洪婭婭 陳學(xué)鵬 姒蜜思
1.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬口腔醫(yī)院正畸科 浙江大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院浙江省口腔生物醫(yī)學(xué)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杭州 310006;
2.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬口腔醫(yī)院種植科 浙江大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院浙江省口腔生物醫(yī)學(xué)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 杭州 310006
牙周炎、先天性畸形、頜面部外傷、感染和腫瘤等均會導(dǎo)致不同程度的牙槽骨缺損,造成顏面部畸形的同時,對咀嚼、吞咽、語言等功能也產(chǎn)生嚴(yán)重影響。目前,臨床上牙槽骨缺損的治療方法(引導(dǎo)性組織再生、自體骨移植等)存在各種局限性,比如組織再生有限、供體不足、供骨區(qū)并發(fā)癥等,尚無法獲得理想的牙槽骨再生效果。因此,牙槽骨缺損的再生治療成為口腔領(lǐng)域的研究熱點(diǎn)和難點(diǎn)。近年來,牙周組織工程技術(shù)為牙槽骨缺損的結(jié)構(gòu)再生和功能重建提供了全新的思路和路徑,其需要理想的種子細(xì)胞、安全可降解的支架材料和適宜的微環(huán)境[1-2]。牙囊干細(xì)胞(dental follicle stem cell,DFSC)起源于神經(jīng)嵴細(xì)胞,具有自我更新和多向分化潛能,是牙周組織的直接前體細(xì)胞,能分化為成骨細(xì)胞、牙周膜細(xì)胞和成牙骨質(zhì)細(xì)胞,在牙周組織發(fā)育中發(fā)揮不可或缺的作用;體外DFSC在特定條件下可以誘導(dǎo)分化為成骨細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、神經(jīng)元、唾液腺細(xì)胞、導(dǎo)管細(xì)胞、心肌細(xì)胞等[3-4]。此外,DFSC易于獲取和保存,相比于骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(bone marrow mesenchymal stem cell,BMSC)及其他牙源性干細(xì)胞,具有更好的增殖分化能力以及免疫調(diào)節(jié)作用,是目前極具開發(fā)前景的種子細(xì)胞[4-6]。
探索DFSC成骨分化機(jī)制是牙周組織工程的前提和基礎(chǔ)。隨著微陣列技術(shù)和高通量測序技術(shù)的發(fā)展,非編碼RNA(non-coding RNA,ncRNA)的重要作用不斷為學(xué)者所認(rèn)知。ncRNA是一類基因組DNA轉(zhuǎn)錄而來但缺乏編碼或翻譯蛋白質(zhì)能力的RNA,通過與蛋白質(zhì)、DNA、RNA等分子相互作用調(diào)節(jié)靶基因的表達(dá),在表觀遺傳、轉(zhuǎn)錄及轉(zhuǎn)錄后水平發(fā)揮生物學(xué)功能[7]。表觀遺傳調(diào)控狹義上一般是指在DNA序列不發(fā)生改變的情況下,通過調(diào)整染色質(zhì)狀態(tài)從而實(shí)現(xiàn)對基因表達(dá)的調(diào)控,主要包括DNA甲基化、組蛋白修飾和染色質(zhì)重塑等。轉(zhuǎn)錄調(diào)控是指對包括轉(zhuǎn)錄起始、延長、終止在內(nèi)的轉(zhuǎn)錄過程的調(diào)控,包括轉(zhuǎn)錄因子、增強(qiáng)子等。轉(zhuǎn)錄后調(diào)控是指對基因轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進(jìn)行一系列加工、修飾等過程,包括mRNA前體選擇性剪切、mRNA穩(wěn)定性調(diào)節(jié)、RNA干擾等。目前研究證實(shí):ncRNA可多水平調(diào)控DFSC成骨分化,在基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中扮演著重要的角色。
高通量轉(zhuǎn)錄分析[8]表明:高達(dá)90%的真核生物基因組被轉(zhuǎn)錄,而僅1%~2%的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物(RNA)具有蛋白質(zhì)編碼能力,其余不編碼蛋白質(zhì)的轉(zhuǎn)錄本被稱為ncRNA,最初被認(rèn)為是“轉(zhuǎn)錄噪音”。但近年來大量的研究[9-15]表明:ncRNA是基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的重要組成部分,參與許多生理和病理過程,包括發(fā)育、免疫應(yīng)答、應(yīng)激反應(yīng)、干細(xì)胞調(diào)控、疾病發(fā)生等。轉(zhuǎn)錄ncRNA的DNA序列包括蛋白質(zhì)編碼基因、增強(qiáng)子區(qū)域和轉(zhuǎn)座子元件,ncRNA根據(jù)功能可分為管家ncRNA(housekeeping ncRNA)和調(diào)控ncRNA(regulatory ncRNA)[16]。管家ncRNA通常很小,大小為50~500 nt,組成性表達(dá)于所有細(xì)胞類型,主要調(diào)節(jié)細(xì)胞的一般功能,為細(xì)胞生存所必需,包括參與蛋白質(zhì)合成的核糖體RNA(ribosomal RNA,rRNA)和轉(zhuǎn)運(yùn)RNA(transfer RNA,tRNA),RNA剪接中的小核RNA(small nuclear RNA,snRNA)和RNA修飾中的小核仁RNA(small nucleolar RNA,snoRNA)。調(diào) 控ncRNA通常在特定細(xì)胞中特異性表達(dá),在基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮關(guān)鍵的調(diào)控作用,根據(jù)其大小可進(jìn)一步分為小型ncRNA(<200 nt)和長鏈ncRNA(long non-coding RNA,lncRNA)(>200 nt),前者包括微小RNA(microRNA,miRNA)、小干擾RNA(small interfering RNA,siRNA)、piwi相互作用RNA(piwi-interacting RNA,piRNA)。一部分長度可變的ncRNA可能同時屬于兩類,比如啟動子相關(guān)轉(zhuǎn)錄本(promoter-associated transcript,PAT)、增強(qiáng)子RNA(enhancer RNA,eRNA)和環(huán)狀RNA(circular RNA,circRNA)。
目前,研究較多的ncRNA主要是miRNA、lnc-RNA和circRNA這三類調(diào)控ncRNA。
miRNA是一類在植物、動物和病毒中廣泛表達(dá)的ncRNA,大小為21~24 nt,在進(jìn)化上表現(xiàn)出高度的保守性[14]。miRNA(lin-4 locus2)于1993年在秀麗隱桿線蟲中被發(fā)現(xiàn)[17],隨后,哺乳動物中的miRNA(Let-7)于2000年被發(fā)現(xiàn)[18]。在哺乳動物中,miRNA可控制約50%蛋白質(zhì)編碼基因的活性,幾乎參與了所有細(xì)胞過程的調(diào)控[19]。miRNA的合成開始于細(xì)胞核中的轉(zhuǎn)錄,然后到細(xì)胞質(zhì)中進(jìn)一步加工和成熟。在細(xì)胞核中,獨(dú)立的miRNA基因或蛋白質(zhì)編碼基因內(nèi)含子序列被RNA聚合酶Ⅱ(RNA polymeraseⅡ)轉(zhuǎn)錄成初級轉(zhuǎn)錄本(primary miRNA,pri-miRNA),然后再被Drosha(RNaseⅢ家族)和DiGeorge綜合征關(guān)鍵區(qū)域8(DiGeorge syndrome critical region 8,DGCR8)微處理器復(fù)合體切割形成含有發(fā)夾結(jié)構(gòu)的約70 nt的前 體miRNA(precursor miRNA,pre-miRNA);exportin 5-RanGTP穿梭系統(tǒng)將pre-miRNA輸出到細(xì)胞質(zhì),被Dicer(RNaseⅢ家族)加工成約20 nt的miRNA/miRNA*雙鏈體,其中成熟的miRNA鏈[又叫引導(dǎo)鏈(guide strand)]整合到RNA誘導(dǎo)的沉默復(fù)合物(RNA-induced silencing complex,RISC),通過與靶基因mRNA 3’非翻譯區(qū)(3’untranslated region,3’UTR)堿基配對,促進(jìn)mRNA降解或抑制蛋白質(zhì)翻譯進(jìn)而沉默基因表達(dá),在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)生物學(xué)過程,而miRNA*鏈[又叫過客鏈(passenger strand)]則大多被降解[19-20]。生物信息學(xué)研究顯示:單個miRNA可以靶向至少數(shù)百個基因,且一個基因由多個miRNA調(diào)控,這使得miRNA在復(fù)雜的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮核心作用[21]。miRNA是干細(xì)胞生物學(xué)行為的關(guān)鍵調(diào)控因子,敲除參與miRNA形成的關(guān)鍵蛋白DGCR8的干細(xì)胞在分化方面存在缺陷[22]。
lncRNA是一類長度大于200 nt的調(diào)控ncRNA,來源于基因間和重疊蛋白編碼區(qū),幾乎不具有蛋白質(zhì)編碼能力[23]。lncRNA保守性較低,但具有高度的組織特異性[24]。根據(jù)其結(jié)構(gòu)和位置可分為5類[25]:1)反義lncRNA;2)基因間lncRNA;3)有義重疊lncRNA;4)有義內(nèi)含子lncRNA;5)加工過的轉(zhuǎn)錄本。lncRNA以往被認(rèn)為是RNA PolymeraseⅡ轉(zhuǎn)錄的無功能副產(chǎn)物,但近期研究[24]顯示lncRNA參與多種生物學(xué)過程,包括染色質(zhì)修飾、轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)、細(xì)胞分化、增殖、凋亡、器官形成、疾病發(fā)展等。lncRNA定位在細(xì)胞核或細(xì)胞質(zhì)中,其功能取決于亞細(xì)胞定位[26]。lncRNA能夠折疊成獨(dú)特的二級構(gòu)象,包括DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域、RNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域和蛋白質(zhì)結(jié)合結(jié)構(gòu)域,充當(dāng)支架、誘餌、信號和向?qū)?,與DNA、RNA和蛋白質(zhì)形成廣泛的調(diào)控網(wǎng)絡(luò),在表觀遺傳、轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控基因表達(dá)[25,27]:1)在表觀遺傳水平上,lnc-RNA通過組蛋白修飾、DNA甲基化和染色質(zhì)重塑調(diào)節(jié)染色質(zhì)結(jié)構(gòu);2)在轉(zhuǎn)錄水平上,lncRNA可通過結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子(transcription factor,TF)、干擾臨近基因轉(zhuǎn)錄,或通過與RNA結(jié)合蛋白(RNAbinding protein,RBP)相互作用并靶向啟動子調(diào)節(jié)基因表達(dá)[23,28];3)在轉(zhuǎn)錄后水平上,lncRNA作為miRNA“海綿”,減弱miRNA介導(dǎo)的靶基因調(diào)控[28]。lncRNA還可在轉(zhuǎn)錄后水平通過與蛋白形成lncRNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物(lncRNA-protein complex,lncRNP),或與其他RNA配對募集參與mRNA降解的蛋白質(zhì),調(diào)節(jié)基因表達(dá)[29]。許多定位于細(xì)胞器(比如外泌體、線粒體)的lncRNA還可調(diào)節(jié)細(xì)胞器功能[29]。
circRNA是一類具有獨(dú)特共價閉環(huán)結(jié)構(gòu)的調(diào)控ncRNA,在pre-mRNA成熟期間通過反向剪接產(chǎn)生,于1976年由Sanger等[30]提出。circRNA廣泛存在于哺乳動物細(xì)胞內(nèi),在進(jìn)化上具有比miRNA更高的保守性,且具有組織特異性和時空特異性[31-33]。circRNA主要定位于細(xì)胞質(zhì),相比于線性RNA,circRNA形成共價閉合環(huán),無3’和5’末端,對核酸外切酶RNaseR有抵抗力,具有更好的穩(wěn)定性[33]。根據(jù)形成機(jī)制,circRNA可分為外顯子circRNA、內(nèi)含子circRNA、基因間circRNA、有義重疊circRNA和反義circRNA五類[34]。circRNA作為一類新型的保守內(nèi)源性ncRNA,在轉(zhuǎn)錄水平和轉(zhuǎn)錄后水平發(fā)揮功能:1)與RBP結(jié)合形成RNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物(RNA-protein complex,RPC),調(diào)控線性基因的轉(zhuǎn)錄;2)充當(dāng)miRNA“海綿”;3)含有內(nèi)部核糖體進(jìn)入位點(diǎn)(internal ribosome entry site,IRES)的合成cirRNA可翻譯成蛋白質(zhì)[35]。隨著技術(shù)的發(fā)展和研究的深入,最初被認(rèn)為是異常剪接副產(chǎn)物的circRNA不斷被報道參與基因表達(dá)的調(diào)控和某些疾病的發(fā)生。
牙囊(dental follicle,DF)是來源于外胚間充質(zhì)的疏松結(jié)締組織,在牙齒發(fā)育期間包繞成釉器和牙乳頭。Morsczeck等[36]在體外從人第三磨牙的DF中分離出DFSC。牙囊組織通過組織塊法、酶消法或兩者結(jié)合可獲得牙囊細(xì)胞(dental follicle cell,DFC),而后經(jīng)過多次差速傳代純化;純化的DFC通過有限稀釋法可分離并單克隆擴(kuò)增DFSC,相較于DFC,DFSC表現(xiàn)出增強(qiáng)的增殖能力[37]。DFSC表達(dá)間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cell,MSC)標(biāo)志物、胚胎干細(xì)胞標(biāo)志物和神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志物,但不表達(dá)造血干細(xì)胞標(biāo)志物[38]。在含抗壞血酸、β-甘油磷酸和地塞米松的培養(yǎng)基中,DFSC可誘導(dǎo)分化為成骨細(xì)胞,表現(xiàn)為成骨相關(guān)標(biāo)志物上調(diào),如runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子2(runt-related transcription factor 2,RUNX2)、堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)、骨鈣素(osteocalcin,OCN)、Ⅰ型膠原(collagen type-1,COL1)、骨橋蛋白(osteopontin,OPN)、骨唾液蛋白(bone sialoprotein,BSP)、成骨相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子抗體(osterix)和同源轉(zhuǎn)錄因子5(distal-less homeobox-5,DLX-5)[3,39]。動物實(shí)驗(yàn)證實(shí),DFSC具有體內(nèi)成骨能力,將DFSC與支架材料結(jié)合植入體內(nèi)可修復(fù)大面積骨缺損。Rezai-Rad等[40]將接種DFSC的聚己內(nèi)酯(polycaprolactone,PCL)支架植入到大鼠臨界骨缺損(critical-sized bone defect,CSD)處,可實(shí)現(xiàn)約50%的骨再生。Nie等[41]將接種骨形成蛋白9重組腺病毒(recombinant adenoviruses expressing BMP9,Ad-BMP9)轉(zhuǎn)染DFC的珊瑚羥磷灰石(coralline hydroxyapatite,CHA)支架植入大鼠牙槽骨缺損模型,在6周后觀察到顯著的新骨形成。在炎癥環(huán)境下,DFSC相比牙周膜干細(xì)胞(periodontal ligament stem cells,PDLSC)表現(xiàn)出更為強(qiáng)大的適應(yīng)能力和牙周組織再生能力[42]。因此,DFSC作為理想的種子細(xì)胞,在牙周組織工程中具有廣闊的應(yīng)用前景。然而,DFSC的成骨分化需要適宜的微環(huán)境,在沒有相關(guān)生物活性分子的誘導(dǎo)下其不能礦化或形成骨組織[43]。自從DFSC成功分離以來,許多學(xué)者致力于其成骨潛能的研究。DFSC的成骨分化機(jī)制復(fù)雜,受多種因素的調(diào)節(jié),包括細(xì)胞間相互作用、細(xì)胞因子,涉及復(fù)雜的信號通路[3]。人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cell,HUVEC)[44]或Hertwig上皮根鞘細(xì)胞(Hertwig’s epithelial root sheath cell,HERSC)[45]與DFSC或DFC共培養(yǎng)時,成骨分化能力顯著增強(qiáng);BMP9[46]、BMP6[47]、牙源性成釉細(xì)胞相關(guān)蛋白(odontogenic ameloblast-associated protein,ODAM)[48]、牙本質(zhì)基質(zhì)蛋白1(dentin matrix protein 1,DMP1)[49]等促進(jìn)DFSC成骨分化;Wnt/βcatenin信號通路[50]、絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)信號通路[46]等參與DFSC的成骨分化。以往對DFSC成骨分化機(jī)制的研究多聚焦于TF和細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)蛋白。近年來的相關(guān)研究證實(shí),ncRNA是DFSC成骨分化基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中至關(guān)重要的信號分子,以BMP為代表的成骨分化上游啟動因子,以RUNX2為代表的下游成骨分化相關(guān)標(biāo)志基因等均受到ncRNA的調(diào)控(表1)[51-59]。
表1 參與調(diào)控DFSC成骨分化的ncRNATab 1 ncRNAs involved in the regulation on osteogenic differentiation of DFSCs
miRNA的調(diào)控表現(xiàn)出明顯的組織和細(xì)胞特異性,不同組織來源的干細(xì)胞具有其獨(dú)特的miRNA表達(dá)譜。Ogura等[60]比較MSC和DFC的miRNAmRNA表達(dá)譜,miR-196-a、-b和miR-10-a、-b僅在MSC中高表達(dá),而miR-20a*、miR-129-3p和miR-19b-1*僅在DFC中高表達(dá),且miRNA的表達(dá)水平與相關(guān)靶基因在兩種干細(xì)胞的表達(dá)水平一致,表明miRNA的組織特異性表達(dá)影響不同組織的特征性mRNA表達(dá),提示miRNA-mRNA表達(dá)譜可用于表征組織類型和作為細(xì)胞特異性標(biāo)志物。同樣,與3T3細(xì)胞、BMSC和脂肪干細(xì)胞(adipose stem cell,ADSC)成骨細(xì)胞分化相關(guān)的miRNA(如miR-26a、miR-125b和miR-20a)在DFSC中并未差異表達(dá)[61-64]。
DFSC成骨細(xì)胞分化過程中多種miRNA上調(diào)或下調(diào),這些miRNA通過靶向TF、信號分子等參與調(diào)控成骨分化。其中,miRNA更加傾向于靶向TF,同時又更多地受到TF的調(diào)節(jié),兩者之間構(gòu)成相互聯(lián)系的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[65]。同時,miRNA協(xié)調(diào)成骨相關(guān)信號通路,在復(fù)雜的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮重要的核心作用。
3.2.1 正向調(diào)控DFSC成骨分化的miRNA miR-101:Klingelh?ffer等[51]發(fā)現(xiàn)miR-101在hDFSC成骨分化過程中上調(diào),miR-101-mimic轉(zhuǎn)染增加ALP活性,成骨相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子SP7顯著上調(diào),表明miR-101正向調(diào)控DFSC成骨分化;miR-101調(diào)節(jié)與癌細(xì)胞增殖和凋亡相關(guān)基因,而轉(zhuǎn)錄因子DLX3調(diào)節(jié)DFSC的細(xì)胞增殖和凋亡,且參與成骨分化,推測BMP2/DLX3信號通路作為RUNX2和SP7的上游通路,可能是miR-101調(diào)控DFSC成骨分化的重要靶點(diǎn),但具體的機(jī)制有待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證實(shí)。
3.2.2 負(fù)向調(diào)控DFSC成骨分化的miRNA miR-29:Tomoki等[52]研究hDFC成骨分化過程中miRNA的表達(dá)譜發(fā)現(xiàn),miR-29(miR-29a、-29b和-29c)在成骨分化過程中顯著下調(diào);進(jìn)一步研究顯示miR-29以COL1(礦化組織的主要ECM)為靶點(diǎn),抑制成骨分化,其中以miR-29b的抑制作用最為強(qiáng)烈。
miR-146a:RUNX2作為成骨細(xì)胞特異TF,影響細(xì)胞的生物學(xué)行為,其中RUNX2突變是顱骨鎖骨發(fā)育不良(cleidocranial dysplasia,CCD)患者乳牙滯留和恒牙遲萌的原因。Chen等[53]研究了RUNX2與miRNA對DFSC分化的影響,RUNX2突變的hDFSC表現(xiàn)為更長、更大的細(xì)胞形態(tài),降低的增殖活性以及增強(qiáng)的成骨分化能力;微陣列分析顯示RUNX2突變影響多個miRNA的表達(dá),其中miR-146a在RUNX2突變DFSC中顯著降低;當(dāng)miR-146a過表達(dá)或抑制時,RUNX2、骨保護(hù)素(osteoprotegrin,OPG)、EGFR和集落刺激因子-1(colony stimulating factor 1,CSF-1)的表達(dá)變化顯著,EGFR是miR-146a的潛在靶基因,EGFR參與調(diào)節(jié)成骨分化過程中RUNX2的表達(dá)[66],提示RUNX2基因與miRNA之間的相互作用可能是DFSC成骨分化的關(guān)鍵調(diào)控機(jī)制之一。
miR-204:Ito等[56]的研究發(fā)現(xiàn)hDFC成骨分化過程中miR-204表達(dá)降低,miR-204的轉(zhuǎn)染降低了ALP活性以及SPARC和RUNX2的蛋白水平,同時伴隨三者mRNA水平的降低,表明miR-204通過靶向RUNX2、ALP和SPARC負(fù)向調(diào)控hDFC的成骨分化。
miR-335:左婕等[54]的研究顯示rDFSC體外誘導(dǎo)成骨分化過程中miR-335下調(diào),miR-335負(fù)向調(diào)控DFSC的成骨分化。miR-335在未分化人間充質(zhì)干 細(xì) 胞(human mesenchymal stem cell,hMSC)中高表達(dá),在成骨分化過程中發(fā)生下調(diào),miR-335直接靶向RUNX2的3’UTR抑制其表達(dá),同時miR-335的表達(dá)又受到經(jīng)典Wnt信號通路的調(diào)控[67]。而miR-335-5p通過下調(diào)Wnt通路拮抗劑Dickkopf相關(guān)蛋白1(Dickkopf-related protein 1,DKK1)激活Wnt信號通路,參與MSC成骨分化。Wnt信號通路同樣是DFSC成骨分化中的重要信號通路,包括經(jīng)典Wnt/β-catenin信號通路和非經(jīng)典Wnt信號通路,提示W(wǎng)nt信號通路可能參與miR-335對DFSC成骨分化的調(diào)控。
miR-214:王智亨等[55]發(fā)現(xiàn)miR-214過表達(dá)的rDFSC伴隨β-catenin表達(dá)水平的下調(diào),并抑制ALP、骨粘連蛋白(osteonectin,OSN)及RUNX2的表達(dá),抑制成骨分化。
miRNA通過靶向相關(guān)基因,與成骨相關(guān)信號通路相互作用,同時又受其調(diào)控,在基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中發(fā)揮重要的核心作用。由于miRNA體積小,容易傳遞到細(xì)胞中,被認(rèn)為是未來治療牙槽骨缺損的潛在方法。但是目前許多對miRNA和DFSC成骨分化的研究僅僅停留在功能層面,或只是運(yùn)用生物信息學(xué)預(yù)測靶基因,對調(diào)控機(jī)制的研究需要進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證。
MEG3是母系表達(dá)的lncRNA,位于人類染色體14q32.3區(qū)域DLK1-MEG3印記位點(diǎn)。研究顯示,hDFC中的lncRNA MEG3顯著低于人牙周膜干細(xì)胞(human periodontal ligament stem cells,hPDLC),
lncRNA MEG3在胚胎發(fā)生和發(fā)育上發(fā)揮重要作用,MEG3耗盡伴隨著DFSC多能性相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄減少,表明MEG3在DFSC多能性中可能發(fā)揮重要的調(diào)節(jié)作用。進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn),lncRNA MEG3定位于細(xì)胞質(zhì),與zeste基因增強(qiáng)子同源物2(enhancer of zeste homolog 2,EZH2)相互作用,下調(diào)MEG3或EZH2降低Wnt基因啟動子上的H3K27me3水平,在表觀遺傳水平上激活Wnt/βcatenin信號通路,進(jìn)而促進(jìn)DFSC的成骨分化[57]。
lncRNA HOTAIRM1是位于同源異形盒A1/2(homeobox A1/2,HOXA1/2)基因間區(qū)的反義轉(zhuǎn)錄物,Chen等[58]的研究發(fā)現(xiàn)lncRNA HOTAIRM1和HOXA2在hDFSC中的表達(dá)顯著高于hPDLSC,兩者具有相似的表達(dá)模式,進(jìn)一步研究證實(shí)lncRNA HOTAIRM1通過抑制DNMT1表達(dá)以及其在HOXA2啟動子區(qū)域的富集,維持HOXA2啟動子的低甲基化水平,促進(jìn)HOXA2的轉(zhuǎn)錄和表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)DFSC的成骨分化。
hDFC顯示出比hPDLC更優(yōu)的胚胎特性,包括多能性和異質(zhì)性,微陣列檢測顯示845個lncRNA在兩者中差異表達(dá),包括lncRNA NR_033932、lncRNA RGMB-AS1、lncRNA T152410、lncRNA ENST00000540293等,表明lncRNA在DFC分化中可能起關(guān)鍵作用,lncRNA RGMB-AS1可能通過調(diào)節(jié)細(xì)胞周期來促進(jìn)DFC的遷移、增殖和分化;lncRNA ENST00000540293可能通過調(diào)節(jié)鄰近基因的表達(dá)促進(jìn)DFC存活和分化;lncRNA uc021sxs.1和lncRNA ENST00000609146可能通過調(diào)節(jié)mRNA表達(dá)而參與相關(guān)的信號傳導(dǎo)途徑(比如Wnt信號通路),調(diào)節(jié)DFC的成骨分化。但這些差異表達(dá)的lncRNA主要基于生物信息學(xué)分析,具體的作用機(jī)制有待進(jìn)一步深入探究。
lncRNA數(shù)量龐大且作用機(jī)制復(fù)雜,目前關(guān)于lncRNA與DFSC成骨分化的研究較少,僅闡述了lncRNA在表觀遺傳水平調(diào)控DFSC成骨分化的機(jī)制,對轉(zhuǎn)錄和轉(zhuǎn)錄后水平的調(diào)控機(jī)制至今仍無涉及,需要更多的研究來豐富對DFSC調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的認(rèn)知。
circRNA參與協(xié)調(diào)成骨相關(guān)的分子和信號通路,在成骨分化過程中發(fā)揮重要的調(diào)控作用。circRNA通過靶向miRNA,與Wnt/β-catenin、MAPK、BMP信號通路中的mRNA相互作用,調(diào)控成骨分化。研究[59]發(fā)現(xiàn):DFSC成骨分化過程中circFgfr2充當(dāng)miR-133的“分子海綿”,抑制miR-133表達(dá),使下游BMP6基因表達(dá)增強(qiáng),促進(jìn)DFSC的成骨分化。目前關(guān)于circRNA調(diào)控成骨分化主要集中在充當(dāng)“分子海綿”方面,但關(guān)于circRNA-miRNAmRNA調(diào)控網(wǎng)絡(luò)的確切機(jī)制尚不清楚。此外,circRNA在基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)中的作用機(jī)制復(fù)雜,是否能通過直接與RBP結(jié)合調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄或直接翻譯成蛋白質(zhì)來調(diào)控成骨分化仍是個未知數(shù)。關(guān)于circRNA調(diào)控DFSC成骨分化機(jī)制的研究尚處于起步階段,需要更多地挖掘DFSC成骨相關(guān)circRNA并進(jìn)一步探究其作用機(jī)制。
miRNA、lncRNA、circRNA、mRNA和TF之間相互作用,協(xié)調(diào)多種信號通路,構(gòu)成復(fù)雜而精準(zhǔn)的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò),參與DFSC的成骨分化調(diào)控。DFSC作為牙周組織工程理想的種子細(xì)胞,明確ncRNA在DFSC成骨分化中的角色和作用機(jī)制,對實(shí)現(xiàn)牙周組織再生和功能重建具有重要意義。雖然關(guān)于ncRNA在DFSC成骨分化過程中的認(rèn)識尚只是冰山一角,部分研究僅僅在功能上闡述了促進(jìn)或抑制成骨分化,但是ncRNA的關(guān)鍵調(diào)控作用不容忽視。因此,需要借助生物信息學(xué)方法和基因組學(xué)技術(shù)深入挖掘ncRNA的功能,并進(jìn)一步探索其調(diào)控機(jī)制,豐富基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò),以期實(shí)現(xiàn)對DFSC成骨分化的精準(zhǔn)調(diào)控,為干細(xì)胞的再生治療提供新的策略。隨著ncRNA重要作用和DFSC成骨分化機(jī)制的不斷被揭示,牙周組織工程有望廣泛應(yīng)用到臨床治療當(dāng)中。
利益沖突聲明:作者聲明本文無利益沖突。