guān)蛋白(Osterix、Runx2、Integrin β1和Fibronectin)表達(dá)均降低(P<0.05),表明即使在高糖微環(huán)境和XAV-939的共同作用下,EMD仍可以促進(jìn)SLA表面BMSCs的成骨和黏附。

    圖 7 XAV-939處理后Wnt/β-catenin信號通路下游成骨和黏附相關(guān)蛋白的表達(dá)變化

    3 討 論

    目前,為牙列缺損的糖尿病患者進(jìn)行種植義齒修復(fù),能夠獲得長期有效的臨床治療效果,已是常規(guī)的口腔修復(fù)方式之一。但是,由于高血糖可能對種植體骨結(jié)合以及術(shù)后并發(fā)癥的不利影響,與正?;颊呦啾?,糖尿病患者的種植體長期存留率及術(shù)后維護(hù)都具有挑戰(zhàn)性。如何進(jìn)一步改善和避免高血糖對口腔種植的不利影響?一直是口腔種植領(lǐng)域的關(guān)注熱點(diǎn)之一。

    本研究通過體外培養(yǎng),進(jìn)行細(xì)胞形態(tài)觀測、成骨分化和成脂分化能力的鑒定,以及干細(xì)胞表面標(biāo)志物的鑒定(圖 1),證明提取細(xì)胞為BMSCs[12]。根據(jù)本課題組前期研究,在25 mmol/L葡萄糖微環(huán)境條件下,EMD誘導(dǎo)BMSCs增殖和成骨分化的較佳濃度為75 μg/mL,故使用該濃度進(jìn)行本實(shí)驗研究[13]。BMSCs在種植體表面的遷移、黏附和成骨的能力,是種植體骨結(jié)合成功的關(guān)鍵[14]。本研究通過Transwell檢測EMD在高糖微環(huán)境中對BMSCs遷移的影響(圖 2),結(jié)果提示,BMSCs遷移能力受到抑制,EMD能緩解高糖微環(huán)境對BMSCs遷移能力的損傷。ALP活性、茜素紅半定量(圖 3)和電鏡掃描(圖 4)結(jié)果提示,雖然SLA鈦表面可以增加BMSCs細(xì)胞外基質(zhì)的分泌以促進(jìn)成骨分化[15],但在高糖微環(huán)境中,SLA鈦表面BMSCs的成骨能力受到抑制,EMD可部分改善BMSCs的成骨能力。

    Runx2是成骨早期的重要轉(zhuǎn)錄因子,Osterix 是成骨細(xì)胞才表達(dá)的轉(zhuǎn)錄因子,兩者在BMSCs成骨分化過程中占據(jù)重要的地位[16]。COL-1可以促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)的分泌,在成骨分化過程中使細(xì)胞外基質(zhì)礦化,有利于種植體表面BMSCs的成骨和黏附,是Runx2和Osterix 成骨分化過程轉(zhuǎn)錄的重要下游蛋白[17]。本研究通過RT-qPCR和WB檢測成骨分化的幾個關(guān)鍵指標(biāo)(Osterix、Runx2和COL-1)mRNA和蛋白的表達(dá)(圖 5)。高糖微環(huán)境下,Osterix、Runx2和COL-1的表達(dá)都分別相應(yīng)下調(diào),EMD作用后,均分別出現(xiàn)上調(diào),其表達(dá)趨勢與ALP活性和茜素紅半定量結(jié)果趨勢相符合。

    Integrin β1為整合素家族的重要蛋白,細(xì)胞通過整合素蛋白與生物材料相結(jié)合,F(xiàn)ibronectin為黏連蛋白,促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)在種植體表面的沉積和礦化[18-19]。本研究通過RT-qPCR和WB檢測Integrin β1和Fibronectin的基因和蛋白表達(dá)(圖 5),在高糖微環(huán)境下其表達(dá)均下調(diào),EMD作用下促進(jìn)Integrin β1和Fibronectin表達(dá)上調(diào)。

    Wnt 信號通路是由Wnt家族的配體蛋白和Frizzled家族跨膜受體蛋白結(jié)合激發(fā)的一組多下游通道的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,根據(jù)是否依賴β-catenin蛋白,分為經(jīng)典Wnt/β-catenin途徑和非經(jīng)典途徑;其中,經(jīng)典Wnt/β-catenin途徑通過β-catenin在細(xì)胞質(zhì)中積累,易位至細(xì)胞核后與T細(xì)胞因子/淋巴增強(qiáng)因子結(jié)合,啟動轉(zhuǎn)錄下游的靶基因[20]。本研究通過RT-qPCR和WB檢測β-catenin基因和蛋白(圖 6),其與Osterix、Runx2、COL-1、Integrin β1和Fibronectin表達(dá)趨勢一致;添加通路抑制劑XAV-939,WB結(jié)果顯示(圖 7),下游成骨和黏附蛋白均相受到抑制,其中,HG+XAV-939組最為顯著。

    綜上所述,在本實(shí)驗研究的高糖微環(huán)境中,SLA鈦表面BMSCs成骨和黏附均受到抑制,EMD作用下可改善其抑制效應(yīng)。EMD對SLA鈦表面BMSCs的成骨分化和黏附的促進(jìn)作用,可能與激活Wnt/β-catenin信號通路有關(guān),其具體作用機(jī)制還需進(jìn)一步研究。

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