天然大分子對花色苷的負載研究進展

鄭杰，楊敏,2*，王楠，甄晨波

1(甘肅農業(yè)大學 理學院，甘肅 蘭州，730070)2(甘肅農業(yè)大學農業(yè)資源化學與應用研究所，甘肅 蘭州，730070)

花色苷是自然界中廣泛存在的一種類黃酮化合物，是構成植物果實、花瓣、莖、葉等組織顏色的主要水溶性色素。自然條件下，常見的花色苷大多都以糖苷的形式存在于植物體內，其母核為2-苯基苯并吡喃，糖配體為一分子或者多分子的鼠李糖、葡萄糖、蕓香糖、半乳糖、木糖等。所以，花色苷的種類因母核上的基團不同而不同(表1)。研究表明，自然界中天然存在的花色苷種類達600多種；食源植物中含量較高的花色苷有：矢車菊素(cyanindin，Cy)、天竺葵素(pelargonidin，Pg)、錦葵色素(malvidin，Mv)、矮牽?；ㄉ?petunidin，Pt)、飛燕草色素(delphinidin，Dp)以及芍藥色素(peonidin，Pn)[1]。目前，花色苷因其多種營養(yǎng)功能特性被廣泛關注。研究發(fā)現(xiàn)，花色苷具有優(yōu)異的抗氧化活性，其消除游離自由基的能力是L-抗壞血酸的20倍，是維生素E的50倍，可保護人體免受自由基的傷害，有效延緩人體衰老[2]。另外，花色苷還具有降低血糖[3]、抑制脂質過氧化[4]、保護視力[5]、預防腫瘤[6]、抗心血管疾病[7]等多種生理活性?？梢姡鳛橐环N安全、可食用且有一定保健功能的天然色素，花色苷在醫(yī)藥、食品、化妝品、保健品等行業(yè)中具有廣泛的應用前景。

花色苷因含有多個活潑的酚羥基，結構穩(wěn)定性較差，易出現(xiàn)分子重排和降解，所以在食品加工過程中易損失，如在熱處理、pH變化、氧化劑、金屬離子、酶等作用下降解，從而失去活性。此外，花色苷因結構特性，還表現(xiàn)出脂溶性差、親水性強的性質，使其在親脂體系中的應用涉及較少。在體內消化過程中，由于脂溶性差，不易透過磷脂雙分子層被細胞吸收，使得花色苷的生物利用度也不高[8]。以上諸多因素都限制了花色苷在醫(yī)藥、食品等領域的使用。由此可見，提升花色苷結構穩(wěn)定性，有利于其更好地發(fā)揮生理活性。

表1 花色苷基本結構與常見種類Table 1 Basic structure and common species of anthocyanin

為改善花色苷結構穩(wěn)定性，眾多研究者通過適宜的方法對花色苷分子進行修飾，力爭在不破壞其生理活性的條件下提高穩(wěn)定性。迄今為止，花色苷結構穩(wěn)定性提升方法主要分為兩大類，結構修飾和大分子負載。大分子負載是基于花色苷和大分子之間以氫鍵、疏水作用、靜電作用等次級鍵結合，即不會影響花色苷天然結構，又不會產生新的可能具有潛在危害的物質，因而成為花色苷穩(wěn)定性提升的主要手段和研究熱點?；谝陨涎芯楷F(xiàn)狀，本文系統(tǒng)綜述天然大分子對花色苷負載的相關研究進展，對負載體系及其構建技術進行了歸納，以期為花色苷穩(wěn)定性以及生物利用度的提升提供參考依據(jù)。

1 天然大分子對花色苷的負載機制

天然大分子是源于植物、動物及微生物的高分子類物質，是自然界廣泛存在的一種可再生資源。近年來，被廣泛應用于花色苷負載的天然大分子主要有蛋白質、糖類、脂類等。以天然大分子為基質，通過適宜的技術構建出不同類型的載體，可實現(xiàn)花色苷的高效負載。但在各類體系中，不同大分子基質與花色苷的相互作用機理不同。

1.1 蛋白質對花色苷的負載作用

蛋白質是一種具有高級空間結構的聚集體，其多肽鏈中含有多種氨基酸。蛋白質來源十分廣泛，價格低廉，不僅具有食用安全性和高的生物相容性，而且營養(yǎng)價值極高。蛋白質上的氨基酸殘基可通過疏水、靜電、范德華力、氫鍵等作用形成多種作用位點，與花色苷分子不同基團非共價結合，從而表現(xiàn)出較強的親和性，其結合機理如圖1所示。蛋白質氨基酸殘基上的羧基、氨基可與花色苷分子上的羥基形成氫鍵，酪氨酸、苯丙氨酸等殘基上的苯環(huán)可與花色苷分子苯環(huán)形成疏水作用，而花色苷母核2-苯基苯并吡喃陽離子可與氨基酸殘基上的羧基等負電基團以靜電作用力結合。另外，各基團如果足夠靠近，均可形成范德華力，進而穩(wěn)定花色苷結構[9-10]。而且，蛋白質空間結構具有一定柔性，花色苷的加入使其結構發(fā)生變化，從而將花色苷分子固定在蛋白質特定的空間結構內，起到保護花色苷結構穩(wěn)定而免受外界環(huán)境及加工條件影響的作用，還可能改善其生理活性[11-12]。

另外，蛋白質含有人體所需的多種氨基酸，在體內易被吸收，具有較高的營養(yǎng)價值，在保護花色苷結構穩(wěn)定的同時還能補充機體所需氨基酸。由此可見，蛋白質因其氨基酸種類的多元化和廣泛的來源、較高的營養(yǎng)價值以及低廉的成本，成為花色苷載體首選基質之一。

圖1 蛋白質與花色苷的作用機理Fig.1 Interaction mechanisms between protein and anthocyanin 注：多肽鏈中的R表示氨基酸的不同側鏈基團

1.1.1 蛋白質與花色苷的作用機理

為增強地下水管理相關重點制度的剛性和約束力，確保重點制度的落實，應當結合地下水管理專門法規(guī)的制定，完善行政處罰措施。比如，增加鑿井施工單位在鑿井施工過程中主要違法行為的處罰；明確地下水源熱泵系統(tǒng)建設中破壞地下水行為的處罰的規(guī)定；完善不封閉自備井應承擔的法律責任等，增強制度的操作性及強制性。

(1)植物源蛋白

用于負載花色苷的植物蛋白主要有大豆分離蛋白(Soy protein isolate,SPI)、小麥蛋白、花生分離蛋白、黑豆蛋白等。不同來源的蛋白質與不同花色苷分子的作用機理具有差異。研究表明，麥醇溶蛋白與矢車菊素-3-O-葡萄糖苷以范德華力、氫鍵相結合，其結合位點更接近色氨酸殘基附近，而麥谷蛋白與矢車菊素-3-O-葡萄糖苷以疏水作用為主要結合力，其結合位點更接近酪氨酸殘基附近；二者均形成了物質的量比約為1∶1的靜態(tài)復合產物[9]。大豆分離蛋白與黑米花青素通過疏水作用結合，且結合位點數(shù)接近1[13]。SPI中提取的11S、7S球蛋白與矢車菊素-3-葡萄糖苷均以疏水作用結合[10]。由此可見，不同來源蛋白質與同一花色苷分子的結合作用可能不同，其原因在于不同蛋白質具有不同的空間結構?；ㄉ辗肿又饕Y合于暴露在多肽鏈外側且對花色苷具有較高親和力的殘基上，這就要求該殘基所處位置位阻小，結構柔韌性強，可直接負載花色苷或通過結構改變使花色苷高效負載。由于花色苷母核空間結構較大，因此花色苷分子更易于以疏水作用結合于蛋白質疏水區(qū)域。

(2)動物源蛋白

用于負載花色苷的動物源蛋白質主要為乳源蛋白質，如牛血清白蛋白、酪蛋白、乳清蛋白等。雖然乳蛋白來源相同，但因其結構各具特點，與花色苷的結合作用存在差異，如表2所示。牛血清白蛋白與錦葵色素-3-半乳糖苷的主要作用力為靜電引力[14]。α-酪蛋白與氯化錦葵色素-3-O-葡萄糖苷結合作用以范德華力和氫鍵為主，結合過程放出熱量且自發(fā)進行；而β-酪蛋白與氯化錦葵色素-3-O-葡萄糖苷以疏水作用結合，結合過程自發(fā)進行但吸收熱量[11]。乳清蛋白、酪蛋白混合物可通過疏水作用力和氫鍵與紫薯花色苷相互作用形成復合物，并且酪蛋白與紫薯花色苷的親和力較乳清蛋白強[15]。

綜上所述，動物源蛋白質與花色苷的結合作用因蛋白質結構不同而具有差異。雖然結合作用不同，但是不同來源蛋白質對花色苷的親和力均較高，結合常數(shù)多大于103。蛋白質與花色苷的結合作用強弱不僅與蛋白質結構有關，而且與花色苷結構有關。如，牛血清白蛋白與藍莓花色苷通過靜電作用結合，而其與黑米花色苷的結合作用為范德華力和氫鍵。即使結合作用存在差異，但各類蛋白質與各類花色苷分子間的結合機理主要為靜態(tài)結合，即形成穩(wěn)定的非共價復合物。

表2 蛋白質負載花色苷機理及其結合常數(shù)Table 2 Loading mechanism and binding constants between protein and anthocyanin

1.1.2 蛋白質對花色苷穩(wěn)定性的影響

由于蛋白質與花色苷分子間形成非共價作用，可保護花色苷結構穩(wěn)定，緩解其在不利環(huán)境下的降解。例如，氯化錦葵色素-3-O-葡萄糖苷與α-酪蛋白、β-酪蛋白結合后，熱穩(wěn)定性、氧化穩(wěn)定性以及光穩(wěn)定性顯著提升[11]。牛血清白蛋白負載的藍莓花色苷分別在光照、蔗糖+光照、維生素C+光照的條件下都表現(xiàn)出較好的穩(wěn)定性[14]。蛋白質對花色苷的結合作用、結合位點不同，結合后蛋白質構象變化不同，因此對花色苷分子穩(wěn)定性提升效果不同。如，蠶蛹蛋白負載后的矢車菊素-3-O-葡萄糖苷，在熱處理條件下的降解速率常數(shù)由原來單體花色苷的0.010 7減小為0.002 7，半衰期由64.81 min提高到261.99 min[17]。WU等[18]研究發(fā)現(xiàn)，以酵母甘露蛋白作為載體對花色苷進行負載后，在80 ℃以及126 ℃的條件下加熱30 min，復合物中花色苷的顏色穩(wěn)定性相較于單體花色苷提升了4～5倍。

1.1.3 蛋白質對花色苷生物活性的影響

花色苷分子中的部分基團與蛋白質特定氨基酸殘基非共價結合，不僅影響其結構穩(wěn)定性，而且使其生物活性受到影響。經(jīng)蛋白質負載后，花色苷生物活性變化程度與載體蛋白質來源、結合作用、蛋白質構象變化程度等因素有關。研究表明，以SPI作為載體對葡萄籽原花青素(grape seed procyanidins,GSP)進行負載，發(fā)現(xiàn)在貯藏初期，游離GSP溶液的抗氧化性強于SPI-GSP復合物溶液，且包埋率越高，復合物抗氧化活性越弱；貯藏5 d后，游離GSP溶液的抗氧化活性顯著降低，而SPI-GSP復合物抗氧化活性顯著高于游離GSP溶液，其本質在于SPI負載抑制了GSP的降解[19]。β-乳球蛋白與黑米花色苷形成的復合物對DPPH自由基清除能力相較于未負載黑米花色苷提高了13.16%[20]。

1.2 多糖對花色苷的負載作用

多糖是由單糖通過糖苷鍵連接形成的一類天然大分子物質，因具有優(yōu)越的功能特性、制備工藝簡單、價格低廉等優(yōu)點被廣泛用于食品工業(yè)。多糖結構中存在的羥基可與花色苷分子通過氫鍵作用結合，殘基上連接的羧基離子可與花色苷烊鹽通過靜電相互作用結合。此外，多糖還可與花色苷母核結構中的苯環(huán)以疏水作用或π-π堆積結合，且二者間產生的氫鍵可以更好地穩(wěn)定該堆積作用[21-22]。在不同pH條件下，多糖基質的凈電荷以及電荷分布不同，且花色苷分子也呈現(xiàn)不同的電性，例如：在強酸性環(huán)境中，花色苷主要以帶正電荷的烊鹽離子形式存在，而在弱酸性環(huán)境中負電荷形式則更為普遍。因此，調節(jié)多糖基質的pH可以實現(xiàn)與花色苷分子通過不同作用力結合，從而實現(xiàn)以多糖作為基質對花色苷分子的有效負載。

1.2.1 多糖與花色苷的作用機理

多糖作為天然大分子的一種，也被廣泛應用于花色苷的負載。多糖對花色苷的負載能力受到其結構和pH的影響。由表3可以看出，不同pH下，多糖所帶凈電荷不同，其結構不同，對花色苷的結合機理不同。研究發(fā)現(xiàn)，藍莓果膠對花色苷的結合率與pH有關，當pH為3.0時，花色苷的負載率最高，pH為4.0時最低，且當pH從4.0變化到更強酸性時，藍莓果膠與花色苷之間的靜電相互作用減小、疏水作用增加[23]。藍莓果膠與花色苷的結合機制主要為果膠游離羧基與花色苷烊鹽離子間的相互作用以及花色苷的堆積效應[21]。崔靈敏等[24]還通過等溫滴定量熱反應證明了芒果果膠與蓮原花青素的結合機制主要為氫鍵驅動的放熱反應。綜上所述，多糖對花色苷的負載機理和蛋白質類似，都依賴于大分子鏈上的活性基團，而這些基團的帶電性與pH有關。因此，可通過調控體系pH達到調控多糖與花色苷的結合作用。

表3 多糖負載花色苷機理Table 3 Loading mechanism of polysaccharide for anthocyanin

1.2.2 多糖對花色苷穩(wěn)定性的影響

經(jīng)多糖負載后，花色苷非共價結合于多糖鏈上，再經(jīng)過其他大分子的保護或適宜的構建，形成包覆物，將花色苷包裹在大分子內部，從而顯著提升花色苷穩(wěn)定性。因此，不同性質多糖的復配物是常用的花色苷載體。麥日艷谷·亞生等[27]研究了果膠、海藻酸鈉、殼聚糖、黃原膠以及羧甲基纖維素鈉對黑莓果汁中花色苷穩(wěn)定性的影響，發(fā)現(xiàn)低濃度(0.05%～0.1%)的羧甲基纖維素鈉或者黃原膠負載提高了黑莓果汁中花色苷的穩(wěn)定性，且當加入載體的濃度低于0.1%時，可有效地減緩花色苷的降解。在低pH條件下，硫酸軟骨素、κ-卡拉膠復合凝膠體系對藍莓花色苷具有保護作用[22]。

1.2.3 多糖對花色苷生物活性的影響

多糖不但可以有效提升花色苷穩(wěn)定性，對其生物活性也會產生一定影響。另外，大多數(shù)天然多糖本身具有一定的抑菌、抗氧化等功效，其與花色苷的復合物表現(xiàn)出比單一物質優(yōu)異的生物活性。有研究表明，果膠-原花青素復合物對金黃色葡萄球菌有顯著的抑制作用，且抑制作用強于游離原花青素和純果膠[24]。LIN等[21]還證明了花色苷與藍莓果膠復合后，其結腸微生物菌群發(fā)酵的生物利用度提高，更加有利于促進結腸健康。

1.3 脂質對花色苷的負載作用

1.3.1 脂質對花色苷的負載能力

脂類物質是由脂肪酸和醇組成的天然大分子及其衍生物的總稱，是人體需要的重要營養(yǎng)素之一。脂類物質經(jīng)過適宜的構建后，對花色苷的負載不僅可以提高花色苷穩(wěn)定性，而且還可在其疏水空腔中同時結合疏水性物質，實現(xiàn)親水分子和疏水分子的同時負載，進一步提升目標分子的穩(wěn)定性及生理活性。研究證明，原花青素-維生素E復合磷脂前體脂質體的協(xié)同抗氧化性顯著，且復合物穩(wěn)定性良好，對原花青素的包封率為86%[28]。膽固醇、大豆卵磷脂復合脂質體對紫甘薯花青素的包埋率為76.61%[29]。負載姜黃素的磷脂脂質體同時負載原花青素，包封率為66.96%[30]。

1.3.2 脂質對花色苷穩(wěn)定性的影響

負載花色苷常用的脂質有卵磷脂、膽固醇等，研究者通常將脂質構建成脂質體，實現(xiàn)對花色苷的負載。脂質體對花色苷的穩(wěn)定性影響顯著，納米脂質體中的原花青素在25 ℃黑暗條件下保存16 d的保留率為85.60%[31]。此外，納米脂質體的包封有效提高了原花青素的熱、pH、光照穩(wěn)定性。王子敏等[28]將制備的原花青素-維生素E復合前體脂質體進行了穩(wěn)定性實驗，研究發(fā)現(xiàn)，將50 mL原花青素-維生素E復合前體脂質體與質量濃度為1 g/L的原花青素溶液在室溫條件下保存35 d、60 d后，復合物中原花青素保留率分別比未負載原花青素高30.3%、15.5%。常影等[32]還發(fā)現(xiàn)，經(jīng)過殼聚糖修飾的納米脂質體可有效減緩花色苷在金屬離子、熱、光等條件下的降解。

1.3.3 脂質對花色苷生物活性的影響

脂質體對花色苷生物活性也具有一定的影響。SUN等[33]研究表明，脂質體花色苷的DPPH自由基清除能力高于單一未負載花色苷，且在相同濃度下，脂質體花色苷的細胞抗氧化活性顯著高于未負載花色苷。胡興佳等[30]研究發(fā)現(xiàn)，姜黃素-原花青素復合磷脂脂質體的抗氧化性顯著強于未負載姜黃素和原花青素抗氧化性的物理疊加。

2 天然大分子負載體系及其構建技術

選擇適宜的大分子基質，經(jīng)過物理或化學的方法使花色苷與大分子基質相互作用，形成復合物，進而通過干燥、凝膠化、微膠囊化、乳化等手段形成終產物，在保護花色苷自身穩(wěn)定性的同時還可對其進行緩釋，提高生物利用度。負載體系的基質、構建技術、載體類型是影響負載率的主要因素。常見的負載體系有乳液、微膠囊、脂質體、凝膠等。不同體系構建方法不同，負載能力也有所不同(表4)。

表4 不同負載體系構建工藝Table 4 Construction process of different loading systems

2.1 乳液

乳液是指通過機械攪拌將1種或者多種液體分散于另一種與其不相溶的液體中，從而形成具有一定穩(wěn)定性、抗聚集、抗絮凝的分散體系。單一乳液按其分散形式可分為水包油(O/W)乳液、油包水(W/O)乳液。以天然大分子為基質對花色苷負載后，在其乳化過程中天然大分子不但可以形成穩(wěn)定的乳液，而且可以通過靜電、疏水、范德華力、氫鍵等作用力與花色苷結合。但乳液在受到物理、化學作用后會發(fā)生破乳，出現(xiàn)分層現(xiàn)象。因此，選擇適宜的兩親性聚合物與表面活性劑是乳液穩(wěn)定的關鍵。在乳液技術中常以表面活性高、乳化性能好的蛋白質基質作為首選(例如：酪蛋白、大豆蛋白等)，表面活性較差的則需要添加表面活性劑輔助乳化。

近年來，眾多研究者將乳液體系應用于花色苷分子的負載，用于提高花色苷的穩(wěn)定性。SPI-花青素復合乳液表現(xiàn)出較好的穩(wěn)定性和抗氧化性[34]。與普通乳液相比，Pickering乳液的穩(wěn)定性更高，更有利于保護花色苷。JU等[35]以SPI與花色苷為原料制備了穩(wěn)定性和抗氧化性俱佳的SPI-ACN復合Pickering乳液，進一步提高了花色苷的穩(wěn)定性。有學者在單一乳液的基礎上制備了多重乳液，即將油包水(W1/O)初級乳液進一步分散于連續(xù)水相中，獲得了W1/O/W2型多重乳液，該乳液對花色苷分子包埋率高達(82.99±2.38)%，且表現(xiàn)出較好的穩(wěn)定性，證實了多重乳液在負載能力方面的優(yōu)勢[36]。

2.2 微膠囊

微膠囊技術是以一定的壁材，將固態(tài)、液態(tài)、氣態(tài)等物質包裹在核殼結構內部，形成微米級別的膠囊型物質的技術(圖2)。壁材外殼可以有效防止小分子與外界不利因素的接觸，從而保證其穩(wěn)定性，同時也可通過壁壘作用起到對芯材的緩釋作用，降低芯材毒性，提高生物利用度。微膠囊技術因制備過程簡單、包埋率高、成本低的優(yōu)勢受到研究者的青睞。天然大分子基質對花色苷負載后，通過不同的干燥技術制備形成微膠囊。多糖基質因其成本低、來源廣等特點被廣泛用作微膠囊壁材。對于壁材的選擇可以是單一多糖，例如以硫酸軟骨素作為壁材，通過冷凍干燥技術獲得的微膠囊對藍莓花色苷的包埋率為73.2%[37]；也可以是多種多糖基質聯(lián)合使用，例如明膠-阿拉伯膠和殼聚糖-羧甲基纖維素壁材，其對黑米花青素的包埋率高達84.9%～94.7%[38]。以蔗糖、阿拉伯膠、變性淀粉為壁材制備的微膠囊對原花青素的包埋效率可達90.58%[39]。可見，微膠囊對花色苷的包埋效果較好，而多種壁材聯(lián)合使用有利于提高包埋率。

圖2 微膠囊結構示意圖Fig.2 Structure diagram of microcapsule

2.3 脂質體

脂質體是以膽固醇、磷脂等作為膜材料形成的一類類似生物膜結構的閉合型囊泡物質[40]，因其粒徑較小、易于吸收且具有一定靶向性等優(yōu)點，被廣泛應用于花色苷分子的負載。水溶性的花色苷分子被包埋于脂質體的內水相，不但可以保護花色苷分子免受外界不利因素的影響，并且可以有效彌補花色苷分子脂溶性差的缺點。脂質體的制備工藝主要有注入法、薄膜分散法、超聲波分散法、逆相蒸發(fā)法、冷凍干燥法等。上述制備方法各有優(yōu)缺點，其中逆相蒸發(fā)法制備的單層脂質體具有較大的水性空間，更適合對水溶性物質的包埋。在制備過程中，通常將多種方法聯(lián)合使用，以提高包埋率。胡博等通過逆相蒸發(fā)法將大豆卵磷脂、膽固醇與原花青素混合，制備了近似球狀的原花青素脂質體，其粒徑介于185 nm～1.29 μm，對原花青素的包埋率達(88.89±2.5)%[41]。SUN等[33]采用乙醇注射法與超聲法結合制備了花青素納米脂質體，花青素的包封率為(91.1±1.7)%。

2.4 凝膠

凝膠是指通過一定作用使膠體粒子或高分子相互連接形成一種具有空間網(wǎng)狀結構的軟固體分散體系[42](圖3)。該體系可以是水溶性體系，也可以是乳液體系，常用材料為天然大分子，具有穩(wěn)定性好、包封率高的特點。凝膠載體通常是將花色苷分子固定在凝膠網(wǎng)狀結構內部，因此，網(wǎng)絡結構越密集、網(wǎng)絡內部分子與花色苷分子作用力越強，對花色苷分子的負載能力和保護效果越明顯。凝膠化過程中可采用單一天然大分子基質，也可采用復合基質，通過基質間相互作用產生更加致密的網(wǎng)絡結構，形成穩(wěn)定性高的凝膠。常用凝膠基質為多糖和蛋白質。吳曉瓊等[43]以殼聚糖水凝膠為原料制備的多重乳液水凝膠球對原花青素的包封率為78.47%，在25 ℃避光保存下具有較好的穩(wěn)定性。鈣離子誘導下的海藻酸鈉與果膠復合凝膠對紫薯花色苷的包封率為1.10 mg/mL，并且凝膠的包封作用有效緩解了胃液對紫薯花色苷的降解[44]。

圖3 凝膠負載機理Fig.3 Mechanism of gel loading system

3 展望

花色苷因其天然的來源和功能的多樣性，受到消費者的青睞。然而，花色苷結構穩(wěn)定性差，易出現(xiàn)分子重排和降解，所以在加工過程中易損失。因此，提升花色苷穩(wěn)定性是擴大其應用范圍的前提。眾多研究表明，天然大分子基質經(jīng)過適宜的構建，可形成優(yōu)良的負載體系，以保護花色苷結構穩(wěn)定，有效避免花色苷因熱、氧化、光等因素引起的降解。另外，負載基質還可對花色苷起到控制性釋放作用，有效提升其生物利用率。

花色苷負載基質及負載體系多種多樣，不同基質和不同體系各有優(yōu)點。因此，基質的選擇、復合，以及負載體系的構建技術仍需不斷發(fā)展，且需綜合考慮工藝和原料成本，才能進一步推動產業(yè)化。另外，現(xiàn)有研究對負載體系的構建和性能評價均在實驗室環(huán)境中進行，其大規(guī)模生產時的包封率、產業(yè)化產品與實驗室產品的差異等并未得到系統(tǒng)而深入的論證；花色苷與負載體系形成的復合物在實際加工過程中可能遭遇酸、熱和光等協(xié)同作用，其穩(wěn)定性評價仍需深入探討。而且，現(xiàn)有研究中負載體系對花色苷的緩釋效果及復合物活性評價多基于體外模擬胃腸環(huán)境，而生物體內環(huán)境復雜，消化系統(tǒng)包括多種物質和豐富的酶系、微生物，實際機體內負載體系對花色苷的控釋效果、花色苷的生物利用度與體外模擬差異較大。因此，有必要對負載產物開展相關動物實驗研究。

由此可見，花色苷負載及遞送研究仍需深入開展，并不斷創(chuàng)新，才能高效、科學、系統(tǒng)地指導相關成果產業(yè)化。