張翔宇,王璦琳,劉祉妤,王笑涵,張思敏,申宇航,張竹君,唐越*
1(大連工業(yè)大學 食品學院,遼寧 大連,116034)2(國家海洋食品工程技術(shù)研究中心,遼寧 大連,116034)
蛋白質(zhì)在食品領(lǐng)域應用廣泛,其可作為乳液體系的乳化劑吸附在油水界面,降低界面張力,提高乳液的熱力學穩(wěn)定性[1]。添加表面活性劑和多糖等均可增加蛋白質(zhì)乳化性,但表面活性劑的潛在毒性及對環(huán)境的危害限制了其在食品領(lǐng)域中的應用,多糖的原料易獲取、安全無毒、操作簡單,更適宜應用在食品體系中。蛋白質(zhì)和多糖分子間的相互作用可分為共價(即形成美拉德反應產(chǎn)物)和非共價相互作用(如氫鍵、空間排阻、靜電和疏水)。二者間的作用力主要取決于環(huán)境條件,如pH、溫度和濃度等[2]。利用兩者間的相互作用,可以改變蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)特性與功能特性,如流變學特性、界面特性等,制備不同結(jié)構(gòu)和功能特性的復合微納米膠體粒子。
魚皮明膠(fish skin gelatin, FSG) 通過水解水產(chǎn)魚皮的膠原蛋白而獲得,是相對分子質(zhì)量較高的優(yōu)質(zhì)海洋源蛋白質(zhì)[3],其來源廣泛、價格低廉,且可有效解決哺乳動物源明膠涉及的傳染病(瘋牛病)與宗教信仰等問題。FSG具有很高的表面活性,可以起到乳化劑的作用,并形成帶正電荷的液滴,在食品工業(yè)中被廣泛用作穩(wěn)定劑。海藻酸鈉(sodium alginate, Alg)是從褐藻或馬尾藻中提取的天然陰離子線性多糖,具有無毒、親水性、生物相容性、較強粘稠性等特點[4],是復合體系中理想的多糖穩(wěn)定劑。SILVA等[5]將質(zhì)量分數(shù)為0.5%的Alg與1.5%的明膠混合,二者通過靜電作用形成復合體系,275 W超聲處理后可得到穩(wěn)定的乳液體系,提高了乳液的貯藏穩(wěn)定性。SILVANA等[6]研究了乳清分離蛋白與Alg復合制備的多層乳液,發(fā)現(xiàn)Alg的添加使得乳清蛋白通過靜電作用與Alg在油水界面結(jié)合,增加了乳液的穩(wěn)定性。雖然Alg與動物源蛋白的相互作用研究比較廣泛,但其與海洋蛋白(如FSG)的相互作用關(guān)系還不明確。
本實驗研究了pH、Alg濃度對FSG-Alg間相互作用的影響,通過濁度、電位、熒光光譜、冷場掃描電鏡、等溫滴定量熱分析了復合體系中FSG與Alg的相互作用力的類型及規(guī)律。為海洋源蛋白FSG在食品領(lǐng)域的應用例如復合凝膠、多層乳液輸送體系等提供了理論依據(jù)。
本實驗研究了pH、Alg濃度對FSG-Alg間相互作用的影響,通過濁度、電位、熒光光譜、冷場掃描電鏡、等溫滴定量熱分析了復合體系中FSG與Alg的相互作用力的類型及規(guī)律。為海洋源蛋白FSG在食品領(lǐng)域的應用例如復合凝膠、多層乳液輸送體系等提供了理論依據(jù)。
魚皮明膠,美國Sigma-Aldrich公司;玉米油,山東西王食品有限公司;海藻酸鈉、異硫氰酸熒光素,上海阿拉丁生化科技股份有限公司;尼羅紅,上海生工生物工程有限公司;其他試劑均為分析純,天津市大茂化學試劑廠。
Zetasizer 3000HSA激光粒度儀,英國馬爾文儀器公司;Affinity等溫滴定量熱儀,美國TA儀器有限公司;F—2700熒光光譜儀,日立儀器(上海)有限公司;SU8010冷場掃描電鏡,日本HITACHI公司;UV2100紫外可見分光光度計,上海尤尼柯儀器有限公司。
1.3.1 FSG-Alg復合體系的制備
分別取一定量的FSG和Alg于去離子水中,在室溫下用磁力攪拌器攪拌過夜,使二者可以完全水化溶解。將溶解好的溶液按一定比例混合,制備總濃度為1%,FSG及Alg的質(zhì)量比分別為8∶1、4∶1、2∶1、1∶1、1∶2、1∶4的混合物。用1 mol/L NaOH溶液和HCl溶液調(diào)節(jié)混合物的pH,使其pH變化區(qū)間為2~8。取一定量的上述混合物溶液于螺口玻璃瓶中,靜置12 h后進行拍照觀察。
1.3.2 FSG-Alg復合體系的濁度測定
參照MARTINIS等[7]的方法略加修改。將樣品放置于1 cm光程的樣品池中,使用紫外分光光度計在600 nm處測量樣品的濁度,每個樣品平行測定3次,取平均值。濁度(T)定義按公式(1)計算:
T=-ln(I/I0)
(1)
式中:I,透射光強度;I0,入射光強度。
1.3.3 FSG-Alg復合體系的電位測定
Zeta電位的測定參照GUMUS等[8]的方法稍加修改。采用激光粒度儀對其Zeta電位進行測定。實驗具體參數(shù)為:25 ℃;平衡時間10 s;運行次數(shù):10次。
1.3.4 FSG-Alg復合體系的熒光光譜分析
采用熒光光譜儀對FSG-Alg復合體系進行內(nèi)源熒光分析。實驗具體參數(shù)為:激發(fā)波長295 nm;采集范圍250~450 nm;掃描速率50 nm/min。
1.3.5 FSG-Alg復合體系的等溫滴定量熱(isothermal titration calorimetry,ITC)分析
復合體系的ITC分析是根據(jù)LI等[9]的方法并稍加改動。首先,將濃度分別為0.1 mmol/L的FSG溶液與0.005 mmol/L的Alg溶液進行脫氣處理。向樣品池中添加250 μL的Alg溶液,進樣針吸取200 μL的FSG溶液后,對樣品進行熱力學分析,pH 7的磷酸鹽緩沖液為對照組。實驗具體參數(shù)為:實驗溫度25 ℃;每次進樣量5 μL;滴定次數(shù)30次;滴定間隔240 s;攪拌速率100 r/min。
1.3.6 FSG-Alg復合體系的微觀結(jié)構(gòu)觀察
使用冷場掃描電子顯微鏡(cryo-scanning electron microscope,cryo-SEM)表征各消化階段樣品的微觀結(jié)構(gòu)。將載有樣品的樣品臺在液氮中快速冷凍至-180 ℃,將冷凍的樣品在真空條件下轉(zhuǎn)移至制備室。樣品于-90 ℃下升華20 min以去除水分。對樣品噴金處理后,在2 kV的加速電壓下操作以獲得FSG-Alg復合體系的cryo-SEM圖像。
每組實驗均至少做3次平行并取平均值,數(shù)據(jù)以平均值±標準差表示。利用SPSS 18.0軟件對數(shù)據(jù)進行ANOVA差異顯著性分析,P<0.05為顯著性差異。
各個FSG-Alg復配比的復合體系的濁度隨pH變化的曲線如圖1-a所示。
復合體系有4個關(guān)鍵pH拐點:pHc為可溶性復合物形成,pHφ1為不溶性復合物形成,pHopt為達到最大濁度,pHφ2為不溶性復合物解離[10]。FSG-Alg復合體系的初始pH值在5附近,此時復合體系形成不可溶性復合物,即pHφ1。繼續(xù)增加pH,體系濁度減小,在pH 6~7時達到最小值,形成可溶性復合物,即pHc。由于Alg遇酸會形成沉淀,所以除FSG∶Alg為8∶1外,在加入酸后均在pH 4時達到最大濁度,形成不可溶性復合物,即pHopt。FSG∶Alg為8∶1時未達到最大濁度的原因可能是Alg在體系中占比較小,FSG占據(jù)主導作用。繼續(xù)減小pH,樣品濁度開始減小,FSG-Alg復合體系濁度的結(jié)果與其相行為宏觀圖像(圖1-b)相對應。散射理論表明,復合體系濁度減少則體系內(nèi)顆粒減少[11]。當FSG-Alg比例在8∶1~1∶1,不可溶性復合物在pH 2時解離,即pHφ2,體系內(nèi)顆粒減少,FSG-Alg的復合體系澄清透明。當FSG-Alg比例為1∶2和1∶4時,復合體系的濁度隨著pH的降低而升高,說明在這2種濃度下復合體系結(jié)合的更為牢固,并未出現(xiàn)復合物解離的現(xiàn)象,pH的下降使得復合體系穩(wěn)定性更好。FSG-Alg復配比例為1∶4時,其濁度在pH下降過程中明顯小于FSG-Alg復配比為1∶2的濁度,這可能是因為Alg的濃度過高超過了蛋白能夠結(jié)合的多糖臨界濃度[12],過量的Alg降低了體系的pH穩(wěn)定性,使?jié)岫冉档?。結(jié)合上述理論分析,FSG-Alg復合體系在pH 7時出現(xiàn)可溶性復合物并呈共溶趨勢,并且在 FSG與Alg的配比為1∶2時,體系的穩(wěn)定性受pH變化影響較小。
a-FSG-Alg復合體系的濁度曲線與pH關(guān)系;b-宏觀相行為變化圖1 FSG-Alg復合體系的濁度曲線與pH關(guān)系及宏觀相行為變化Fig.1 Turbidity curve and pH relationship,and macroscopic phase behavior change of FSG-Alg composite system
如圖2-a所示,當pH 7時FSG帶溫和的正電荷,Alg帶強的負電荷,復合體系帶負電,隨著復合體系中Alg比例的加大,其Zeta電位的絕對值發(fā)生顯著性升高(P<0.05),FSG-Alg的復配比從8∶1變化到1∶2的過程中,體系的電位從(-16.77±0.76)mV降低到(-60.70±2.52)mV。這與牛付閣[13]研究的卵白蛋白-阿拉伯膠復合體系的電位變化趨勢相同,隨著陽離子蛋白濃度增加,電位趨于正值,Alg和FSG所帶的相反的電荷相互中和導致電位下降。由于Alg本身是一種陰離子多糖,當Alg濃度增大時,體系所帶的負電荷逐漸增加,這說明二者之間存在一種交互作用使其形成一種新的FSG-Alg復合物。當FSG∶Alg的復配比由1∶2增加到1∶4,電位沒有明顯的變化,這說明Alg與FSG的結(jié)合已經(jīng)達到飽和,繼續(xù)添加Alg并不會對復合體系產(chǎn)生影響。
a-pH 7;b-pH 4圖2 FSG和Alg的配比對復合體系Zeta電位的影響Fig.2 Influence of the ratio of FSG and Alg on Zeta potential
其次,由于多糖含量過高,架橋絮凝和損耗絮凝的作用會導致體系中分子間的復合受到抑制。
如圖2-b所示,pH為4時,FSG-Alg的復配比從8∶1變化到4∶1后電勢絕對值從(1.14±0.04)mV增大到(18.84±0.12) mV,說明體系在加入Alg后趨于穩(wěn)定。值得一提的是FSG-Alg的復配比從2∶1增加到1∶2時,電位由正轉(zhuǎn)為負,這可能是由于Alg的酸敏感性,在pH 4時部分的Alg會形成沉淀。濁度的結(jié)果也表明,在pH 4時,由于Alg沉淀的顆粒更大,FSG-Alg的復配比在2∶1~1∶1的樣品濁度顯著高于其余樣品。當FSG-Alg的復配比例在2∶1~1∶1時,Alg并未與FSG結(jié)合形成復合物,未結(jié)合的FSG導致了體系整體電位為正。繼續(xù)增加Alg,當FSG-Alg的復配比達到1∶2和1∶4時溶液體系電位的絕對值最高(>50 mV),這可能是因為FSG分子上的正電荷與Alg分子上的負電集團發(fā)生靜電吸引[14],使得復合體系的電勢增加。
蛋白質(zhì)的某些氨基酸,如色氨酸、苯丙氨酸等芳香族氨基酸殘基會由于復合體系中蛋白質(zhì)與多糖之間的相互作用而發(fā)生改變。通常根據(jù)內(nèi)源性熒光強度來分析其周圍環(huán)境的極性狀況以及相互作用的類型[15]。由圖3可知,隨著Alg的加入,熒光光譜的峰值未發(fā)生較大的偏移,說明Alg沒有使FSG的酪氨酸和色氨酸殘基的微環(huán)境發(fā)生太大的變化[16]。
pH為4時,FSG-Alg的復配比為8∶1時體系的熒光強度最低,體系中的多糖濃度增加后,其熒光強度有所增加,可能是蛋白質(zhì)發(fā)生了自聚集與Alg相互作用后使發(fā)色基團被包裹在其他大分子側(cè)鏈內(nèi),使熒光強度增加[17]。說明體系中的FSG-Alg復合物并非穩(wěn)定,而是以團聚體的形式存在,并且隨著Alg濃度上升,團聚更加明顯,當FSG-Alg的復配比為2∶1時,體系中的熒光強度達到最大值,表明此時體系的濁度最大,與濁度曲線(圖1-a)吻合。
a-pH 4;b-pH 7圖3 FSG和Alg的配比對復合體系熒光光譜的變化Fig.3 Effect of the ratio of FSG to Alg on the fluorescence spectrum of FSG-Alg composite system
pH為7時,FSG-Alg的復配比為8∶1時體系的熒光強度最高,并且隨著Alg比例的增加,體系的熒光強度逐漸減弱。這說明Alg的增加對熒光有猝滅效果[18],Alg與FSG發(fā)生了相互作用,Alg改變了FSG的空間構(gòu)象。當FSG與Alg配比達到1∶2后,增加Alg濃度,體系的熒光強度沒有發(fā)生大的轉(zhuǎn)變,結(jié)合之前的濁度與電位結(jié)果可知,多余的Alg游離在體系中,并未與FSG結(jié)合。薛瑾等[19]在研究茶多酚與酪蛋白的相互作用時也出現(xiàn)了類似的情況。蛋白與多糖間的相互作用會導致熒光猝滅致使熒光強度下降。在熒光猝滅機理的研究過程中,蛋白質(zhì)通常是作為熒光能量的供體,這些熒光供體與其他物質(zhì)(熒光猝滅劑即熒光能量受體)存在分子間的弱相互作用力,主要包括靜電作用力、范德華力、疏水作用力和氫鍵等[20]。
濁度結(jié)果表明,pH 4時所有比例的FSG-Alg溶液均形成不可溶沉淀,故僅對pH 7條件下FSG-Alg體系進行等溫滴定量熱測定。根據(jù)OVERBEEK等[21]的理論,蛋白質(zhì)和多糖的復合受靜電作用和熱力學作用的影響,與溶劑分子電荷相反的粒子結(jié)合成凝聚相,包埋了溶劑分子。由于分子重排的影響,凝聚相中溶劑分子的存在增加了體系的熵值。為了進一步了解FSG與Alg的熱力學相互作用,等溫滴定量熱法的結(jié)果如圖4所示。
圖4 FSG與Alg的等溫滴定曲線Fig.4 Isothermal titration curves of FSG and Alg
在pH 7時,在Alg滴定FSG過程中的焓變值始終為負(ΔH<0),說明FSG與Alg間的復合反應是放熱反應,并且是自發(fā)的(ΔG<0)。這個結(jié)果與已報道的復合物形成主要是由靜電相互作用引起的觀點相吻合[22]。在pH 7下FSG與Alg所帶電荷相反,兩者之間由靜電吸引產(chǎn)生的靜電作用力,釋放出了較多熱量。隨著Alg的滴定量增加,體系的焓變值不斷減小趨于穩(wěn)定。在FSG∶Alg=1∶2時出現(xiàn)滴定終點,繼續(xù)滴加Alg并不會引起熱量的變化,說明體系中FSG與Alg完全結(jié)合,沒有更多的結(jié)合位點產(chǎn)生靜電作用而放熱,因此體系的滴定熱會逐漸降低。整個熱力學相互作用過程中,體系的焓變值為(-23.24±2.49)kJ/mol,熵變值為(36.93±0.08)kJ/mol。孫亞天等[23]研究了pH 6時大豆蛋白與殼聚糖滴定的熱量變化。在焓變過程中隨著殼聚糖濃度的增加,放熱量逐漸降低直至最終體系穩(wěn)定。表明FSG和Alg的熱力學作用為靜電作用和負焓驅(qū)動的放熱反應,且在當FSG∶Alg=1∶2時達到焓變最大值。
如圖5所示,pH 4和pH 7條件下的FSG-Alg復合體系的微觀結(jié)構(gòu)有明顯的區(qū)別:pH 4時復合體系呈細絲狀堆疊的結(jié)構(gòu),并沒有穩(wěn)定完整的空間構(gòu)象,結(jié)合濁度的結(jié)果可知,由于Alg在酸性條件下產(chǎn)生沉淀,體系中蛋白與多糖間的靜電作用也相對較小,并且隨著Alg濃度增加,最終形成與pH 4時單純Alg溶液相似的片層狀的結(jié)構(gòu),表明此時Alg并沒有充分與FSG復合,復合體系相對不穩(wěn)定。
圖5 FSG和Alg的配比對復合體系空間結(jié)構(gòu)的影響Fig.5 Influence of the ratio of FSG to Alg on the spatial structure of the composite system
在pH 7時Alg的片層結(jié)構(gòu)較為平滑,有形成蜂窩狀的趨勢,而FSG的微觀結(jié)構(gòu)呈現(xiàn)細碎枝杈狀的結(jié)構(gòu)。如圖5所示,當FSG∶Alg>1∶1時,并沒有呈片層狀結(jié)構(gòu),當FSG∶Alg=1∶1和1∶2時,復合體系微觀結(jié)構(gòu)呈片層狀結(jié)構(gòu)。當FSG∶Alg=1∶4時,又呈與單純Alg相似的蜂窩狀結(jié)構(gòu)。這說明當FSG和Alg混合后,隨著Alg濃度增加,FSG特有的枝杈狀結(jié)構(gòu)出現(xiàn)在Alg的片層上,表明FSG-Alg結(jié)合形成了穩(wěn)定的空間結(jié)構(gòu)。當FSG∶Alg=1∶1和1∶2時,復合物中親水基團和疏水基團的比例接近0.5。MAI等[24]和BATES等[25]的研究結(jié)果同樣表明,當復合物中單體分子數(shù)量/整體聚合度為0.4~0.6時,兩親性小分子物質(zhì)在水中會自組裝呈片層狀。所以當FSG∶Alg=1∶1和1∶2時,復合體系呈穩(wěn)定的片層狀,繼續(xù)增加Alg的濃度,過量的Alg堆積形成蜂窩狀結(jié)構(gòu),影響復合體系的穩(wěn)定以及FSG與Alg間的相互作用。
本研究在不同pH條件下制備了不同F(xiàn)SG、Alg配比的蛋白質(zhì)-多糖復合體系。對復合體系進行濁度、Zeta電位、熒光光譜和ITC測定發(fā)現(xiàn):FSG-Alg復合體系在pH 7時共溶,在此pH下FSG-Alg的結(jié)合是最穩(wěn)定的;FSG-Alg復合體系中靜電作用占據(jù)主導,靜電作用隨著Alg濃度的增加而更加強烈,在FSG∶Alg為1∶2時復合體系的電荷量最高,FSG與Alg間的靜電作用最強,pH是影響靜電作用的主要因素。冷場掃描電鏡觀察到FSG與Alg在靜電力的作用下緊密結(jié)合,隨著Alg濃度的升高,Alg細絲更多的附著在FSG的枝杈網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)中。不同的是pH 7時FSG與Alg復合體系形成了更為穩(wěn)定的蜂窩狀結(jié)構(gòu),而pH 4時則呈片層狀結(jié)構(gòu),表明pH 7時FSG與Alg間的靜電作用更強。本研究對FSG和Alg相互結(jié)合的規(guī)律進行了初步探索,為今后的復合納米粒子或多層乳液制備提供了理論研究基礎(chǔ)。