朱飛雪 程玉江 寇艷玲 齊陽陽 郭麗
摘要:為提高蝴蝶蘭葉片類原球莖的誘導(dǎo)率,以蝴蝶蘭雜交品種01、02、03、04、05、06、07和08增殖階段組培苗頂部幼嫩葉片為實驗材料,采用1/2MS為基本培養(yǎng)基,添加不同激素種類并設(shè)置不同濃度梯度,以探討6-芐基腺嘌呤(6-BA)、腺嘌呤(Ad)、萘乙酸( NAA)、噻苯?。═DZ)及其組合對蝴蝶蘭葉片類原球莖誘導(dǎo)的影響。結(jié)果表明:單獨使用6-BA類原球莖誘導(dǎo)率較低,TDZ的刺激作用強于6-BA;細胞分裂素和生長素的配合使用效果較好,且不同品種所需激素配比具有差異。其中,01、07品種最佳的誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2MS+TD20.5mg.L-1,誘導(dǎo)率分別為75.3%、82%; 02品種最佳的誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2MS+TD20.5mg.L-1'+NAAO.1mg.L-1,其誘導(dǎo)率為24%; 04、05、08品種最佳的培養(yǎng)基為1/2MS+TD22mg.L-1+NAAO.1mg.L-1,誘導(dǎo)率分別為75.7%、60.7%、73.3%;03、06品種最佳的培養(yǎng)基為1/2MS+6-BA5mg.L一1+NAAlmg.L一1+Ad3mg.L一1,誘導(dǎo)率分別為440/、50.7%。
關(guān)鍵詞:蝴蝶蘭;激素;葉片;類原球莖;誘導(dǎo)率
蝴蝶蘭是單子葉植物綱天門冬目蘭科蝴蝶蘭屬多年生附生植物,主要分布在泰國、菲律賓、馬來西亞、印度尼西亞及中國臺灣等地。其花形奇特,花姿高雅,色澤艷麗,花期持久,有“蘭中皇后”的美譽[1],在國內(nèi)外花卉市場中,蝴蝶蘭因其花大色艷備受歡迎。因此,蝴蝶蘭已成為蘭科中栽培最廣泛、產(chǎn)業(yè)化技術(shù)最成熟和最受歡迎的花卉之一,具有廣闊的市場前景[2],隨著人們欣賞水平的提高,人們對花型、花色提出了更高的要求,這就要求蝴蝶蘭育種家能在短時間內(nèi)選育出符合市場需求的新品種[3]。
蝴蝶蘭多以雜交育種為主,但后代花色變異過大,育種周期又過長[4];而轉(zhuǎn)基因育種目標性強[5],育種周期短[6],已開始在蝴蝶蘭新品種選育中廣泛應(yīng)用[7-8]。在轉(zhuǎn)基因育種中合適目標基因選擇、高效遺傳轉(zhuǎn)化體系是獲得蝴蝶蘭轉(zhuǎn)基因植物的前提條件[9]。蘭科轉(zhuǎn)基因植物成功的關(guān)鍵在于促進細胞組織再生為植株。研究發(fā)現(xiàn),由蝴蝶蘭種子[10]、葉片[11]、花梗、腋芽[12]甚至是根部誘導(dǎo)而得到的球形細胞,類似于幼胚發(fā)育成的體細胞——類原球莖,在合適的條件下可以再生為完整的植株。因此,在蝴蝶蘭轉(zhuǎn)基因的研究當中,類原球莖最常被選為受體材料。而原球莖的誘導(dǎo)率是決定轉(zhuǎn)基因成功的關(guān)鍵,很多學者選擇利用蝴蝶蘭葉片誘導(dǎo)出類原球莖。黃磊等[13]、馬生健等[14]、喬永旭等[15]利用蝴蝶蘭葉片來誘導(dǎo)類原球莖,但是類原球莖的誘導(dǎo)率均不高??梢?,類原球莖誘導(dǎo)的難度仍然很大,建立一個高效、穩(wěn)定的類原球莖誘導(dǎo)體系是亟需的,也在蝴蝶蘭組培快繁體系中始終占有重要地位[16]。為此,本實驗以蝴蝶蘭雜交品種01、02、03、04、05、06、07、08增殖階段組培苗頂部幼嫩葉片為實驗材料,以1/2MS為基本培養(yǎng)基,添加不同種類的激素,以期探究適合蝴蝶蘭葉片誘導(dǎo)原球莖的激素種類、濃度以及配比組合,為蝴蝶蘭原球莖誘導(dǎo)高頻再生體系的建立及轉(zhuǎn)基因育種提供依據(jù)。
一、材料與方法
(一)實驗材料
實驗材料為蝴蝶蘭8個栽培品種,代號分別為01(黃花紅心)、02(小黃花)、03(黃花)、04(小白花)、05(白底紅點)、06(四季紅)、07(紅玫瑰)、08(黑花)共八個品種。
(二)實驗方法
切取幼嫩葉片基部0.5 - 1.0cm,正面朝上,接種于以1/2 MS為基本培養(yǎng)基,添加不同濃度的6- BA、TDZ、NAA、Ad,共15種處理,見表1。并附加20%的椰子汁,瓊脂5.0g.L-l,糖20g.L-,pH值5.8。每個處理設(shè)三個重復(fù),每個重復(fù)接種50個葉片。培養(yǎng)溫度26+1℃,光照強度500 - 600lx散射光,光照時間16h/d,培養(yǎng)50d后統(tǒng)計結(jié)果。
(三)數(shù)據(jù)分析
培養(yǎng)50d后,統(tǒng)計每瓶葉片誘導(dǎo)出的類原球莖、葉片發(fā)黃死亡的數(shù)量,計算出其類原球莖誘導(dǎo)率以及葉片黃化死亡率(文中簡稱黃死率)。誘導(dǎo)率(%)及黃化死亡率(%)的計算公式如下。 誘導(dǎo)率(%)=類原球莖數(shù)/外植體數(shù)X100% 黃化死亡率(%)=黃化死亡數(shù)/外植體數(shù)X100% 實驗統(tǒng)計數(shù)據(jù)采用Excel和SPSS16.0軟件處理分析。 二、結(jié)果與分析 (一)不同濃度6-BA對葉片類原球莖誘導(dǎo)的影響 不同濃度6-BA處理下,不同品種的葉片類原球莖的誘導(dǎo)率不同,結(jié)果見表2。由表2可以看出,01-07品種隨著6-BA濃度的增加,類原球莖的誘導(dǎo)率也逐漸增加。8個品種中,01、07品種在6-BA濃度為8mg.L-1時,類原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為35.3%和30.0%。尤其07號品種,經(jīng)方差分析,其誘導(dǎo)率顯著高于其它兩個處理。02、04、08品種的誘導(dǎo)率最低,在6-BA濃度(mg.L-1)為3、5時,誘導(dǎo)率均為o;當升至8mg.L-時,02、04品種的誘導(dǎo)率分別增加至11%和6%,08品種的誘導(dǎo)率仍然是0。從實驗結(jié)果可以得出,高濃度的6-BA有利于誘導(dǎo)出葉片原球莖。但是,從表2中可以看出,01品種在3個濃度上較高的原球莖誘導(dǎo)率為35.3%、30.0%、26.0%,其它幾個品種則更低,均不超過20.0%。表明單獨使用6-BA誘導(dǎo)出的葉片原球莖數(shù)量較少。
由表2還能看出,除了6-BA濃度會影響葉片原球莖的誘導(dǎo)之外,品種之間的差異也較大,尤其是08品種,即使6-BA濃度增加至8mg.L-1,其誘導(dǎo)率仍然是0。
(二)6-BA與NAA組合對葉片原球莖誘導(dǎo)的影響
在添加3、5、8 (mg.1-1) 6-BA的基礎(chǔ)上,添加Img.L-1的NAA處理下的葉片原球莖的誘導(dǎo)率不同,結(jié)果見表3。
從表3可以看出,01、03、08品種,在NAA濃度為Img.L-1時,其葉片原球莖誘導(dǎo)率隨著6-BA濃度的增加而增加,最高的誘導(dǎo)率為01號品種,當6-BA濃度為8mg.L-1時,其誘導(dǎo)率為46.0%;其次為03品種,其最高誘導(dǎo)率為36.0%。04、05、07品種,在3個處理上的葉片原球莖誘導(dǎo)率都很低,尤其是04、05品種,其誘導(dǎo)率均為0。
由此可見,除了6-BA、NAA會影響葉片原球莖的誘導(dǎo)之外,品種之間的差異對誘導(dǎo)率影響也較大,不同品種,葉片原球莖誘導(dǎo)所需激素種類及配比也不同,這和第一個實驗結(jié)果一致。
(三)6-BA、NAA和Ad組合對葉片原球莖誘導(dǎo)的影響
6-BA與NAA、Ad配合使用時,蝴蝶蘭葉片類原球莖的誘導(dǎo)率不同,見圖l。由圖1可以看出,03、04、05、06、07、08品種,三種激素協(xié)同作用較明顯,其中03、05、06品種在6-BA5mg.L-1+NAAlmg.L-1+Ad 3mg.L“時,類原球莖誘導(dǎo)率分別由使用6-BA和NAA組合的36.0%、3.3%、26.7%提高到44.0%,13.0%、50.7%;04、07、08品種,其誘導(dǎo)率隨著6-BA濃度增加而逐漸增加;01品種三者協(xié)同作用不明顯,隨著6-BA濃度的增加,其誘導(dǎo)率逐漸降低,且誘導(dǎo)率低于其他處理;02品種三者協(xié)同作用較差,在三個處理上,其誘導(dǎo)率均為0。
(四)TDZ、NAA對葉片誘導(dǎo)的影響
TDZ對蝴蝶蘭葉片類原球莖誘導(dǎo)具有顯著作用,其與NAA的配合使用表現(xiàn)較強的協(xié)同效應(yīng),結(jié)果見表4。除01、07品種在單獨使用TDZ 0.5 mg.L-1時,達到最大誘導(dǎo)率75.3%、82.0%外,其他品種均在TDZ、NAA配合使用時有最大誘導(dǎo)率。經(jīng)方差分析,07品種在單獨使用TDZ 0.5 mg.L-l時,其葉片類原球莖誘導(dǎo)率顯著高于其他幾個處理。04、05、08品種,在TDZ2 mg.L-l+NAA 0.1mg.L-1時,類原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為76.7%、60.7%、72.7%,方差分析表明,這三個品種在這個處理上的葉片類原球莖誘導(dǎo)率顯著高于其他幾個處理。02、03、06品種在TDZ 0.5 mg.L-l+NAA 0.1mg.L-1時類原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為24.0%、28.0%、26.0%,從表4中可以看出,這三個品種在這6種培養(yǎng)基上,其誘導(dǎo)率均較低,從而說明除激素種類、濃度影響類原球莖誘導(dǎo)率外,品種之間的差異對其影響也較大。
實驗過程中觀察發(fā)現(xiàn),品種不同,葉片黃化死亡率不同(見表5)。由表5可以看出,在M11處理上,其葉片黃化死亡率最低,最高的為03品種,其黃化死亡率為17.0%,其他幾個品種均為0。由表5還可以看出,品種之間差異較大,01、02、06在幾個處理中其黃化死亡率均為0,03品種的黃化死亡率較高,其他幾個品種在不同處理上黃化死亡率不同。
在這6個處理中,從接種到結(jié)果統(tǒng)計觀察發(fā)現(xiàn),接種外植體的外觀表現(xiàn)無明顯差異,一般是接種1-2周后,葉片切口變黃或變黑,未見褐化;2-3周后,無明顯變化或個別葉片有黃化、褐化;3-4周后,黃化、褐化葉片增多,生成物出現(xiàn);4-6周,生成物數(shù)逐漸增多,褐化、黃化葉片也增多。50d后葉片誘導(dǎo)生成物明顯出現(xiàn)類原球莖。
三、討論
對不同植物種類而言,能否誘導(dǎo)類原球莖的發(fā)生,主要取決于植物自身基因型和誘導(dǎo)條件兩個方面。培養(yǎng)基種類、激素種類與配比、糖分比例及光照等都是需要考慮的誘導(dǎo)條件,其中,激素種類與配比對誘導(dǎo)效果影響最大。在蝴蝶蘭[17-18]、石斛蘭[19-20]、大花蕙蘭[21-22]和文心蘭[23-24]等蘭花類原球莖誘導(dǎo)過程中,細胞分裂素(6-BA、Ad或KT)與生長素(2,4-D、NAA、IBA)組合有不同誘導(dǎo)效果。
本實驗中使用6-BA、6-BA與NAA組合、6-BA與NAA和Ad組合誘導(dǎo)蝴蝶蘭葉片原球莖,單獨使用6-BA,在8個品種中,01-07號品種隨著濃度的增加,原球莖的誘導(dǎo)率也在增加,其中01、07品種在6-BA濃度為8mg.L-1時,類原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為35.3%和30.0%。02、04、08品種的誘導(dǎo)率最低,在6-BA濃度(mg.L-1)為3、5時,誘導(dǎo)率均為0;當6-BA濃度為8mg.L-l時,02、04品種的誘導(dǎo)率分別增加至11.0%和6.0%,08品種的誘導(dǎo)率仍然是0。從實驗結(jié)果可以得出,高濃度的6-BA有利于誘導(dǎo)出葉片類原球莖,這和喬永旭等[25]、張玉等[26]的研究結(jié)果一致。
TDZ因其極高的生物活性,被廣泛應(yīng)用于植物類原球莖的誘導(dǎo)[27],也被認為是在蘭科植物類原球莖誘導(dǎo)過程中最有效的激素,付雙彬等[28]在誘導(dǎo)虎頭蘭原球莖時,單獨加入3mg.L-1,在30d時即可使80%的組培苗誘導(dǎo)產(chǎn)生類原球莖,而在90d后則可使其達到100%。在本實驗中,單獨使用TDZ和使用TDZ與NAA組合兩種處理,實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),TDZ對蝴蝶蘭葉片誘導(dǎo)具有顯著作用,其與NAA的配合使用,表現(xiàn)較強的協(xié)同效應(yīng)。這與李娜等[29]的結(jié)果一致。除01、07品種在單獨使用TDZ 0.5 mg.L-1時,達到最大誘導(dǎo)率外,其誘導(dǎo)率分別為75.3%、82%,其他品種均在TDZ、NAA配合使用時有最大誘導(dǎo)率。其中04、05、08品種,在TD22 mg.L-l+NAA O.lmg.L-1時,原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為76.7%、60.7%、73.3%;02、03、06品種在TDZ 0.5mg.L-+NAA O.lmg.L-1時原球莖誘導(dǎo)率最高,分別為24.0%、28.0%、26.0%。品種不同,誘導(dǎo)率差異也較大,因此,除了激素種類、濃度會影響原球莖誘導(dǎo)率外,品種不同葉片誘導(dǎo)所需激素種類及配比也不同。
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作者簡介:朱飛雪(1979-),女,河南平頂山人,碩士,講師,研究方向:園林植物種質(zhì)資源與育種。
(責任編輯曹雯梅)