李 俊,蔡 滔,代虹鏡,蘇美丞,祝 愿,王 震,
(1.貴州省農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全監(jiān)督檢驗(yàn)測(cè)試中心,農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室,貴州貴陽(yáng) 550004;2.黔南民族師范學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,貴州都勻 558000)
茶葉是我國(guó)重要的農(nóng)產(chǎn)品之一,具有幾千年的生產(chǎn)歷史。茶葉生產(chǎn)和銷售拉動(dòng)了內(nèi)需消費(fèi),促進(jìn)了經(jīng)濟(jì)的可持續(xù)發(fā)展[1]。農(nóng)藥在茶樹生產(chǎn)中具有防治病蟲害、提升產(chǎn)量和改善產(chǎn)品品質(zhì)等重要作用[2-5],同時(shí)茶葉中農(nóng)藥殘留問(wèn)題成為茶葉質(zhì)量安全關(guān)注的焦點(diǎn)之一[6]。為了保證茶葉質(zhì)量安全,靈敏、準(zhǔn)確的農(nóng)藥殘留檢測(cè)技術(shù)必不可少[7-8]。2021 年9 月實(shí)施的《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 食品中農(nóng)藥最大殘留限量》[9]規(guī)定了茶葉中農(nóng)藥最大殘留限量有106 項(xiàng)限量要求,存在一個(gè)農(nóng)藥規(guī)定了幾種檢測(cè)方法的現(xiàn)象,比如噠螨靈、氯菊酯、氯唑磷等農(nóng)藥可采用GB/T 23200.113 或GB/T 23204-2008 方法檢測(cè)。
在檢驗(yàn)檢測(cè)工作中,取樣的代表性、溶液的配制以及樣品處理過(guò)程等方面,都會(huì)導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果產(chǎn)生一定的不確定性,對(duì)檢測(cè)結(jié)果不能肯定的程度即為不確定度。不同方法引入的不確定度因方法差異而不同,為保證檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度和可信性,有必要采用適當(dāng)?shù)臋z測(cè)方法,并對(duì)其測(cè)量不確定度進(jìn)行合理評(píng)定[10-12]。測(cè)量不確定度是與測(cè)量結(jié)果相聯(lián)系的參數(shù),代表檢測(cè)值的可信區(qū)間,是衡量實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)質(zhì)量的重要指標(biāo),是實(shí)驗(yàn)室提高檢驗(yàn)結(jié)果可靠性的重要保障[13-16];當(dāng)不確定度越小,檢測(cè)結(jié)果可信度越高;反之越低。通過(guò)不確定度來(lái)源分析和分量評(píng)定,掌握影響檢測(cè)質(zhì)量的關(guān)鍵步驟,從而可提高檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室的數(shù)據(jù)質(zhì)量[17-21]。
本研究分別采用國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)《茶葉中519 種農(nóng)藥及相關(guān)化學(xué)品殘留量的測(cè)定 氣相色譜-質(zhì)譜法》[22]和《植物源性食品中208 種農(nóng)藥及其代謝物殘留量的測(cè)定 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法》[23]方法定量檢測(cè)茶葉中噠螨靈等9 種農(nóng)藥殘留量,依據(jù)《測(cè)量不確定度評(píng)定與表示》[24]和《化學(xué)分析測(cè)量不確定度評(píng)定》[25],分析評(píng)定兩個(gè)不同檢測(cè)方法檢測(cè)過(guò)程中各不確定度分量的來(lái)源,給出擴(kuò)展不確定度,以期為農(nóng)藥殘留檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室評(píng)定不確定度提供參考范例,為實(shí)驗(yàn)室選擇更適應(yīng)的檢測(cè)方法,為檢測(cè)結(jié)果的合理判定提供科學(xué)依據(jù)[26-27]。
乙腈、甲苯 色譜純,美國(guó)天地;氯化鈉、正己烷、乙酸乙酯 分析純,國(guó)藥集團(tuán);PSA 吸附劑、C18 吸附劑、GCB 粉末 色譜純,美國(guó)安捷倫;固相萃取柱Cleanert TPT 10 mL 2.0 g Agela 公司;9 種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)品:噠螨靈(pyridaben)、氟氯氰菊酯(Cyfluthrin)、甲拌磷(phorate)、甲基對(duì)硫磷(parathionmethy)、氯菊酯(Permethrin)、氯氰菊酯(Cypermethrin)、氯唑磷(isazofos)、氰戊菊酯(fenvalerate)、水胺硫磷(isocarbophos) 濃度均為1000 mg/L,農(nóng)業(yè)部環(huán)境質(zhì)量安全監(jiān)督檢驗(yàn)測(cè)試中心(天津)。
GC-MS/MS 聯(lián)用儀Trace GC Ultra-TSQ MS/MS美國(guó)賽黙飛世爾公司;IKA T18 高速勻漿機(jī) 德國(guó)IKA 公司;IKA VRTEX2 渦旋混合器 德國(guó)IKA公司;BUCHI R-200 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 瑞士BUCHI 實(shí)驗(yàn)儀器公司;Organomation N-EVAP 美國(guó)OI 分析儀器公司;TSL-5-A 離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器。
1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)品的配制
1.2.1.1 單標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的配制 準(zhǔn)確吸取9 種農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)和內(nèi)標(biāo)溶液各1.0 mL 于10 mL 容量瓶中,用丙酮溶液稀釋到刻度,得到100.0 mg /L 標(biāo)準(zhǔn)單標(biāo)儲(chǔ)備液。
1.2.1.2 混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液的配制 準(zhǔn)確吸取適量的100.0 mg/L 單標(biāo)儲(chǔ)備液于50 mL 容量瓶中,用丙酮稀釋配制成2~4 mg/L 混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。內(nèi)標(biāo)物配制為10 mg/L 的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。
1.2.1.3 基質(zhì)匹配混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液配制 取不含待測(cè)物的茶葉樣品,按相應(yīng)的前處理方法制得空白基質(zhì)溶液,準(zhǔn)確吸取適量的混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液和1 mL 內(nèi)標(biāo)于10 mL 容量瓶中,用空白基質(zhì)溶液定容配制成所需的標(biāo)準(zhǔn)工作液?;旌蠘?biāo)準(zhǔn)工作溶液系列配制見表1。
表1 混合標(biāo)準(zhǔn)系列溶液Table 1 Preparation of mixed standard series solution
1.2.2 樣品前處理
1.2.2.1 方法選擇 分別參照方法1:GB 23200.113-2018《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn) 植物源性食品中208 種農(nóng)藥及其代謝物殘留量的測(cè)定氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法》QuEChERS 部分;方法2:GB/T 23204-2008 《茶葉中519 種農(nóng)藥及相關(guān)化學(xué)品殘留量的測(cè)定氣相色譜-質(zhì)譜法》進(jìn)行樣品前處理。供試茶樣購(gòu)置于市場(chǎng),茶葉樣品粉碎后過(guò)60 目篩,待分析。
1.2.2.2 樣品提取 方法1:準(zhǔn)確稱取2 g 試樣(精確至0.01 g)于50 mL 塑料離心管中,加10 mL 水渦旋均勻,靜置30 min。加入15 mL 乙腈-醋酸溶液、6 g無(wú)水硫酸鎂、1.5 g 醋酸鈉及1 顆陶瓷均質(zhì)子,劇烈振蕩提取1 min,4200 r/min 離心5 min,吸取8 mL上清液,待凈化。
方法2 :準(zhǔn)確稱取5 g 試樣(精確至0.01 g),于80 mL 離心管中,加入15 mL 乙腈,15000 r/min 均質(zhì)提取1 min,4200 r/min 離心5 min,取上清液于200 mL雞心瓶中。殘?jiān)?5 mL 乙腈重復(fù)提取一次,離心,合并二次提取液,40 ℃水浴旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至1 mL 左右,待凈化。
1.2.2.3 樣品凈化 方法1:吸取8 mL 上清液加到內(nèi)含1200 mg 硫酸鎂、400 mg PSA,400 mg C18及200 mg GCB 的15 mL 塑料離心管中,渦旋混勻1 min。4200 r/min 離心5 min,準(zhǔn)確吸取2 mL 上清液于10 mL 試管中,40 ℃水浴中氮?dú)獯抵两伞<尤?00 μL的內(nèi)標(biāo)溶液,加入1 mL 乙酸乙酯復(fù)溶,過(guò)微孔濾膜,待氣相色譜質(zhì)譜測(cè)定。
方法2:用10 mL 的v(乙腈):v(甲苯)=3:1 混合洗液預(yù)洗Cleanert TPT 固相萃取柱(柱中加入約2 cm高無(wú)水硫酸鈉),加入待凈化樣品濃縮液轉(zhuǎn)移至固相萃取柱中,用2 mL 混合洗液洗滌樣液瓶,重復(fù)三次,并將洗滌液移人柱中,再用25 mL 乙腈-甲苯洗滌小柱,收集上述所有流出液于雞心瓶中,40 ℃水浴中旋轉(zhuǎn)濃縮至約0.5 mL。加入5 mL 正己烷進(jìn)行溶劑交換,重復(fù)兩次,最后使樣液體積約為1 mL,加入100 μL 內(nèi)標(biāo)溶液,過(guò)微孔濾膜,待氣相色譜質(zhì)譜測(cè)定。
1.2.3 儀器條件
1.2.3.1 氣相色譜條件 方法1:色譜柱:DB-1701MS石英毛細(xì)管柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm);程序升溫條件為;程序升溫:初溫40 ℃,以40 ℃/min 升溫至120 ℃,再以5 ℃/min 升溫至240 ℃,再以12 ℃/min 升溫至300 ℃,保持6 min;載氣為He,流速1.0 mL/min;進(jìn)樣口溫度(280.0 ℃);進(jìn)樣量1.0 μL;不分流進(jìn)樣。方法2:色譜柱:DB-1701MS 石英毛細(xì)管柱(30 m×0.25 mm,0.25 μm);程序升溫條件為;程序升溫:初溫40 ℃,以30 ℃/min 升溫至130 ℃,再以5 ℃/min 升溫至250 ℃,再以10 ℃/min 升溫至300 ℃,保持5 min;載氣為He,流速1.0 mL/min;進(jìn)樣口溫度(290.0 ℃);進(jìn)樣量1.0 μL;不分流進(jìn)樣。
1.2.3.2 質(zhì)譜條件 方法1:電子轟擊(EI)離子源;電子能量70 eV;氣相色譜-質(zhì)譜傳輸線溫度280 ℃;離子源溫度280 ℃;多反應(yīng)監(jiān)測(cè)(MRM)模式掃描,碰撞反應(yīng)氣壓力(Ar,2×10-4kPa);溶劑延遲3 min。
方法2:電子轟擊(EI)離子源;電子能量70 eV;氣相色譜-質(zhì)譜傳輸線溫度280 ℃;離子源溫度230 ℃;選擇性離子監(jiān)測(cè)(SIM)模式掃描;溶劑延遲5 min。
1.3.1 數(shù)學(xué)模型的建立 根據(jù)GB/T 23200.113-2018和GB/T 23204-2008 方法(表2),茶葉中被測(cè)農(nóng)藥殘留含量(w)按式(1)計(jì)算:
表2 GB/T 23200.113-2018 與GB/T 23204-2008 標(biāo)準(zhǔn)比較Table 2 Comparison Table of GB/T 23200.113-2018 and GB/T 23204-2008 standards
式中:w:茶葉中被測(cè)農(nóng)藥殘留含量(mg/kg);c:由標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出測(cè)試樣液的濃度(mg/L);v:樣液定容體積(mL);m:樣品稱樣量(g);f:稀釋因子(GB/T 23200.113-2018 為 7.5、GB/T 23204-2008為1.0)。
1.3.2 不確定度來(lái)源分析 按規(guī)范方法抽樣和制備樣品樣品均勻性引入的不確定度忽略不計(jì)[26]。從數(shù)學(xué)模型和測(cè)定過(guò)程可知,不確定度分量包括以下幾個(gè)方面:標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)及其配制過(guò)程中引入的不確定度cs;內(nèi)標(biāo)物質(zhì)使用引入的不確定度csi;樣品稱量引入的不確定度m;前處理過(guò)程中液體體積量取引入的不確定度v;標(biāo)準(zhǔn)工作液測(cè)量不確定度(Rrec);樣品溶液液中被測(cè)組分與內(nèi)標(biāo)峰面積比(Ai/Asi);檢測(cè)回收率(Qrec)等方面;不確定度分量來(lái)源見圖1。
圖1 測(cè)量不確定度分量魚骨圖Fig.1 Fishbone diagram of measurement uncertainty component
通過(guò)Excel2010 與SPSS22.0 進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。
實(shí)驗(yàn)室通常選擇購(gòu)買100 或1000 mg/L 的有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)。通過(guò)配制成農(nóng)藥單標(biāo)儲(chǔ)備液、混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液、混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液、混合標(biāo)準(zhǔn)工作測(cè)試液。每一步都會(huì)有不確定度的帶入,分析不確定帶入因子詳見表3。
表3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制引入不確定度Table 3 Introduction uncertainty of standard solution configuration
2.1.1 標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)純度引入不確定度urel(c1) 本研究中噠螨靈、氟氯氰菊酯、甲拌磷等9 個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品的質(zhì)量濃度均為1000 mg/L,其擴(kuò)展不確定度[u95(c1)]為7 mg/L,包含因子(k)為2,則由標(biāo)準(zhǔn)品純度引入的相對(duì)不確定度urel(cs-1)為:
某品牌標(biāo)準(zhǔn)品生產(chǎn)廠家生產(chǎn)標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量濃度均為1000 mg/L 時(shí),其擴(kuò)展不確定度[u95(c1)]為20 mg/L,其引入的相對(duì)不確定度urel(c1)為1.41%。
2.1.2 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制引入不確定度urel(c2) 實(shí)驗(yàn)室儲(chǔ)備液的配制包括單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液和混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。先用1 mL A 級(jí)吸量管移取1.0 mL 1000 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液于10 mL 容量瓶中,用丙酮定容并配成100 mg/L 的單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。然后再分別吸取1 mL單一標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液于50 mL 容量瓶中,用丙酮定容并配成2 mg/L 的混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液。過(guò)程中涉及溫度變化對(duì)試劑膨脹的影響、人員量取誤差及吸量管、容量瓶引入的不確定度。
丙酮膨脹引入分量,實(shí)驗(yàn)室溫度通常為(20±5)℃,丙酮的膨脹系數(shù)為0.00143 ℃-1,由溫度效應(yīng)產(chǎn)生的丙酮體積變化為:u(v丙酮)=±(0.00143 mL×5×v)=±0.00715×v mL,服從矩形分布,則溫度對(duì)丙酮體積變化的不確定度[urel(v丙酮)]為:
利用式(3)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制中,丙酮膨脹引入的不確定度[urel(v丙酮)],為0.41%,引入4次。
人員吸量管使用量取誤差引入分量,采用統(tǒng)計(jì)方法評(píng)定不確定度,通過(guò)在重現(xiàn)性、重復(fù)性條件下使用同一吸量管,重復(fù)量取純水,利用電子天平測(cè)量,得到n=9次測(cè)量值(x),標(biāo)準(zhǔn)偏差s(x)利用貝塞爾式(4)計(jì)算,不確定度urel(x)按式(5)計(jì)算。
利用式(5)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制中,使用1 mL的A 級(jí)吸量管移取1.0 mL 樣液時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s1)],為0.13%,對(duì)于每一個(gè)組分引入2次。
量具允許誤差引入分量:A 級(jí)1 mL 吸量管允許誤差為±0.008 mL[27],滿足三角形分布,則由吸量管量取1.0 mL 溶液引入的不確定度[urel(v1)]為:
利用式(6)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制中,使用1 mL的A 級(jí)吸量管移取1.0 mL 樣液引入的不確定度[urel(v1)],為0.33%,對(duì)于每一個(gè)組分引入2次。
A 級(jí)10、50 mL 容量瓶的允許誤差分別為±0.02 和±0.05 mL,讀數(shù)重復(fù)性偏差分別為±0.01和±0.025 mL,均服從三角形分布。利用(6)式計(jì)算,則由10 mL 容量瓶允許誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v2)]為0.082 %和讀數(shù)誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v3)]為0.041%;由25 mL 容量瓶允許誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v4)]為0.041%和讀數(shù)誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v5)]為0.020 %。
利用式(7)計(jì)算可得由標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制帶來(lái)的不確定度[urel(c2)]為0.97%。
2.1.3 混合標(biāo)準(zhǔn)工作液配制引入不確定度urel(c3)
混合標(biāo)準(zhǔn)工作液是通過(guò)使用混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)配液稀釋,本實(shí)驗(yàn)中的混合標(biāo)準(zhǔn)工作液按表1 中濃度配制,分別吸取混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液于10 mL 容量瓶?jī)?nèi),加入1 mL內(nèi)標(biāo)溶液,丙酮定容得到所需標(biāo)準(zhǔn)工作液。過(guò)程中涉及溫度變化對(duì)試劑膨脹的影響、人員量取誤差及吸量管、容量瓶引入的不確定度。標(biāo)液和樣液中內(nèi)標(biāo)物是采用同一瓶?jī)?nèi)標(biāo)物質(zhì)添加,故不考慮內(nèi)標(biāo)物質(zhì)在配制過(guò)程中的不確定度的引入,僅考慮內(nèi)標(biāo)物添加時(shí),體積引入的那部分不確定度。
丙酮膨脹引入分量,利用式(3)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)工作溶液配制中,丙酮膨脹引入引入的不確定度[urel(v丙酮)]為0.41%,對(duì)每一個(gè)濃度點(diǎn)引入3次(標(biāo)液量取、內(nèi)標(biāo)量取、容量瓶定容)。
人員吸量管使用量取誤差引入分量,利用式(5)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)工作溶液配制中,使用1 mL 的A 級(jí)吸量管移取0.5 mL 混合儲(chǔ)備液配制濃度點(diǎn)1 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s1)]為0.14%。濃度點(diǎn)2時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s2)]為0.13%。濃度點(diǎn)3 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s3)]為0.26%。濃度點(diǎn)4 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s4)]為0.59%。濃度點(diǎn)5 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s5)]為0.50%。濃度點(diǎn)6 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s6)]為0.49%。濃度點(diǎn)7 時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(s7)]為0.76%。使用1 mL 的A 級(jí)吸量管移取1.0 mL 內(nèi)標(biāo)溶液時(shí)引入的人員測(cè)量不確定度[urel(si)]為0.13%。
量具允許誤差引入分量,A 級(jí)1、2、5、10 mL 吸量管,A 級(jí)10 mL 容量瓶允許誤差與讀數(shù)重復(fù)性偏差引入不確定度。
A 級(jí)1、2、5、10 mL 吸量管,A 級(jí)10 mL 容量瓶的允許誤差分別為±0.008、±0.012、±0.025、±0.050、±0.02、讀數(shù)重復(fù)性偏差分別為±0.004、±0.006、±0.01、±0.025、±0.01mL。利用式(6)計(jì)算,濃度點(diǎn)1 使用A 級(jí)1 mL 吸量管吸取0.5 mL 混合標(biāo)液和1 mL 內(nèi)標(biāo)物,引入的不確定度[urel(v1)]:
A 級(jí)1 mL 吸量管允許誤差帶來(lái)的不確定度[[urel(v1-1)]為0.653%和讀數(shù)誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v1-2)]為0.327%;10 mL 容量瓶帶來(lái)的不確定度[[urel(v1-3)]為0.082%和讀數(shù)誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v1-4)]為0.041%;內(nèi)標(biāo)物對(duì)每個(gè)濃度點(diǎn)不確定度均為A 級(jí)1 mLA 級(jí)1 mL 吸量管允許誤差帶來(lái)的不確定度[[urel(v1-5)]為0.327%和讀數(shù)誤差帶來(lái)的不確定度[urel(v1-6)]為0.163%。按式(8)計(jì)算,濃度點(diǎn)1 引入的不確定度[urel(v1)]為0.822%。
利用式(8),計(jì)算其他濃度點(diǎn)不確定度[urel(v2)]為0.525、[urel(v3)]為0.466%、[urel(v4)]為0.525%、[urel(v5)]為0.450%、[urel(v6)]為0.436%、[urel(v7)]為0.473%。
混合標(biāo)準(zhǔn)工作液每個(gè)濃度點(diǎn)引入不確定度[urel(c3-x)],利用式(9)計(jì)算出混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液濃度點(diǎn)1[urel(c3-1)]不確定度為1.15%。
利用式(9),計(jì)算其他濃度點(diǎn)不確定度[urel(c3-2)]為0.902%,[urel(c3-3)]為0.898%,[urel(c3-4)]為1.07%,[urel(c3-5)]為0.987%,[urel(c3-6)]為0.975%。
利用式(10),計(jì)算可得由混合標(biāo)準(zhǔn)工作液配制帶來(lái)的不確定度[urel(c3)]為2.21%。
綜上,在標(biāo)準(zhǔn)品配制中,單標(biāo)儲(chǔ)備液、混合標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液、混合標(biāo)準(zhǔn)工作液配制引起的合成不確定度[urel(c)]為:
利用式(11),計(jì)算可得標(biāo)準(zhǔn)溶液配制步驟帶來(lái)的不確定度[urel(c)]為2.46 %。
2.2.1 樣品質(zhì)量稱取引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(m)
由天平允許誤差不確定度urel(m1)、天平示值誤差不確定度urel(m2)、稱量重復(fù)性不確定度urel(m3)引入。
方法1,采用百分之一天平稱取2 g 樣品,天平的允許誤差為0.01g、示值誤差為0.005 g,符合矩形分布,則天平允許誤差不確定度urel(m1)、天平示值誤差不確定度urel(m2)分別為:
稱樣重復(fù)性(n=9),用標(biāo)準(zhǔn)偏差S(x)利用貝塞爾公式(4)計(jì)算,不確定度urel(m3)按公式(5)計(jì)算為1.07%。
利用式(14),計(jì)算可得方法1 由稱樣帶來(lái)的不確定度[urel(m)]為1.16 %,方法2 由稱樣帶來(lái)的不確定度[urel(m)]為1.10%。
2.2.2 樣品提取引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(v1)
樣品在提取、分取步驟過(guò)程中,方法1 僅考慮樣品提取引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(v1),由乙腈膨脹引入不確定度urel(v1-1)、吸量管引入不確定度urel(v1-2)、量取重復(fù)性引入不確定度urel(v1-3),吸取8 mL 上清液待凈化,體積不直接帶入不確定度,故不考慮不確定度引入。方法2 中提取液全部轉(zhuǎn)入雞心瓶40 ℃水浴旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至1 mL 左右,待凈化,無(wú)分取步驟,不考慮該步驟的不確定度引入。但無(wú)水硫酸鎂、醋酸鈉等試劑的多少、提取時(shí)間、均值轉(zhuǎn)速等因素帶入的不確定度均體現(xiàn)在樣品的加標(biāo)回收上,在后文回收率分量進(jìn)行評(píng)定。
提取步驟是用A 級(jí)25 mL 吸量管量取15 mL乙腈試劑。乙腈膨脹引入分量,實(shí)驗(yàn)室溫度通常為(20±5)℃,乙腈的膨脹系數(shù)為0.00137 ℃-1,由溫度變化引起試劑膨脹帶來(lái)的不確定度服從矩形分布,不確定度[urel(v1-1)]為0.395。A 級(jí)25 mL 吸量管最大允許誤差±0.1 mL,讀數(shù)重復(fù)性偏差為±0.05 mL,量器量取偏差服從三角形分布,故25 mL 吸量管量取15 mL 乙腈,允許誤差和讀數(shù)重復(fù)性引起的不確定度分別為[urel(v1-2)]為0.272%、[urel(v1-3)]為0.136%。
利用式(15),計(jì)算可得方法1 由提取步驟帶來(lái)的不確定度[urel(v1)]為0.499%。
2.2.3 樣品凈化、定容引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度urel(v2) 樣品凈化、定容步驟過(guò)程中,兩個(gè)方法的凈化過(guò)程,方法1 中各填料的稱取量、振動(dòng)的頻率和時(shí)間、離心的轉(zhuǎn)速和時(shí)間、樣品定容等均不直接帶入不確定度,僅與量取2 mL 凈化后樣液和內(nèi)標(biāo)溶液的量取引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度[urel(v2)];方法2 中洗液的量取、洗脫的速度、樣品定容等均不直接帶入不確定度,僅與內(nèi)標(biāo)溶液的量取有關(guān);
凈化步驟,方法1 用A 級(jí)2 mL 吸量管分取2 mL凈化后樣液,再用100 μL 單通道移液器量取100 μL內(nèi)標(biāo),約用1 mL 乙酸乙酯復(fù)溶,待測(cè)。
乙腈試劑膨脹引起的相對(duì)不確定度[urel(v2-1)]為0.395%,A 級(jí)2 mL 吸量管最大誤差為±0.012 mL,其相對(duì)不確定度[urel(v2-2)]為0.245%,讀數(shù)重復(fù)性偏差為土0.006 mL,其相對(duì)不確定度[urel(v2-3)]為0.122%。
丙酮試劑膨脹引起的相對(duì)不確定度[urel(v2-4)]為0.41%,A 型100 μL 單通道移液器最大誤差為±0.8 μL,其相對(duì)不確定度[urel(v2-5)]為0.327%。
利用式(16),計(jì)算可得方法1 由凈化步驟帶來(lái)的不確定度[urel(v2)]為0.711%,方法2 由凈化步驟帶來(lái)的不確定度[urel(v2)]為0.327%。
綜上,在樣品前處理中,提取液量取、分取、定容、內(nèi)標(biāo)量取引起的合成不確定度[urel(P)]為:
利用式(17),計(jì)算可得方法1 由樣品前處理步驟帶來(lái)的不確定度[urel(P)]為1.45 %,方法2 由樣品前處理步驟帶來(lái)的不確定度[urel(P)]為1.15%。
按1.2.3 配制好混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,氣質(zhì)聯(lián)用儀檢測(cè),每個(gè)濃度點(diǎn)測(cè)量5次,標(biāo)準(zhǔn)溶液化合物與內(nèi)標(biāo)物濃度比與標(biāo)準(zhǔn)溶液化合物與內(nèi)標(biāo)物峰面積比數(shù)據(jù)見表4。利用SPSS20.0 軟件對(duì)表中數(shù)據(jù)作最小二乘法線性回歸處理。擬合曲線和確定系數(shù)見表5。
表4 農(nóng)藥標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)量結(jié)果Table 4 Measurement results of pesticide standard curve
利用式(18)計(jì)算出標(biāo)準(zhǔn)擬合曲線標(biāo)準(zhǔn)偏差SA,yi為第i次測(cè)量的溶液化合物與內(nèi)標(biāo)物峰面積比;a 為截距;b 為斜率;xi為第i次測(cè)量的標(biāo)準(zhǔn)溶液化合物與內(nèi)標(biāo)物濃度比;n 為標(biāo)準(zhǔn)溶液的測(cè)定總次數(shù)(n=30)。線性關(guān)系及擬合曲線的確定系數(shù)見表5。
利用式(19)計(jì)算擬合曲線引入的不確定度U(R)。SA為準(zhǔn)曲線的標(biāo)準(zhǔn)差;p 為樣品的測(cè)定次數(shù)(p=10);n 為標(biāo)準(zhǔn)溶液的測(cè)定總次數(shù)(n=30);b 為標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率為由標(biāo)準(zhǔn)曲線求得的樣品溶液濃度平均值(見表5);為各標(biāo)準(zhǔn)系列溶液濃度的平均值,為0.517 mg/L;xi為第i次測(cè)量的標(biāo)準(zhǔn)曲線濃度。
標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入不確定度為A 類評(píng)定,樣液測(cè)定濃度在0.17~0.235 mg/L,每個(gè)樣品重復(fù)10次測(cè)定,標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入不確定度和相對(duì)相對(duì)不確定度計(jì)算結(jié)果見表5。由結(jié)果可知氯氰菊酯在測(cè)定濃度為0.172 mg/L 時(shí),引入測(cè)量不確定度為7.93 %,水胺硫磷、氯唑磷、甲基對(duì)硫磷引入測(cè)量不確定度均大于5.0%。
表5 標(biāo)準(zhǔn)曲線引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度Table 5 Relative standard uncertainty introduced by the standard curves
假設(shè)1:在同一條件下測(cè)定同一樣品n次,考察了測(cè)量次數(shù)與不確定度的關(guān)系,利用測(cè)量次數(shù)和相對(duì)不確定度作圖2。隨著測(cè)量次數(shù)的增加,樣品測(cè)量由標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入的不確定度降低,樣品測(cè)量次數(shù)在3~4次時(shí),不確定度的變化不明顯。結(jié)果說(shuō)明,在檢測(cè)工作中,測(cè)量結(jié)果如出現(xiàn)陽(yáng)性檢出時(shí),樣品需要平行測(cè)量3次以上才能得到較可靠的結(jié)果。
圖2 樣液測(cè)量次數(shù)與標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入相對(duì)不確定度的關(guān)系Fig.2 Relationship of the relative uncertainty resulting from the measurement times of the sample liquid and the fitting of the standard curve
假設(shè)2:在同一條件下測(cè)定不同陽(yáng)性樣品,每個(gè)樣品重復(fù)10次,考察了測(cè)量不同樣液檢出濃度(0.05~1 mg/L)與不確定度的關(guān)系,利用測(cè)量濃度和相對(duì)不確定度作圖3,隨著檢測(cè)濃度的增加,標(biāo)準(zhǔn)曲線引入的相對(duì)不確定度urel(R)降低,當(dāng)樣液測(cè)定濃度為0.3 mg/L 時(shí),各化合物urel(R)均小于5.0%,但樣液測(cè)定濃度為0.05 mg/L 時(shí),由各化合物urel(R)相對(duì)較高。并不是樣液測(cè)定濃度越高測(cè)定結(jié)果越可靠,當(dāng)樣液濃度繼續(xù)升高,設(shè)備單位檢測(cè)靈敏性會(huì)下降或者檢測(cè)器出現(xiàn)過(guò)載,樣液濃度和檢測(cè)器信號(hào)成下拋弧線,造成測(cè)量結(jié)果偏低的風(fēng)險(xiǎn)。
圖3 樣液檢出濃度與標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入相對(duì)不確定度的關(guān)系Fig.3 Relationship of the relative uncertainty introduced by the detected concentration of the sample solution and the standard curve fitting
結(jié)果說(shuō)明,在測(cè)定中,樣液測(cè)定濃度在標(biāo)準(zhǔn)曲線平均濃度附近時(shí),檢測(cè)結(jié)果較可靠,不同濃度的樣品要使用合適的標(biāo)準(zhǔn)曲線定量或者通過(guò)樣品稀釋、濃縮等方式讓樣液檢測(cè)濃度在合適的范圍內(nèi)進(jìn)行測(cè)定。
方法采用內(nèi)標(biāo)法定量,進(jìn)樣量的體積誤差不會(huì)對(duì)檢測(cè)帶來(lái)測(cè)量不確定度,主要考慮儀器對(duì)各組分的測(cè)量穩(wěn)定性,分析各目標(biāo)物與內(nèi)標(biāo)物峰面積的比值的測(cè)量偏差,用來(lái)評(píng)定儀器測(cè)量重復(fù)性引入的不確定度的程度。
茶葉樣品經(jīng)過(guò)1.3 步驟處理成樣液后,添加加入一定量農(nóng)藥成分,制備成模擬陽(yáng)性檢樣品,上機(jī)樣液溶度為0.1~0.3 mg/L 為宜,采用統(tǒng)計(jì)方法評(píng)定不確定度,通過(guò)在重現(xiàn)性、重復(fù)性條件下,連續(xù)重復(fù)測(cè)試農(nóng)藥分面積與內(nèi)標(biāo)物分面積比10次,利用貝塞爾式(4)計(jì)算出峰面積比標(biāo)準(zhǔn)偏差S(A)、式(5)計(jì)算出不確定度urel(A),結(jié)果見表6。
表6 樣品溶液峰面積測(cè)定重復(fù)性引入的不確定度Urel(A) (n=10)Table 6 Uncertainty Urel (A) of repetitive ability (n=10)
結(jié)果可知,甲拌磷、氯唑磷等9 個(gè)農(nóng)藥由樣品溶液峰面積測(cè)定重復(fù)性引入的不確定度為0.5%~2.56%,其中菊酯類農(nóng)藥引入不確定度較大,氯氰菊酯引入的不確定度達(dá)2.56%。分析可知峰面積測(cè)定重復(fù)性引入的不確定度主要和儀器的穩(wěn)定性、靈敏度有關(guān),也和農(nóng)藥的自身性質(zhì)有關(guān)。比如氯唑磷和水胺硫磷這兩個(gè)農(nóng)藥的穩(wěn)定性不如其他農(nóng)藥,在檢測(cè)分析中容易發(fā)生分解,增加了不確定度的引入;再比如氯氰菊酯、氰戊菊酯等菊酯存在異構(gòu)體,工作站對(duì)異構(gòu)體積分計(jì)算峰面積加和時(shí)也會(huì)引入不確定度;儀器的狀態(tài),如進(jìn)樣口襯管、色譜柱柱效、離子源污染程度都會(huì)引起峰面積的測(cè)量不確定度的增加。
添加回收率引入不確定度為A 類評(píng)定,采用在茶葉中分別加入濃度為方法1(0.10、0.20、0.50 mg/kg),方法2(0.02 、0.05 、0.10 mg/kg)的目標(biāo)分析物,每個(gè)添加水平重復(fù)6次。為扣除標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合帶入的不確定度,采取使用標(biāo)準(zhǔn)曲線上濃度值較接近點(diǎn)濃度單點(diǎn)定量,計(jì)算回收率,結(jié)果見表7。
表7 回收率引入的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)不確定度Table 7 Relative standard uncertainty introduced in the recovery rate
利用式(21)計(jì)算回收率引入的相對(duì)不確定度[urel(Q)],式中n 為回收率獨(dú)立樣本個(gè)數(shù)18,S(Q)為回收率標(biāo)準(zhǔn)偏差為回收率平均值。按式(22)對(duì)上述結(jié)果進(jìn)行顯著性檢驗(yàn),在95%置信區(qū)間,自由度為17 時(shí),t分布臨界值t0.95(17)=2.110,當(dāng)檢驗(yàn)值t≥2.110 時(shí),則與回收率有顯著性差異,需要使用回收率修正結(jié)果,反之不需要[20]。
統(tǒng)計(jì)上述各不確定度分量,結(jié)果見表8~表9,各農(nóng)藥的合成相對(duì)不確定度urel(X)由各分量相對(duì)不確定度按公式(23)計(jì)算合成而得,結(jié)果見表8。
由表8~表9可知,兩個(gè)方法的合成不確定度引入量有差異,其中B 類不確定度分量中,由于前處理不同而引入不同量,A 類不確定度分量中主要是方法的原理不一樣,由于方法中農(nóng)藥的提取效率,基質(zhì)影響等因素造成回收率引入不確定度的差異。
表8 B 類評(píng)定不確定度的構(gòu)成Table 8 Composition of class B
表9 A 類評(píng)定不確定度的構(gòu)成和合成相對(duì)不確定度Table 9 Composition and synthesis of class A
從整個(gè)合成不確定度過(guò)程分析來(lái)看,各分量合成不確定度貢獻(xiàn)最大的是標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入不確定度、回收率引入不確定度和標(biāo)準(zhǔn)溶液配制引入;標(biāo)準(zhǔn)溶液配制引入不確定度分量主要為混合標(biāo)準(zhǔn)工作液配制引入引起,標(biāo)準(zhǔn)品的配制過(guò)程不容忽視;通過(guò)測(cè)算,樣液的測(cè)量濃度很低時(shí),標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入貢獻(xiàn)很大;回收率引入不確定度最為重要,它也是我們?cè)谌粘z測(cè)工作的質(zhì)控手段之一,通過(guò)它的值來(lái)評(píng)價(jià)方法的準(zhǔn)確度,回收率的好壞受方法原理、農(nóng)藥性質(zhì)、人員操作、試劑耗材等多方面的影響。農(nóng)藥殘留檢測(cè)值即使不折算回收率,其對(duì)檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確度也存在影響,原因是回收率折算的是平均殘留值,但其對(duì)檢測(cè)結(jié)果的偏差無(wú)法被忽略[19]。
根據(jù)測(cè)量不確定度評(píng)定指南要求,在95%置信水平時(shí),取子k=2,在0.15 mg/kg 添加水平下,每個(gè)水平重復(fù)6次,當(dāng)回收率在滿足方法要求時(shí),各農(nóng)藥在茶葉樣品中的擴(kuò)展不確定度[28],見表10。
表10 茶葉中9 種農(nóng)藥殘留的檢測(cè)結(jié)果不確定度Table 10 Uncertainty of 9 pesticide residues in tea leaves
在實(shí)際樣品檢測(cè)中,對(duì)于農(nóng)藥殘留值為最大允許殘留值附近時(shí),測(cè)量不確定的正確引入可決定該樣品是否超標(biāo),這對(duì)實(shí)驗(yàn)室和企業(yè)都非常重要。在分析檢測(cè)中,方法GB/T 23204-2008 和方法GB/T 23200.113-2018 都為茶葉中農(nóng)藥殘留檢測(cè)的推薦方法,方法的選擇可能會(huì)影響檢測(cè)結(jié)論。GB/T 23200.113-2018 由于具有簡(jiǎn)單、快速、高效且成本低的特點(diǎn),廣泛被作為實(shí)驗(yàn)室的第一方法來(lái)使用,由表11可知,由于方法的稀釋倍數(shù)為7.5,甲拌磷、氯唑磷、甲基對(duì)硫磷、氰戊菊酯5 個(gè)農(nóng)藥,如果檢出濃度為MRLs時(shí),樣液的理論檢測(cè)濃度在0.027 mg/L 以下,最低至0.0027 mg/L,在實(shí)際檢測(cè)分析中,由于儀器靈敏度和回收率的影響,樣品檢測(cè)結(jié)果的不確定度很大,對(duì)檢測(cè)結(jié)果的判定存在很大的風(fēng)險(xiǎn),建議這5 個(gè)藥使用GB/T 23204-2008 檢測(cè)分析。
表11 方法GB/T23204 和方法GB/T 23200.113-2018 比較Table 11 Comparison of method GB/T23204 and the method GB/T 23200.113-2018
噠螨靈、氯菊酯、氯氰菊酯、氟氯氰菊酯在GB 2763-2021 食品中農(nóng)藥最大殘留限量上的允許最大殘留較高,分別為5、20、20、1 mg/kg。較高濃度的樣液進(jìn)入儀器后會(huì)造成色譜柱的過(guò)載、檢測(cè)器過(guò)載,產(chǎn)生測(cè)量誤差,建議使用GB/T 23200.113-2018 方法,同時(shí)采用增加乙酸乙酯的復(fù)溶體積和內(nèi)標(biāo)物的添加量,控制內(nèi)標(biāo)物濃度和標(biāo)液中內(nèi)標(biāo)物濃度基本一致為宜。
通過(guò)氣相色譜質(zhì)譜聯(lián)用法,采用不同方法分析評(píng)估茶葉中噠螨靈等9 種農(nóng)藥殘留含量測(cè)定過(guò)程中的不確定度,實(shí)驗(yàn)過(guò)程中對(duì)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)的配制、樣品稱量、樣品提取、凈化、測(cè)量等過(guò)程會(huì)引入不確定度進(jìn)行分析,分析評(píng)定合成不確定度過(guò)程,可知不確定度貢獻(xiàn)主要來(lái)自標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合、樣品添加回收率和標(biāo)準(zhǔn)溶液配制,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響較大,其次是樣品測(cè)量重復(fù)性,在極低測(cè)量濃度時(shí),影響最為明顯。
在分析檢測(cè)中,方法GB/T 23204-2008 和方法GB/T 23200.113-2018 都為茶葉中噠螨靈等9 種農(nóng)藥殘留檢測(cè)的推薦方法,方法的選擇可能會(huì)影響檢測(cè)結(jié)論。建議甲拌磷、氯唑磷、甲基對(duì)硫磷、氰戊菊酯5 個(gè)農(nóng)藥,使用GB/T 23204-2008 檢測(cè)分析;噠螨靈、氯菊酯、氯氰菊酯、氟氯氰菊4 個(gè)農(nóng)藥,使用GB/T 23200.1134-2018 檢測(cè)分析??赏ㄟ^(guò)方法優(yōu)化,調(diào)節(jié)合適的檢測(cè)濃度,如:茶葉中氰戊菊酯和氯唑磷在MRLs 值檢出時(shí),可適當(dāng)增加樣品稱樣量或減少定容液體積;氯菊酯和氯氰菊酯在MRLs 值檢出時(shí),可增加提取液的體積和增加定容液體積。
標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入的不確定度大小與樣品測(cè)量次數(shù)呈相關(guān)性,隨著測(cè)量次數(shù)的增加,樣品測(cè)量由標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入的不確定度降低,樣品測(cè)量次數(shù)在3~4次時(shí),不確定度的變化不明顯。結(jié)果說(shuō)明,檢測(cè)工作中,測(cè)量結(jié)果如出現(xiàn)陽(yáng)性檢出時(shí),樣品需要復(fù)測(cè)3次以上計(jì)算平均值才能得到較可靠的結(jié)果。測(cè)定中,樣液測(cè)定濃度在標(biāo)準(zhǔn)曲線平均濃度附近時(shí),檢測(cè)結(jié)果較可靠,不同濃度的樣品要使用合適的標(biāo)準(zhǔn)曲線定量或者通過(guò)樣品稀釋、濃縮等方式讓樣液檢測(cè)濃度在合適的范圍內(nèi)進(jìn)行測(cè)定。結(jié)果表明,選擇合適的校準(zhǔn)曲線和增加樣品的測(cè)量次數(shù),可以降低標(biāo)準(zhǔn)曲線擬合引入的不確定度影響。
回收率引入不確定度最為重要,它也是我們?cè)谌粘z測(cè)工作的質(zhì)控手段之一,通過(guò)它的值能夠評(píng)價(jià)方法的準(zhǔn)確度。回收率的好壞受方法原理、農(nóng)藥性質(zhì)、樣品基質(zhì)、人員操作、試劑耗材等多因素干擾,造成測(cè)量結(jié)果不確定度數(shù)值增大。
在采用氣相色譜質(zhì)譜法測(cè)定茶葉中的農(nóng)藥殘留量時(shí),需要選擇合適的前處理方法,保障實(shí)驗(yàn)室溫濕度環(huán)境條件,提高實(shí)驗(yàn)人員的操作水平,使用滿足實(shí)驗(yàn)需要的量具精度,試劑耗材的純度,做好儀器調(diào)試準(zhǔn)備工作,以滿足檢驗(yàn)檢測(cè)的需求。樣品前處理中應(yīng)嚴(yán)格控制的各個(gè)步驟,操作精確,減少樣品稱樣量、提取液體積、定容溶液體積等引入的不確定度。使用合適的標(biāo)準(zhǔn)曲線濃度點(diǎn)范圍,在定量軟件中調(diào)整標(biāo)準(zhǔn)曲線濃度點(diǎn)的權(quán)重,獲得更好的擬合結(jié)果,提高在MRL 值附近的測(cè)量準(zhǔn)確度。測(cè)量結(jié)果如出現(xiàn)陽(yáng)性檢出時(shí),樣品需要復(fù)測(cè)3次以上計(jì)算平均值才能得到較可靠的結(jié)果,從而降低測(cè)定結(jié)果的不確定度,確保檢測(cè)結(jié)果的置信度。