胡丹 何富強 杜全能 王剛 蘭時樂
摘要 [目的]鑒定1株異養(yǎng)硝化-好氧反硝化神戶腸桿菌,明確其脫氮特性。[方法]從養(yǎng)殖池塘底泥中篩選到1株異養(yǎng)硝化-好氧反硝化菌HD-NAH,經(jīng)形態(tài)學(xué)觀察、生理生化試驗以及16S rDNA序列分析,鑒定為神戶腸桿菌(Enterobacter kobei)HD-NAH,并研究其脫氮特性。[結(jié)果]該菌在以檸檬酸鈉為碳源,C/N為18,初始pH為7,溫度為27 ℃,轉(zhuǎn)速為190 r/min時,24 h亞硝氮(NO2--N)和總氮(TN)降解率分別為99.98%和89.37%,具有較高的降解效率。菌株在初始pH為7~10,溫度為27~37 ℃,轉(zhuǎn)速為130~210 r/min時,對NO2--N和TN的降解率均較高,表明該菌株的環(huán)境適應(yīng)性較強。在不同氮源條件下,菌株HD-NAH對氮的去除存在差異,其對TN去除率表現(xiàn)為NO2--N>NH4+-N+NO2--N>NH+4-N+NO3--N>NH4+-N>NO3--N,還存在一定短程異養(yǎng)硝化-好氧反硝化過程。[結(jié)論]菌株HD-NAH良好的脫氮特性可為養(yǎng)殖廢水除氮提供可選擇材料。
關(guān)鍵詞 神戶腸桿菌HD-NAH;異養(yǎng)硝化;好氧反硝化;脫氮特性
中圖分類號 X172? 文獻標識碼 A
文章編號 0517-6611(2022)10-0070-05
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2022.10.018
Identification of a Heterotrophic Nitrification-Aerobic Denitrifying Bacterium and Its Removal Characteristics of Nitrogen
HU Dan1,2,HE Fu-qiang1,DU Quan-neng3 et al (1.College of Bioscience and Biotechnology,Hunan Agricultural University,Changsha,Hunan 410128; 2.Hunan Institute of Microbiology,Changsha,Hunan 410009; 3.Haida Research Institute of Guangdong Haida Group Co.,Ltd,Guangzhou,Guangdong 511400)
Abstract [Objective]To identify a heterotrophic nitrification-aerobic denitrifying bacterium,and clarify its denitrification characteristics.[Method]A heterotrophic nitrification-aerobic denitrifying bacterium was screened from the sludge of aquaculture pond,was named as HD-NAH.The strain was identified as Enterobacter kobei by morphological observation,physiological and biochemical tests,and 16S rDNA sequence analysis.The removal characteristics of nitrite nitrogen and total nitrogen by HD-NAH were studied.[Result]The results showed that degradation rate of nitrite nitrogen and total nitrogen by strain HD-NAH were 99.98% and 89.37% respectively,under the conditions of trisodium citrate as the sole carbon source,C/N 18,pH 7,appropriate culture temperature 27 ℃ and shaking speed 190 r/min.The strain HD-NAH had preferable degradation rate of nitrite nitrogen and total nitrogen under pH 7-10,temperature 27-37 ℃,and shaking speed 130-210 r/min,it means that strain HD-NAH has strong environmental adaptability.The degradation rate of nitrite nitrogen and total nitrogen were measured under different nitrogen source,the rate was arranged as:NO2--N>NH4+-N+NO2--N>NH+4-N+NO3--N>NH4+-N>NO3--N.The strain showed a certain short-range heterotrophic nitrification-aerobic denitrification process.[Conclusion]It provided an alternative material for the denitrification of aquaculture wastewater basing on good denitrification characteristics of the strain HD-NAH.
Key words Enterobacter kobei HD-NAH;Heterotrophic nitrification;Aerobic denitrification;Denitrification characteristics
基金項目 湖南省重點研發(fā)項目(2016NK2103);湖南創(chuàng)新型省份建設(shè)經(jīng)費資助項目(2020NK2029)。
作者簡介 胡丹(1989—),女,湖南桃江人,助理工程師,碩士,從事環(huán)境重金屬檢測研究。 通信作者,副教授,從事微生物資源利用研究。
收稿日期 2021-07-06
水體氮元素的大量累積會造成水體富營養(yǎng)化和生態(tài)失衡等一系列問題,嚴重威脅水生生物的生存和健康,制約我國養(yǎng)殖業(yè)的持續(xù)發(fā)展。在處理水體氮污染過程中,微生物起著重要作用,可通過氨化、硝化和反硝化等過程減少水體中的氮含量,從而達到脫氮目的[1]。傳統(tǒng)認為微生物的硝化和反硝化是2個獨立的過程,直到1984年,Robertson等[2]發(fā)現(xiàn)一種能進行異養(yǎng)硝化-好氧反硝化的脫氮副球菌(Paracocci denitrificans),并提出了異養(yǎng)硝化-好氧反硝化的概念。異養(yǎng)硝化-好氧反硝化細菌可在有氧條件下利用有機碳源和有機氮源進行生長,在降低有機物含量的同時,利用自發(fā)反應(yīng)去除水體中有毒的氨氮與亞硝酸鹽氮,且除氮率高、除氮速率快,避免了二次污染,受到廣泛關(guān)注[3-5]。
異養(yǎng)硝化-好氧反硝化細菌的發(fā)現(xiàn),為生物脫氮提供了新的研究方向。近年來,許多研究者從自然界分離了諸多異養(yǎng)硝化-好氧反硝化菌并對其脫氮進行了研究,包括假單胞菌(Pseudomonas sp.)[6]、無色桿菌(Achromobacter sp.)[7]、芽孢桿菌(Bacillus sp.)[8]、陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)[9]和農(nóng)桿菌屬(Agrobacterium sp.)[10]等細菌及皺褶念珠菌(Diutina rugosa)[11]等真菌。一些細菌在實際水體的應(yīng)用中取得了良好效果,如魔鬼弧菌(Vibrio diabolicus)SF16對含鹽廢水的氨氮和總氮去除率分別達到97.14%和73.92%[12],Acinetobacter sp.T1能夠明顯提高養(yǎng)豬場廢水中的氮去除率[13]。因此,篩選出更多高效除氮的菌種資源,對于利用微生物進行氮污染環(huán)境修復(fù)有著重要意義。該研究從淡水養(yǎng)殖池塘底泥中分離到1株高效異養(yǎng)硝化-好氧反硝化菌株HD-NAH,經(jīng)形態(tài)學(xué)觀察、生理生化試驗并結(jié)合16S rDNA序列分析,鑒定為神戶腸桿菌,目前有關(guān)該菌用于生物脫氮方面的研究鮮見報道。筆者進一步探討了該菌株異養(yǎng)硝化-好氧反硝化的影響因素,以期為菌株HD-NAH應(yīng)用于淡水養(yǎng)殖廢水的除氮處理提供科學(xué)依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
1.1.1 菌種分離樣品。采集于湖南省長沙市東湖養(yǎng)殖場池塘底泥,裝于無菌玻璃瓶中,迅速帶回實驗室進行富集培養(yǎng)和菌株分離。
1.1.2 培養(yǎng)基。
牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基:牛肉膏10.0 g/L,蛋白胨5.0 g/L,NaCl 10.0 g/L,pH自然。加入2%瓊脂,制成斜面培養(yǎng)基。
反硝化培養(yǎng)基:檸檬酸鈉9.0 g/L,NaNO2 0.6 g/L,Na2HPO4 1.0 g/L,NaH2PO4 1.0 g/L,MgSO4·7H2O 1.0 g/L,CaCl2·2H2O 0.2 g/L,1%溴麝香草酚藍(Bromothymol Blue,BTB)1.0 mL/L,瓊脂2%,pH 7.0?;A(chǔ)脫氮培養(yǎng)基:成分同反硝化培養(yǎng)基,不添加1% BTB和瓊脂。
1.2 試驗方法
1.2.1 菌種的富集與初篩。
稱取10 g池塘底泥于100 mL牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基中,32 ℃ 170 r/min搖床中富集培養(yǎng)72 h后,按10倍稀釋法將富集液稀釋至10-8。分別取最后3個稀釋度的稀釋液0.1 mL涂布于反硝化固體培養(yǎng)基平板上,32 ℃ 恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)至長出單菌落后,挑取不同形態(tài)的單菌落進行純化并編號。
1.2.2 菌種復(fù)篩。
將分離純化的菌種分別接種于牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基中,32 ℃ 170 r/min條件下振蕩培養(yǎng)24 h后,離心收集菌體,使用基礎(chǔ)脫氮培養(yǎng)基洗滌菌體2次,等體積基礎(chǔ)脫氮培養(yǎng)基懸浮菌體,按1%(V/V)接種量分別接種于基礎(chǔ)脫氮培養(yǎng)基中,32 ℃ 170 r/min條件下振蕩培養(yǎng)48 h后,測定菌株對亞硝氮(NO2--N)的去除率。
1.2.3 菌種鑒定。參照《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[14],對菌株HD-NAH的菌落和菌體形態(tài)進行觀察并分析菌株的常規(guī)生理生化指標。采用DNA提取試劑盒(SK8257,上海生工生物工程股份有限公司)提取菌株的基因組DNA,通過PCR擴增16S rDNA序列。PCR體系(25 μL):10×Buffer (Mg2+) 2.5 μL、dNTP 1 μL、Taq酶 0.2 μL、引物27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG -3′)和1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT -3′)各0.5 μL、模板0.5 μL,用無菌ddH2O定容至25 μL。PCR擴增程序:94 ℃預(yù)變性4 min,94 ℃ 45 s、55 ℃ 45 s、72 ℃ 1 min,循環(huán)35次,72 ℃延伸10 min。測序后將16S rDNA序列提交至NCBI,使用Blastn檢索比對,用MEGA 7.0.26軟件的鄰位連接法(Neighbor-Joining,NJ)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,bootstrap自展1 000次檢驗。
1.2.4 菌株HD-NAH脫氮特性研究。采用單因素試驗法,分別改變基礎(chǔ)脫氮培養(yǎng)基的碳源種類(檸檬酸鈉、碳酸鈉、丁二酸鈉、酒石酸鈉和蔗糖)、C/N(2、6、10、14、18、22)、初始pH(6、7、8、9、10)、溫度(22、27、32、37、42 ℃)、搖床轉(zhuǎn)速(130、150、170、190、210 r/min)和氮源種類(121.74 mg/L NH4Cl、121.74 mg/L NaNO3、121.74 mg/L NaNO2、60.87 mg/L NH4Cl+60.87 mg/L NaNO3、60.87 mg/L NH4Cl+60.87 mg/L NaNO2),探討不同條件下菌株HD-NAH的脫氮性能。
1.2.5 測定方法。
參照文獻[15]中的方法測定發(fā)酵液上清液中氨氮(NH4+-N)、亞硝氮(NO2--N)、硝態(tài)氮(NO3--N)和總氮(TN)含量。
1.2.6 數(shù)據(jù)處理。
使用GraphPad Prism 8.0.1對數(shù)據(jù)進行處理。采用SPSS 25.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行one-way ANOVA分析和Tukey’s HSD 檢驗(P<0.05)。
2 結(jié)果與分析
2.1 菌種的篩選
從養(yǎng)殖水體底泥中篩選菌種,通過富集和平板分離,共獲得11株具有反硝化能力的菌株,分別命名為HD-NAH、HD-NBH、HD-NCH、HD-NDH、HD-NEH、HD-NFH、HD-NGH、HD-NHH、HD-NJH、HD-NMH、HD-NNH。將分離的11株菌株分別接種至牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基,32 ℃ 170 r/min振蕩培養(yǎng)24 h后,按1%(V/V)的接種量接入基礎(chǔ)發(fā)酵培養(yǎng)基中,同樣條件下發(fā)酵48 h,測定發(fā)酵液中NO2--N含量。從圖1可見,分離篩選的11株細菌均具有NO2--N的降解能力,菌株HD-NAH對NO2--N的去除率最大,達到94.36%。因此,選擇該菌株進行后續(xù)研究。
2.2 菌株HD-NAH鑒定
2.2.1 菌株形態(tài)觀察。
菌株HD-NAH在反硝化培養(yǎng)基上培養(yǎng)24 h后的菌落形態(tài)為圓形,較小,白色,表面濕潤光滑,邊緣整齊,半透明;顯微鏡下細菌形態(tài)特征呈短桿狀、無芽孢,周生鞭毛。
2.2.2 生理生化指標。
菌株HD-NAH的半乳糖、V-P反應(yīng)、硝酸鹽還原、亞硝酸鹽還原發(fā)酵為陽性;麥芽糖、MR反應(yīng)、水解淀粉、吲哚和纖維素水解發(fā)酵為陰性(表1)。該菌株的生理生化特征與《常見細菌系統(tǒng)鑒定手冊》[14]中的腸桿菌屬基本一致。
2.2.3 16S rDNA序列及系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建。
使用通用引物27F/1492R對菌株HD-NAH的16S rDNA進行PCR擴增,瓊脂糖凝膠檢測PCR產(chǎn)物,在1 500 bp處有明顯條帶(圖2A),長度為1 475 bp。Blast比對分析后采用MEGA 7.0.26軟件對選取的序列進行系統(tǒng)發(fā)育樹構(gòu)建,結(jié)果見圖2B。菌株HD-NAH與神戶腸桿菌STW0522-51及Enterobacter kobei strain WCHEK045523的親緣關(guān)系最近。結(jié)合形態(tài)學(xué)和生理生化試驗結(jié)果,將菌株HD-NAH鑒定為神戶腸桿菌。
2.3 菌株HD-NAH脫氮特性
2.3.1 碳源對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。
從圖3可見,不同碳源對菌株HD-NAH的NO2--N、TN降解率存在顯著影響(P<0.05)。以檸檬酸鈉為碳源時,NO2--N、TN的降解率最高,分別為75.21%和57.23%。因此,選擇檸檬酸鈉為碳源進行后續(xù)脫氮特性研究。
2.3.2 C/N對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。
通過改變培養(yǎng)基中碳源的含量,測定了菌株在6種不同C/N條件下的脫氮情況。結(jié)果表明(圖4),C/N對菌株脫氮具有顯著影響(P<0.05)。C/N在6~18時,NO2--N、TN的降解率隨著C/N的升高而增加;在C/N為18時,NO2--N、TN的降解率均達到最高,分別為91.56%和66.95%;C/N大于18時,NO2--N、TN的降解率均下降。因此,選擇C/N為18進行后續(xù)試驗。
2.3.3 初始pH對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。培養(yǎng)基pH主要影響生物的細胞膜電荷量、細胞膜通透性以及對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收。從圖5可知,菌株在中性和堿性環(huán)境(pH≥7)對
NO2--N、TN的降解率明顯高于酸性環(huán)境(pH為6)。在pH為7~10時,NO2--N的降解率均超過93.01%。初始pH為7時,NO2--N、TN的降解率最佳,分別為95.66%和79.43%。但當pH高于9時,NO2--N、TN的降解率反而下降。以上結(jié)果說明菌株HD-NAH對中性和堿性環(huán)境具有較廣的適應(yīng)性,在pH 7~10對氮具有較高的去除率,因此后續(xù)選擇pH為7進行試驗。
2.3.4 培養(yǎng)溫度對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。
溫度主要影響酶促反應(yīng)速率、細胞膜的流動性和營養(yǎng)物質(zhì)的離子化程度,從而影響微生物代謝產(chǎn)物的合成。從圖6可見,菌株HD-NAH具有較廣的脫氮溫度適應(yīng)性,在27~37 ℃時,對NO2--N、TN的降解率無顯著差異(P>0.05),27 ℃為最佳氮去除溫度,NO2--N、TN的降解率分別達到99.95%和84.64%。當溫度低于27 ℃或高于37 ℃時,NO2--N、TN的降解率下降。因此,選擇培養(yǎng)溫度為27 ℃進行后續(xù)試驗。
2.3.5 搖床轉(zhuǎn)速對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。搖床轉(zhuǎn)速主要影響培養(yǎng)過程的溶氧量。從圖7可見,搖床轉(zhuǎn)速在130~210 r/min時,菌株對TN的降解率無顯著影響(P>0.05),TN的降解率在81.75%~89.37%;轉(zhuǎn)速為150~210 r/min時,菌株對NO2--N的降解率也無顯著影響(P>0.05),NO2--N的降解率均超過99.90%;當搖床轉(zhuǎn)速為190 r/min時,NO2--N、TN的降解率均為最高,分別達99.98%和89.37%。
2.3.6 氮源種類對菌株HD-NAH脫氮特性的影響。
由表2可知,在以NH4+-N為唯一氮源時,NH4+-N的去除率達到87.68%,平均降解速率為4.45 mg/(L·h),TN去除率為70.43%,且NO3--N殘留濃度僅2.90 mg/L。以NO3--N為唯一氮源時,NO3--N的去除率為74.50%,平均除氮速率為3.78 mg/(L·h),TN去除率為69.59%,且NO2--N積累較少,僅5.23 mg/L。以NO2--N為唯一氮源時,NO2--N的去除率為99.84%,平均除氮速率為5.06 mg/(L·h),TN去除率為91.60%,且NO2--N殘留濃度為1.10 mg/L。以NH4+-N+NO3--N為混合氮源,NH4+-N去除率為83.65%,平均除氮速率為2.12 mg/(L·h),NO3--N去除率為96.63%,平均除氮速率為2.45 mg/(L·h),TN去除率為88.45%;以
NH4+-N+NO2--N為混合氮源的條件下,NH4+-N去除率為83.21%,平均除氮速率為2.11 mg/(L·h),NO2--N去除率為96.34%,平均除氮速率為2.44 mg/(L·h),TN去除率為89.29%。以上結(jié)果表明,單一氮源時,菌株對NO2--N的去除速率和去除率最高,對NO3--N的去除速率和去除率最低。對TN的去除速率和去除率表現(xiàn)為NO2--N>NH4+-N+NO2--N>NH4+-N+NO3--N>NH4+-N>NO3--N。
3 討論
菌株HD-NAH以檸檬酸鈉為唯一碳源時具有較好的脫氮性能,而以碳酸鈉、丁二酸鈉、酒石酸鈉和蔗糖為碳源時,NO2--N和TN的降解率均很低,這與P.stutzeri HJ-7結(jié)果一致,該菌以檸檬酸鈉為唯一碳源時,30 h能去除水體中全部氨氮[16]。但與其他研究中的一些菌株有差異,如P.stutzeri YG-24在以蔗糖為唯一碳源進行反硝化過程中對NO2--N的去除效果最好[17],P.putida HJH1和Klebsiella oxytoca HJH2以甘油作為唯一碳源時,對NO2--N的降解率最高[18]??梢?,碳源種類對菌株的脫氮性能影響較大。
在C/N低于6時,菌株HD-NAH對NO2--N的降解率均很低,這是由于過低的碳源難以為細菌的生存提供足夠的能源,導(dǎo)致其生長緩慢;當C/N在6~18時,菌株除氮率隨C/N升高而上升,但隨C/N繼續(xù)增大除氮率反而下降,這是由于過高的C/N會抑制細菌的生長和氮的去除[19],這與P.chengduensis ADM 2-2 C/N為5~11、P.chloritidismutans ADM 8-1 C/N為5~13[20]的除氮趨勢一致??梢姡珻/N的高低對菌株的除氮性能影響很大。
酸性環(huán)境抑制菌株生長,可能是酸性環(huán)境會抑制該菌株功能酶活性和細菌代謝活性,這與Acinetobacter sp.GNR等菌株一致[21]。但菌株HD-NAH在pH為7~9時對NO2--N、TN的去除率分別超過95.0%和79.0%,說明中性和堿性環(huán)境有利于該菌株的生長和反硝化作用,即使在pH為10的強堿性環(huán)境下,菌株對NO2--N、TN的降解率也能達到93.01%和70.38%,表明該菌株耐堿能力強。
菌株HD-NAH在溫度為27 ℃時的氮降解率最佳,且在27~37 ℃均能高效去除NO2--N、TN,對溫度的適應(yīng)范圍較廣,這與諸多傳統(tǒng)硝化-反硝化微生物的最適溫度在25~37 ℃一致[22]。
轉(zhuǎn)速主要影響發(fā)酵過程中的溶氧量,溶氧量的高低會影響菌株的生長。該研究菌株HD-NAH在5個轉(zhuǎn)速條件下除氮率均較高,說明菌株HD-NAH能在較廣的溶氧量范圍進行脫氮,這比一些除氮微生物只能耐受較低的氧濃度有明顯優(yōu)勢[23]。
氮源種類測試結(jié)果表明,菌株HD-NAH有較好的異養(yǎng)硝化-好氧反硝化能力,當環(huán)境中
NH4+-N濃度較高時(以NH4+-N為唯一氮源),存在一定NO2--N積累,但NO3--N積累較少,當環(huán)境中NH4+-N濃度較低時(以NO3--N或NO2--N為唯一氮源),NO3--N具有一定積累,且NO2--N積累較少,這說明該菌在水中NH4+-N濃度較高時,pH偏堿性,易形成亞硝酸型硝化,在相反的條件下,則形成硝酸型硝化的傾向很大,存在一定短程異養(yǎng)硝化-好氧反硝化過程。
4 結(jié)論
從養(yǎng)殖池塘底泥樣品中篩選到1株神戶腸桿菌(Enterobacter kobei)HD-NAH,該菌具有較高NO2--N、TN降解率。菌株HD-NAH去除NO2--N的適宜條件為:碳源為檸檬酸鈉,C/N為18,初始pH為7,溫度為27 ℃,轉(zhuǎn)速為190 r/min,24 h內(nèi)對NO2--N、TN降解率分別為99.98%和89.37%。不同氮源條件下,菌株HD-NAH在低NH4+-N濃度中易形成硝酸型硝化,在高NH4+-N濃度中存在一定短程異養(yǎng)硝化-好氧反硝化過程。該研究將獲得的神戶腸桿菌用于水體生物脫氮,至于其在含氮廢水中的實際應(yīng)用有待進一步研究。
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