許成君 王 芳 鄭凱元 陳 清 李兵兵 李 寶 楊 柳 梁 莉
(大慶油田水務研究設計院)
多環(huán)芳烴(PAHs)由于其特殊的“三致效應”[1-2]一直以來都是環(huán)境領域重點關注的污染物。在我國土壤檢測領域中對PAHs檢測的相關研究也較為廣泛,涉及了PAHs的萃取[3-6](索氏抽提、加速溶劑萃取、微波萃取、超聲萃取)、濃縮(旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮、水浴氮吹濃縮)、凈化[7-8](硅酸鎂固相萃取柱、硅膠固相萃取柱、多環(huán)芳烴專用柱)、檢測儀器[9-10](HPLC、GC-MS)等多個方面。根據(jù)經(jīng)驗判斷,目前各實驗室土壤中PAHs的檢測結果誤差主要源于PAHs的萃取、濃縮以及凈化步驟。我國生態(tài)環(huán)境部于2016年發(fā)布了HJ 784—2016《土壤和沉積物 多環(huán)芳烴的測定 高效液相色譜法》[11],該標準中萃取方法引用了索式抽提法,對萃取液采取氮吹法進行濃縮,濃縮液使用硅酸鎂固相萃取柱或硅膠固相萃取柱凈化,但在標準中也注明了在通過驗證并達到質(zhì)控要求時,也可以采用其他提取、濃縮方法,這就使得相關檢測實驗室及檢測人員在參照此方法時,需要對不同處理方法及處理條件下的檢測規(guī)律及結果有一定的掌握,從而可以結合實際情況和實驗室條件來決定濃縮和凈化的方法。
本文采用高效液相色譜法來檢測土壤中16種PAHs,通過對不同萃取方法、濃縮方法及凈化方法的對比研究,優(yōu)化相關處理步驟的實驗條件,建立了土壤中PAHs的測定方法。該方法加標回收率高,操作耗時短,試劑用量少,重現(xiàn)性好,滿足分析測試的需求,可為相關實驗室及其科研人員提供參考。
VFFSE-6型加速溶劑萃取儀(中國維克托公司,66 mm不銹鋼萃取池);HPLC1260型高效液相色譜儀(HPLC,美國安捷倫公司);R-215型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(瑞士布奇公司);DC-12型氮吹儀(上海安譜實驗科技股份有限公司);固相萃取小柱(上海安譜實驗科技股份有限公司);曼哈格PAH-Mix16 16種PAHs混標;百靈威內(nèi)標及替代物。
取20 g石英砂作為空白基質(zhì),在空白石英砂中分別加入混合標準溶液,配制成0.5 mg/kg的加標樣品,對樣品中PAHs進行萃取得到萃取液,在萃取液中加入一定量無水硫酸鈉進行干燥。將處理后的萃取液進行濃縮,濃縮液通過活化固相萃取柱進行凈化,凈化液濃縮定容至1 mL進行HPLC檢測。
本實驗主要是通過對樣品預處理條件進行優(yōu)化,考察不同條件下樣品中PAHs的回收率,篩選出最佳的預處理條件,構建合理的檢測方法,再對該方法進行驗證,具體實驗設計見表1。
表1 實驗設計
1)快速溶劑萃取:載氣壓力1.5 MPa;加熱溫度100,110,120℃;萃取時間12,16,20 min;萃取劑為1∶1(體積比)的正己烷、丙酮溶液,萃取次數(shù)1,2,3次。
2)索式抽提:將試樣放入玻璃套管內(nèi),將套管放入索式抽提器中,加入100 mL萃取劑(體積比為1∶1的正己烷、丙酮溶液),加熱回流18 h。
3)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮:取萃取液置于圓底燒瓶中,在40℃條件下用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀旋蒸至約1 mL,加入1 mL乙腈再次旋蒸至約1 mL,重復加入1 mL乙腈3次,將萃取劑完全轉(zhuǎn)化為乙腈,經(jīng)硅酸鎂固相萃取柱凈化后待測。
4)水浴氮吹:開啟氮氣,設置水浴氮吹溫度分別為30,40,50℃,將提取液吹掃濃縮至1 mL,加入5 mL正己烷并濃縮至約1 mL,重復此濃縮過程3次,使溶劑完全轉(zhuǎn)化為正己烷,經(jīng)硅酸鎂固相萃取柱凈化后待測。
5)SPE柱凈化:將濃縮液用硅膠柱或硅酸鎂固相萃取柱進行凈化。將1 mL提取液加入凈化柱,用25 mL體積比為1∶1的正己烷、二氯甲烷溶液洗脫,收集洗脫液,氮吹濃縮至1.0 mL,加入3 mL乙腈濃縮至1.0 mL以下待測。
ZORBAX Eclipse PAH色譜柱(5 mm,4.6 mm×250 mm),柱流速1.20 mL/min,柱溫箱溫度35℃,進樣量10 μL;乙腈和水梯度洗脫,熒光檢測器(RF-10AXL型)掃描波長見表2。
表2 洗脫時間及熒光檢測器檢測波長
考察不同萃取溫度條件下土壤中16種PAHs的回收率,判斷萃取溫度對萃取效率的影響,實驗中選取萃取溫度為100,110,120℃,實驗結果見圖1。
圖1 萃取溫度對各PAHs回收率的影響
由圖1可見,萃取溫度對低環(huán)芳烴萃取效果影響大于高環(huán)芳烴,高環(huán)芳烴在100~120℃的回收率變化不大,但是2~3環(huán)的低環(huán)芳烴的萃取效果隨萃取溫度的變化較為明顯。由整體數(shù)據(jù)對比得出,在萃取溫度為120℃時,各PAHs的回收率達到最高,為67.4%~109.1%,故在后續(xù)實驗中選取萃取溫度為120℃。
考察不同萃取時間條件下土壤中16種PAHs的回收率,判斷萃取時間對萃取效率的影響,實驗中選取萃取時間為12,16,20 min,實驗結果見圖2。
圖2 萃取時間對各PAHs回收率的影響
由圖2可見,多數(shù)PAHs回收率隨著萃取時間增長先增高后降低,推斷出現(xiàn)此現(xiàn)象的主要原因是萃取時間過短,部分PAHs溶解不充分,沒有萃取完全,而萃取時間過長,部分PAHs又會出現(xiàn)損失而導致回收率降低,通過實驗比對,確定快速溶劑萃取的最佳萃取時間為16 min,16種PAHs的回收率可達70.3%~110.2%。同時觀察圖2各PAHs回收率隨萃取時間變化的情況,可知萃取時間的變化對低環(huán)數(shù)PAHs的影響較大。
考察不同萃取次數(shù)條件下土壤中16種PAHs的回收率,判斷萃取次數(shù)對萃取效率的影響,實驗中選取萃取次數(shù)分別為1,2,3次,實驗結果見圖3。
圖3 萃取次數(shù)對各PAHs回收率的影響
由圖3可見,各PAHs的回收率隨萃取次數(shù)的增加而增加,當萃取次數(shù)達到兩次后,再繼續(xù)增加萃取次數(shù),PAHs的回收率增加不顯著,推斷當萃取次數(shù)達到兩次后萃取效果已比較完全,結合經(jīng)濟成本及環(huán)保性,確定快速溶劑萃取次數(shù)為兩次,在該條件下16種PAHs的回收率可達68.1%~110.4%。同時觀察圖3各PAHs回收率隨萃取次數(shù)的變化情況,可知快速溶劑萃取次數(shù)的變化對高環(huán)數(shù)PAHs影響較大。
針對同一樣品分別考察快速溶劑萃取及索氏抽提萃取后各PAHs的回收率,對比兩種萃取方法的處理效果,實驗結果見圖4。
圖4 快速溶劑萃取與索氏抽提萃取效果對比
由圖4可以看出,對于大多數(shù)PAHs而言,快速溶劑萃取的回收效果更好,尤其是針對低環(huán)數(shù)的PAHs,與索氏抽提萃取相比,快速溶劑萃取樣品的PHAs回收率明顯提高,回收率為68.4%~109.8%,索式抽提的回收率僅為44.1%~104.1%。由此可見,與傳統(tǒng)的索氏抽提相比,快速溶劑萃取具有萃取效果好、萃取時間短、溶劑使用量低的優(yōu)點。
此部分實驗對旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)與水浴氮吹兩種濃縮方法的效果進行了對比,實驗結果見圖5。
圖5 樣品濃縮方法對比
由圖5可見,水浴氮吹處理后的樣品各PAHs的回收率更高,尤其是低環(huán)數(shù)的PAHs的回收率明顯高于旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮,水浴氮吹處理的樣品回收率可達68.1%~110.4%,而旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)的回收率僅為54.1%~109.1%。與旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)相比,水浴氮吹濃縮適合處理液體體積少,定容體積小的樣品,該濃縮方法可以實現(xiàn)樣品無氧濃縮,具有同時處理多個樣品、濃縮時間短的優(yōu)點。
考察不同水浴氮吹溫度條件下土壤中16種PAHs的回收率,判斷水浴氮吹溫度對萃取效率的影響,實驗選取水浴氮吹溫度為30,40,50℃,實驗結果見圖6。
圖6 水浴氮吹溫度對各PAHs回收率的影響
由圖6可見,水浴氮吹溫度主要是對低環(huán)芳烴的回收率影響較大,而高環(huán)數(shù)PAHs的回收率隨氮吹溫度的變化并不大。由整體數(shù)據(jù)對比得出,在水浴氮吹溫度為30,40℃時,各PAHs的回收率相近,回收率為68.3%~110.3%,進一步提高氮吹溫度,部分低環(huán)芳烴的回收率會降低,50℃時回收率為68.3%~110.3%。綜合考慮回收效果以及實驗時長,后續(xù)實驗中選取水浴氮吹溫度為40℃。
比較了硅酸鎂固相萃取柱及硅膠固相萃取柱(填料均為1 g)對萃取效率的影響,結果見圖7。
圖7 固相萃取柱對PAHs回收率的影響
水浴氮吹濃縮后的樣品經(jīng)硅膠柱凈化后PAHs的回收率在62.1%~104.3%,而經(jīng)硅酸鎂固相萃取柱處理回收率更高,為68.1%~110.4%,故選擇硅酸鎂固相萃取柱作為凈化固相萃取柱更為適合。
2.8.1 空白實驗
使用20~50目的石英砂,在400℃馬弗爐中烘烤4 h,放置至室溫后,采用體積比1∶1的丙酮、正己烷溶液超聲洗滌,烘干后密封保存?zhèn)溆谩=?jīng)過前文優(yōu)化條件后的快速溶劑萃取-水浴氮吹-硅酸鎂固相萃取柱凈化預處理步驟后,上機檢測,檢測結果均小于方法檢出限。
2.8.2 標準曲線制作
采用曼哈格PAH-Mix16的16種PAHs混標,百靈威5種內(nèi)標,替代物兩種。分別移取適量的PAHs標準物質(zhì)、替代物中間液,使用體積比1∶1的丙酮、正己烷溶液定容,使得PAHs及替代物的質(zhì)量濃度分別為0.6,1.0,2.0,5.0,8.0,10.0 mg/L,內(nèi)標的質(zhì)量濃度為5.0 mg/L,繪制的標準曲線見表3。
表3 標準曲線的線性方程及相關系數(shù)
2.8.3 方法回收率、相對標準偏差及替代物回收率
使用國際實驗室能力驗證機構(ERA)土壤質(zhì)控樣品,加入替代物,使用加壓流體萃取法,硅酸鎂小柱凈化后,使用氮吹儀濃縮后定容至1 mL,上機檢測,連續(xù)9次進樣,計算16種PAHs的平均回收率、相對標準偏差,結果見表4。計算替代物回收率及相對標準偏差,結果見表5。
表4 方法回收率、相對標準偏差 %
表5 替代物回收率及相對標準偏差 %
由表4、表5可知,各目標物檢測值均在參考值范圍內(nèi),相對標準偏差為 0.69%~11.8%,均小于30%,目標物回收率為72.66%~113.90%,替代物的加標回收率為69.25%,108.63%,均滿足HJ 784—2016《土壤和沉積物多環(huán)芳烴的測定高效液相色譜法》中“各組分加標回收率在50%~120%之間,替代物加標回收率在60%~120%之間”的要求,可用于實際土壤樣品中PAHs的檢測。
2.8.4 方法檢出限及測定下限
按照前文優(yōu)化后樣品分析的全部步驟,對含量為估計檢出限2~5倍的樣品進行7次平行測定,計算7次平行測定的相對標準偏差,計算檢出限,4倍檢出限為測定下限,檢出限及測定下限分別為:0.21~0.47 μg/kg,0.84~1.88 μg/kg,具體計算結果見表6。
表6 方法檢出限及測定下限 μg/kg
建立了快速溶劑萃取-水浴氮吹-高效液相色譜法檢測土壤樣品中16種PAHs的方法,通過對萃取過程、濃縮過程及凈化過程的對比優(yōu)化,得到如下結論。
1)快速溶劑萃取、水浴氮吹、硅酸鎂固相萃取柱凈化相較于索氏抽提、旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)、硅膠固相萃取有著更為良好的處理效果。
2) 經(jīng)條件優(yōu)化實驗確定最佳處理條件為:萃取溫度120℃,靜態(tài)萃取時間16 min,萃取次數(shù)兩次,水浴氮吹溫度40℃,氮吹后濃縮液經(jīng)硅酸鎂固相萃取柱凈化。
3)采用優(yōu)化的實驗方法進行加標實驗,目標物回收率高,可達72.66%~113.90%,相對標準偏差為0.69%~11.8%,該方法適合實際土壤樣品中PAHs的檢測。