郝琴琴,任 靜,成俊麗,李鵬飛
(山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 生命科學(xué)學(xué)院,山西 太谷 030801)
miRNA是一類長(zhǎng)度為20~24 nt的小分子RNA,主要通過堿基互補(bǔ)配對(duì)方式識(shí)別靶基因mRNA,并根據(jù)其互補(bǔ)程度的不同指導(dǎo)沉默復(fù)合體降解靶基因mRNA或抑制其翻譯,進(jìn)而調(diào)控動(dòng)植物生理過程[1]。LEE等[2]首次在線蟲體內(nèi)發(fā)現(xiàn)lin-4能靶向結(jié)合目的mRNA的3'UTR區(qū),調(diào)控線蟲發(fā)育,確認(rèn)其為miRNA,隨后在不同物種中檢測(cè)出多種miRNA,并對(duì)其功能進(jìn)行研究。近年來(lái),大量研究表明,miRNA對(duì)卵泡發(fā)育和卵母細(xì)胞的成熟起著重要作用,ZHANG等[3]利用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)超排處理的羔羊和成年綿羊卵巢中差異表達(dá)miRNA的研究發(fā)現(xiàn),miR-377-3p在超排處理的羔羊卵巢中大量表達(dá),推測(cè)其可能影響卵母細(xì)胞生長(zhǎng);WANG等[4]研究發(fā)現(xiàn),miR-377可能通過與MMP-16相互作用影響卵細(xì)胞的生長(zhǎng)。而miR-377對(duì)牛卵泡發(fā)育的影響尚未見報(bào)道。
CART作為下丘腦分泌的一種神經(jīng)肽,是抑制卵泡優(yōu)勢(shì)化的重要因子[5]。通過生物信息學(xué)方法已明確bta-miR-377與CART存在靶向作用。而關(guān)于miRNA的表達(dá)鑒定方法多樣,其中最早利用Northern blot技術(shù)對(duì)miRNA的表達(dá)水平進(jìn)行鑒定[6-7],其原理是用探針對(duì)電泳分離的RNA樣品進(jìn)行雜交檢測(cè),主要克服miRNA表達(dá)量低且穩(wěn)定性差的問題,但該技術(shù)存在靈敏度低、所用樣品量大、耗時(shí)多且無(wú)法利用高通量對(duì)所得結(jié)果進(jìn)行檢測(cè)等缺點(diǎn)[8];微陣列是另一種分析miRNA表達(dá)的傳統(tǒng)方法[9],可進(jìn)行高通量分析,但存在耗時(shí)和靈敏度低的缺陷,使其應(yīng)用范圍受限;半定量RT-PCR技術(shù)檢測(cè)miRNA內(nèi)源性表達(dá)具有高效、便捷等優(yōu)點(diǎn),但由于miRNA條帶過短不易表達(dá)或受到電泳條件如電源電壓、電泳時(shí)間、核酸染料、凝膠濃度等多種因素的影響,試驗(yàn)中易出現(xiàn)無(wú)目的條帶、非特異性條帶多等情況,因此需要對(duì)試驗(yàn)條件進(jìn)行優(yōu)化[10]。
本研究采用莖環(huán)結(jié)構(gòu)法對(duì)bta-miR-377引物序列進(jìn)行特異性延長(zhǎng),利用半定量RT-PCR技術(shù)檢測(cè)牛下丘腦中bta-miR-377的表達(dá),通過比較不同凝膠濃度、電源電壓、時(shí)間下bta-miR-377條帶的分布情況,對(duì)電泳條件不斷進(jìn)行優(yōu)化,旨在分離鑒定bta-miR-377,為bta-miR-377在牛下丘腦組織中有內(nèi)源性表達(dá)提供依據(jù),并為進(jìn)一步研究其通過CART調(diào)控牛卵泡發(fā)育進(jìn)程奠定基礎(chǔ)。
供試材料選取文水縣肉牛屠宰場(chǎng)3頭年齡相近且健康的西門塔爾母牛,采集其下丘腦組織后置于液氮中保存。
主要試劑包括PCR擴(kuò)增試劑盒(北京康為世紀(jì)公司);Trizol(Invitrogen公司);miRNA cDNA莖環(huán)法第1鏈合成試劑盒(上海生工公司)。
1.2.1 引物設(shè)計(jì)與合成 從miRbase數(shù)據(jù)庫(kù)中獲得目的bta-miR-377成熟序列,利用莖環(huán)結(jié)構(gòu)法設(shè)計(jì)bta-miR-377反轉(zhuǎn)錄引物與PCR擴(kuò)增引物,得到3條引物序列,由上海生工公司合成,具體序列如表1所示。
表1 研究所用引物序列Tab.1 Sequences of primer s used in this study
1.2.2 總RNA提取與bta-miR-377反轉(zhuǎn)錄 利用Trizol法提取牛下丘腦組織中總RNA,核酸濃度檢測(cè)合格后進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書要求進(jìn)行操作。反應(yīng)體系為:RNA 4μg,2×miRNA LRT Solution mix 10μL,Stem-loop primer(10μmol/L)1μL,miRNA L-RT Enzyme mix 1.5μL,RNasefree water 3.5μL,總體積為20μL。所得cDNA于4℃保存。
1.2.3 PCR擴(kuò)增 對(duì)獲得的cDNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增體系為:2×EsTaqMaster Mix 10μL,上下游引物各1.5μL,模板cDNA 3μL,ddH2O 4μL,總體積為20μL。PCR擴(kuò)增條件為:94℃5 min;94℃30 s,退火溫度58~63℃30 s,72℃30 s,35個(gè)循環(huán);72℃5 min。4℃保存。
1.2.4 瓊脂糖凝膠電泳及灰度分析 分別設(shè)置不同瓊脂糖凝膠電泳條件(瓊脂糖凝膠濃度2.0%、2.5%;電泳電壓100、80 V;電泳時(shí)間80、60 min)分離鑒定PCR擴(kuò)增產(chǎn)物,并利用Image J軟件在一定面積和像素?cái)?shù)下,對(duì)不同電泳條件bta-miR-377的70 bp左右條帶除背景像素外的所有有效像素灰度平均值進(jìn)行灰度分析。
試驗(yàn)重復(fù)3次,運(yùn)用GraphPad Prism 8.0.2進(jìn)行數(shù)據(jù)分析;組間數(shù)據(jù)分析采用t檢驗(yàn)(P<0.05)。
RNA提取后,經(jīng)檢測(cè)RNA濃度與純度均符合試驗(yàn)要求。經(jīng)2.0%、2.5%瓊脂糖凝膠于100 V電泳40 min后結(jié)果如圖1所示,已知bta-miR-377大小為70 bp,當(dāng)凝膠濃度為2.0%時(shí),Marker條帶堆積、拖尾,且無(wú)法區(qū)分目的條帶;當(dāng)凝膠濃度為2.5%時(shí),Marker條帶遷移效果較好,但略有拖尾,目的條帶出現(xiàn)70 bp左右,可見后者的分辨率高于前者,表明凝膠濃度為2.5%時(shí)適合bta-miR-377表達(dá)檢測(cè)。
進(jìn)一步對(duì)電泳電壓和時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化,當(dāng)100 V延長(zhǎng)電泳時(shí)間至60 min時(shí),Marker條帶拖尾且目的條帶彌散,說明長(zhǎng)時(shí)間高壓可能會(huì)導(dǎo)致緩沖液溫度過高而使DNA降解;80 V 60 min相較于100 V 60 min的Marker條帶完全分離,但目的條帶過寬,可能是由于電泳時(shí)間太短DNA分子沒有聚集;而80 V 80 min相較于80 V 60 min的Marker完全分離,且目的條帶集中清晰,沒有非特異性擴(kuò)增。
綜上可見,2.5%瓊脂糖凝膠、80 V 80 min為本研究范圍內(nèi)分離bta-miR-377的最優(yōu)電泳條件。
采用Image J軟件分析凝膠濃度為2.5%時(shí),不同電壓和電泳時(shí)間下bta-miR-377條帶表達(dá)情況影響,其結(jié)果如圖2所示,時(shí)間分別為60 min和80 min時(shí)條帶灰度值差異極顯著(P<0.01),表明時(shí)間長(zhǎng)短對(duì)bta-miR-377條帶分布有影響,電泳中小片段的出現(xiàn)需較長(zhǎng)時(shí)間;電壓分別為100 V和80 V時(shí)條帶灰度值差異顯著(P<0.05),表明電壓大小對(duì)bta-miR-377表達(dá)有影響;凝膠濃度為2.5%、時(shí)間為80 min、電壓為80 V時(shí),bta-miR-377條帶表達(dá)效果最好,灰度值最高,與電泳結(jié)果一致。
近年來(lái),miRNA的研究備受關(guān)注,運(yùn)用靈敏、精確、快速的技術(shù)檢測(cè)miRNA表達(dá)具有重要意義[11]。相比于Nothern blot和微陣列技術(shù),瓊脂糖凝膠電泳技術(shù)具有快速簡(jiǎn)便、成本低、特異性強(qiáng)的特點(diǎn),后續(xù)可用于高通量檢測(cè),其已被廣泛應(yīng)用于檢測(cè)miRNA表達(dá)中[12]。本研究在反轉(zhuǎn)錄過程中采用莖環(huán)結(jié)構(gòu)法對(duì)bta-miR-377引物序列進(jìn)行特異性延長(zhǎng),解決了其序列較短難以檢測(cè)表達(dá)的問題,該方法相比于加尾法[13],具有成本低、效率高、特異性強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),普遍用于miRNA研究中。李衛(wèi)振等[14]采用莖環(huán)法設(shè)計(jì)siRNA序列特異性引物,利用RT-PCR技術(shù)成功檢測(cè)出哺乳動(dòng)物體內(nèi)抗病毒siRNA表達(dá)水平;高克儉等[15]利用莖環(huán)結(jié)構(gòu)特異性引物反轉(zhuǎn)錄miRNA,并利用環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(LAMP)檢測(cè)出單細(xì)胞中miRNA的表達(dá)水平;HU等[16]采用Stem-loop RT-PCR法分析了棉花中Gh-miR156和Gh-miR159的特異性表達(dá),推動(dòng)了棉花中miRNA的研究。本研究結(jié)果表明,莖環(huán)結(jié)構(gòu)法設(shè)計(jì)獲得的引物能夠有效鑒定bta-miR-377,此方法可行。
王杰等[17]利用RT-PCR技術(shù)分析miR-18和miR-224在原發(fā)性肝細(xì)胞癌(HCC)和癌旁組織中的差異表達(dá)量,設(shè)置凝膠濃度為2.0%、100 V 20 min條件下進(jìn)行電泳,并對(duì)電泳條帶進(jìn)行光密度分析,結(jié)果表明,miR-18和miR-224在HCC中的表達(dá)量顯著高于癌旁組織;高雯華等[18]對(duì)小鼠雙側(cè)海馬中的miRNA-101半定量檢測(cè)時(shí),利用凝膠濃度為2.5%、80 V 30 min條件下進(jìn)行;張金梅等[19]利用半定量RT-PCR對(duì)不同時(shí)間冷脅迫下金橘中miRNA的差異表達(dá)進(jìn)行鑒定時(shí),PCR產(chǎn)物在凝膠濃度為1.5%、80 V 20 min條件下進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,并通過比較條帶強(qiáng)弱以確定miRNA在不同時(shí)間下的表達(dá)情況。以上研究表明,半定量RT-PCR可用于miRNA表達(dá)的鑒定,但在不同組織中檢測(cè)所需電泳條件不同,因此需對(duì)miRNA表達(dá)條件進(jìn)行不斷優(yōu)化。本試驗(yàn)針對(duì)miRNA片段小的特點(diǎn),首先對(duì)凝膠濃度進(jìn)行優(yōu)化;高電壓使緩沖液溫度升高導(dǎo)致DNA變性或降解,條帶泳動(dòng)過快出現(xiàn)彌散,或時(shí)間過短片段不能完全分離或集中現(xiàn)象,通過優(yōu)化電源電壓和電泳時(shí)間,試驗(yàn)結(jié)果顯示,凝膠濃度2.5%、80 V 80 min為bta-miR-377分離的最佳條件,該條件下條帶集中清晰,無(wú)彌散現(xiàn)象。
灰度分析是一種根據(jù)灰度值大小對(duì)所測(cè)樣品中目的蛋白表達(dá)量高低進(jìn)行定量分析的方法,具有分析快、結(jié)果直觀的特點(diǎn),一般數(shù)值在0~255[20]。杜珍武等[21]利用Image J軟件對(duì)DNA的灰度值與DNA含量關(guān)系進(jìn)行分析,在相同面積和像素?cái)?shù)下,對(duì)電泳條帶750 bp平均灰度值分析發(fā)現(xiàn),DNA含量為50.0、66.8、83.5、100 ng時(shí),與相應(yīng)的灰度值呈正向線性關(guān)系,即DNA含量越高,灰度值越高;沈海瀅等[22]對(duì)不同直徑毛細(xì)管中血清甲胎蛋白灰度值進(jìn)行分析,在不同抗體濃度和一定曝光時(shí)間下,大內(nèi)徑的毛細(xì)管中灰度值大,血清甲胎蛋白含量高,表明灰度值可用于分析核酸表達(dá)量。本研究在凝膠濃度為2.5%、電壓100 V、時(shí)間60 min時(shí)灰度值為86.111;凝膠濃度為2.5%、電壓100 V、時(shí)間80 min時(shí)灰度值為170.766,在電泳條件最佳時(shí)的灰度值為200.867,此時(shí)灰度值明顯高于其他條件,說明此條件下bta-miR-377表達(dá)量最高,可在該條件下進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。
本研究?jī)?yōu)化了檢測(cè)bta-miR-377表達(dá)的瓊脂糖凝膠電泳條件,當(dāng)凝膠濃度為2.5%、電源電壓為80 V、電泳時(shí)間為80 min時(shí)可有效分離鑒定btamiR-377,利用簡(jiǎn)便方式高效精準(zhǔn)鑒定其在牛下丘腦中有表達(dá),為后續(xù)深入研究奠定了基礎(chǔ);然而對(duì)bta-miR-377在牛下丘腦中功能和調(diào)控方式還不清楚,仍需進(jìn)一步研究。