楊凱琳,胡家豪,司景磊,陳獻(xiàn)欣,鄭啟源,田 奎,張 浪,陸陽清*,許常龍
(1廣西大學(xué)動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,廣西 南寧 530004;2廣西農(nóng)墾永新畜牧集團(tuán)有限公司,廣西 南寧 530300;3南寧市第二人民醫(yī)院生殖醫(yī)療中心,廣西 南寧 530031)
【研究意義】目前大部分種豬場采用人工授精(Artificial insemination,AI)進(jìn)行配種,旨在充分發(fā)揮種公豬的使用效率。種公豬精液品質(zhì)直接影響其繁殖性能及與配母豬的產(chǎn)仔數(shù)量和質(zhì)量,與豬場的經(jīng)濟(jì)效益緊密相關(guān)(王洋等,2019)。在實際生產(chǎn)中,精液的常規(guī)參數(shù)(采精量、精子密度和精子活力等)只能對公豬精液品質(zhì)及其繁殖力進(jìn)行部分評估(Myromslien et al.,2019),人工授精所用精液品質(zhì)評估不全面,通常會導(dǎo)致與配母豬的產(chǎn)仔率降低,而畸胎率和死胎率升高。因此,嚴(yán)格篩選優(yōu)質(zhì)的公豬精液對提高母豬活產(chǎn)仔數(shù)及保障豬場經(jīng)濟(jì)效益具有重要意義。【前人研究進(jìn)展】為全面評估精子質(zhì)量,精子DNA碎片檢測等手段為深度評估種公豬繁殖力提供了技術(shù)支撐。精子DNA碎片是由精子DNA損傷引起(Sakkas and Alvarez,2010),通常以精子DNA碎片指數(shù)(DNA fragmentation index,DFI)表示精子DNA完整性,高DFI表明染色質(zhì)結(jié)構(gòu)異常(Evenson and Jost,2000)。據(jù)報道,精子DNA完整性降低會對精子質(zhì)量和胚胎發(fā)育產(chǎn)生影響(McQueen et al.,2019;Mateo-Otero et al.,2022)。目前,分析精子DNA完整性最常用的方法有缺口末端標(biāo)記法(TUNEL)、精子染色質(zhì)結(jié)構(gòu)分析(SCSA)及精子染色質(zhì)擴(kuò)散試驗(SCD)(Sakkas and Alvarez,2010)。SCSA可通過流式細(xì)胞術(shù)評估精子DNA碎片化(Evenson et al.,1994),其原理是利用吖啶橙(AO)染料的異染性,與雙鏈DNA(dsDNA)結(jié)合時發(fā)出綠色熒光,與單鏈DNA(ssDNA)結(jié)合時發(fā)出紅色熒光。SCSA已廣泛應(yīng)用于不同物種的精子質(zhì)量評估,對物種繁育情況具有較高的評估潛力。Love(2005)研究認(rèn)為,在相同精液儲存條件下,低繁殖力種馬精子DNA碎片率升高的速度較高繁殖力種馬快;Tsakmakidis等(2012)的研究結(jié)果表明,青年公豬的精子DNA不穩(wěn)定性顯著高于成年公豬,但與老年公豬無顯著差異;Bielas等(2017)研究發(fā)現(xiàn)波蘭大白公豬的精子DFI與精子活率及活力呈負(fù)相關(guān);Morrell等(2018)對肉牛和奶牛的精子進(jìn)行質(zhì)量評估,結(jié)果發(fā)現(xiàn)奶牛精子DNA完整性高于肉牛?!颈狙芯壳腥朦c】精子DFI檢測作為進(jìn)一步評估精液品質(zhì)的補(bǔ)充方法,能有效預(yù)測種公豬的繁殖潛力,但至今鮮見針對長白公豬繁殖力與精子DFI相關(guān)的研究報道?!緮M解決的關(guān)鍵問題】以高繁殖力和低繁殖力的法系長白種公豬為研究對象,統(tǒng)計分析其與配母豬的繁育數(shù)據(jù),利用計算機(jī)輔助精子分析系統(tǒng)(CASA)對精液品質(zhì)進(jìn)行常規(guī)參數(shù)評估分析,并對精子DNA碎片進(jìn)行流式細(xì)胞儀檢測,分析不同產(chǎn)仔數(shù)的公豬精子DFI差異,為篩選出高繁殖力種公豬提供參考依據(jù),進(jìn)而優(yōu)化豬場人工授精工作及提高種豬場的經(jīng)濟(jì)效益。
供試的12頭種公豬均來自廣西南寧種豬場,為具有完整繁育記錄的法系長白公豬(23~40月齡)。每頭種公豬隔4~6 d采精1次,固定采精時間及采精員。繁育數(shù)據(jù)分析所選每頭種公豬與配母豬的配種分區(qū)、配種舍及配種方式保持一致,且保證單一公豬配種,公豬和母豬的健康狀況良好。主要儀器設(shè)備及試劑耗材:光學(xué)顯微鏡和精子分析儀購自MOFA公司,恒溫箱購自北京福意聯(lián)醫(yī)療設(shè)備有限公司,流式細(xì)胞儀(CytoFLEX)購自美國Beckman Coulter公司,采精袋和一次性精子計數(shù)玻片購自德國Minitube公司,全能健豬精液稀釋粉購自日本ZENOAQ公司,精子核完整性染色試劑盒購自浙江星博生物科技股份有限公司,活性氧檢測試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)有限公司。
1.2.1 公豬精液采集與稀釋 公豬精液樣本通過假母臺法采取,并以采精袋收集,讓精液自然流過濾網(wǎng),棄上層過濾袋,然后在精液袋貼上公豬ID及采精員標(biāo)簽,即完成原精液采集。根據(jù)采精量、精子密度等計算稀釋頭份(30億精子/80 mL),按稀釋頭份將稀釋液沿著盛放精液的杯子內(nèi)壁緩慢注入,并輕輕攪拌均勻。稀釋好的精液降溫2 h后,置于17 ℃恒溫箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 精液品質(zhì)檢測 吸取2.5 μL稀釋精液樣本加入到精子計數(shù)玻片的點樣區(qū)域,通過CASA對公豬精液品質(zhì)進(jìn)行檢測分析,包括采精量、精子密度、精子活力、精子畸形率及精子運動參數(shù)等。
1.2.3 精子DFI測定 利用SCSA對精子DFI進(jìn)行測定,首先向稀釋好的精液中加入100 μL精子核完整性染色試劑盒中的A液,稀釋至1×106精子/mL,然后加入200 μL B液反應(yīng)30 s,最后加入600 μL C液進(jìn)行染色處理,孵育5 min后上流式細(xì)胞儀檢測。采集FITC和PC5.5通道的熒光信號,分別代表dsDNA(綠色)和ssDNA(紅色)的熒光強(qiáng)度,DFI以紅色/(紅色+綠色)的熒光比百分?jǐn)?shù)表示。
1.2.4 精子活性氧(ROS)測定 先取適量稀釋好的精液樣本進(jìn)行離心處理(400×g,10 min),棄上清液,保留精子細(xì)胞沉淀;然后加入適量PBS,稀釋至1×106精子/mL,離心(600×g,5 min)洗滌精子,收集精子細(xì)胞沉淀。吸取1 μL DCFH-DA探針加入1 mL PBS進(jìn)行稀釋,37 ℃孵育20 min后以PBS洗滌(600×g離心3 min)3次。精子中的ROS能將無熒光的DCFH氧化成具有綠色熒光的DCF,因此可通過流式細(xì)胞儀檢測綠色熒光精子細(xì)胞比例。
利用GraphPad Prism 7.0進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,并通過t檢驗進(jìn)行顯著性檢驗。
為區(qū)分高繁殖力和低繁殖力公豬,選取12頭法系長白公豬,對與配母豬繁育數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析,平均窩產(chǎn)仔數(shù)高于13.50頭判定為高繁殖力公豬,平均窩產(chǎn)仔數(shù)低于13.50頭則為低繁殖力公豬,確定高繁殖力組和低繁殖力組公豬各6頭。表1為高繁殖力和低繁殖力長白公豬的具體繁育數(shù)據(jù)。如圖1所示,高繁殖力公豬的平均窩產(chǎn)仔數(shù)和活產(chǎn)仔數(shù)均極顯著高于低繁殖力公豬(P<0.01,下同),但二者的畸胎數(shù)和死胎數(shù)差異不顯著(P>0.05,下同)。
圖1 高繁殖力和低繁殖力長白公豬繁育性能的比較Fig.1 Reproductive data analysis and statistics of Landrace boars with high and low reproductive performance
表1 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的繁育數(shù)據(jù)Table 1 Reproductive data of Landrace boars with high and low reproductive performance
為了比較高繁殖力和低繁殖力公豬的精液品質(zhì),對12頭供試長白公豬各采精35次,通過CASA對其精液品質(zhì)進(jìn)行分析。由圖2可看出,高繁殖力公豬的精子運動擺尾幅度較低繁殖力公豬精子的大。在采精量、精子密度和精子活力方面,高繁殖力公豬與低繁殖力公豬間的差異均不顯著(表2),但高繁殖力公豬精子的前進(jìn)運動率顯著高于低繁殖力公豬精子(89.86±3.11 vs 78.10±3.85)(P<0.05,下同),且低繁殖力公豬精子畸形率極顯著高于高繁殖力公豬(0.12±0.01 vs 0.08±0.01)。
圖2 高繁殖力和低繁殖力長白公豬精子的CASA分析圖像Fig.2 CASA analysis image of sperm of Landrace boars with high and low reproductive performance
由表2已知低繁殖力公豬精子畸形率極顯著高于高繁殖力公豬,為進(jìn)一步明確二者間的精子畸形差異,對其畸形參數(shù)進(jìn)行比較分析,但結(jié)果(表3)顯示高繁殖力和低繁殖力公豬精子在近端原生質(zhì)滴率、遠(yuǎn)端原生質(zhì)滴率及折尾率等方面的差異均不顯著。
表2 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精液品質(zhì)比較Table 2 Semen quality comparison of Landrace boars with high and low reproductive performance
表3 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子畸形參數(shù)比較Table 3 Sperm abnormal parameters comparison of Landrace boars with high and low reproductive performance
通過CASA分析得到高繁殖力和低繁殖力公豬的精子運動參數(shù)(表4),除了高繁殖力公豬精子的曲線速率(VCL)顯著高于低繁殖力公豬(131.10±3.79 vs 116.10±4.12)外,其他的運動參數(shù)均無顯著差異。
表4 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子運動參數(shù)比較Table 4 Sperm motility parameters comparison of Landrace boars with high and low reproductive performance
為了比較高繁殖力和低繁殖力公豬的精子DFI差異,采用染色質(zhì)結(jié)構(gòu)分析結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測長白公豬精子DFI,結(jié)果(表5和圖3)顯示,高繁殖力公豬的精子DFI極顯著低于低繁殖力公豬(0.80±0.04 vs 1.65±0.12)。同時通過流式細(xì)胞儀對精子細(xì)胞進(jìn)行DCF熒光強(qiáng)度檢測,對比分析高繁殖力和低繁殖力公豬精子ROS水平差異,結(jié)果(表5和圖4)顯示,高繁殖力公豬的精子ROS水平也極顯著低于低繁殖力公豬(1.00±0.08 vs 2.03±0.19)。
圖3 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子DFI分析結(jié)果Fig.3 Sperm DFI data analysis of Landrace boars with high and low reproductive performance
圖4 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子ROS水平分析結(jié)果Fig.4 Sperm ROS level analysis of Landrace boars with high and low reproductive performance
表5 高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子DFI與ROS水平比較Table 5 Sperm DFI and ROS level comparison of Landrace boars with high and low reproductive performance
長白公豬產(chǎn)仔數(shù)與各項精液質(zhì)量參數(shù)的相關(guān)分析結(jié)果如圖5所示。公豬產(chǎn)仔數(shù)與精子DFI呈高度負(fù)相關(guān)(r=-0.85)、與精子畸形率(r=-0.70)和精子ROS水平(r=-0.78)呈中度負(fù)相關(guān);公豬精子畸形率與精子DFI(r=0.63)和ROS水平(r=0.62)呈中度正相關(guān);精子DFI與ROS水平呈高度正相關(guān)(r=0.93)。公豬日齡與精子DFI、產(chǎn)仔數(shù)不存在相關(guān)性,且其他精液質(zhì)量參數(shù)與產(chǎn)仔數(shù)間的相關(guān)性也較弱或不存在相關(guān)性。
圖5 長白公豬產(chǎn)仔數(shù)與精液質(zhì)量參數(shù)的相關(guān)性Fig.5 Correlation between litter size and semen quality parameters of Landrace boars
評估公豬繁殖效率對于優(yōu)化種豬生產(chǎn)中的人工授精技術(shù)流程具有重要意義,而精液品質(zhì)決定了公豬的繁殖效率(Foote,2003;陳集成等,2022)。傳統(tǒng)的精液品質(zhì)檢測對評估公豬繁育性能存在一定局限性,CASA分析和精子DFI檢測能輔助傳統(tǒng)檢測技術(shù),實現(xiàn)對公豬繁育性能進(jìn)行更全面、更客觀、更科學(xué)地評估。人工授精站通常利用CASA分析精子的各種運動特征,以提高精液品質(zhì)和精子運動力評估的準(zhǔn)確性和客觀性(Kummer et al.,2013)。其中,VCL和平均路徑速率(VAP)等參數(shù)能有效反映精子活力,精子的運動速度分級主要由VCL決定。本研究結(jié)果顯示,高繁殖力長白公豬精子的VCL顯著高于低繁殖力長白公豬,二者的精子活力雖然無顯著差異,但呈現(xiàn)精子活力越高其產(chǎn)仔數(shù)越多的變化趨勢,與張軍榮等(2015)的研究結(jié)果一致,即VCL與精子活力密切相關(guān)。
DNA是精子遺傳信息的重要載體,主要位于精子頭部,部分位于線粒體鞘,若精子DNA受損傷則導(dǎo)致精子功能缺陷。本研究結(jié)果表明,高繁殖力和低繁殖力長白公豬的精子DFI均處于較低水平(0.70%~2.22%),平均為1.18%,與Batista等(2016)、Bielas等(2017)的研究結(jié)果基本一致,即公豬精子DFI均低于5%。由于現(xiàn)有的研究尚未對公豬精子DFI進(jìn)行閾值劃定,因此本研究僅依據(jù)高、低繁殖力公豬的精子DFI數(shù)據(jù)進(jìn)行分組,二者間存在顯著差異。Bungum等(2007)曾研究報道,精子DNA損傷會改變精子的運動及形態(tài)。本研究對長白公豬精子DFI與精液品質(zhì)參數(shù)的相關(guān)分析結(jié)果表明,公豬精子畸形率與精子DFI呈中度正相關(guān)(r=0.63),與黃學(xué)鋒等(2010)、孫超等(2011)、龔道元等(2012)的研究結(jié)果基本一致,即精子DFI與正常形態(tài)率呈負(fù)相關(guān)。
精子DNA受損最終導(dǎo)致受精率下降和雄性不育(譚艷和范立青,2017)。本研究通過分析高繁殖力和低繁殖力長白公豬的繁育性能和精子DFI,以評估精子DFI對公豬繁殖力的影響,結(jié)果表明,低精子DFI公豬與配母豬的平均窩產(chǎn)仔數(shù)為14.10頭、平均活產(chǎn)仔數(shù)為13.11頭,分別顯著高于高精子DFI公豬與配母豬的平均窩產(chǎn)仔數(shù)(12.93頭)和平均活產(chǎn)仔數(shù)(11.88頭);相關(guān)分析結(jié)果也顯示長白公豬產(chǎn)仔數(shù)與精子DFI呈高度負(fù)相關(guān)。因此,推測公豬精子DNA損傷會導(dǎo)致與配母豬的產(chǎn)仔數(shù)下降,與Mateo-Otero等(2022)的研究結(jié)果一致。Boe-Hansen等(2008)對漢普夏豬、丹麥大白豬和長白豬的研究發(fā)現(xiàn),精子DFI<1.5%及1.5%<DFI<3.0%的公豬產(chǎn)仔數(shù)明顯高于精子DFI>3.0%的公豬,接近于每窩減少1頭仔豬的差異,其產(chǎn)仔數(shù)差異對豬場經(jīng)濟(jì)效益影響顯著。
目前,有關(guān)精子DNA損傷的產(chǎn)生機(jī)制主要有3種:組蛋白—魚精蛋白轉(zhuǎn)變失敗、氧化應(yīng)激和細(xì)胞異常凋亡。其中,氧化應(yīng)激是導(dǎo)致精子DNA損傷的主要原因,過量的ROS會導(dǎo)致氧化還原失衡,造成DNA單鏈或雙鏈斷裂(Muratori et al.,2015)。Barroso等(2000)研究發(fā)現(xiàn),DNA片段化與ROS的產(chǎn)生呈顯著正相關(guān)。本研究結(jié)果也表明,精子DFI與ROS水平呈高度正相關(guān)(r=0.93),且低精子DFI的公豬精子ROS水平顯著低于高精子DFI的公豬,即氧化應(yīng)激導(dǎo)致精子DNA損傷。Ren等(2020)研究發(fā)現(xiàn),在公豬冷凍精液中加入抗氧化劑NR1能減少ROS產(chǎn)生,提高公豬精子質(zhì)量及產(chǎn)仔率。Rodríguez-Tobón等(2021)評估谷胱甘肽(GSH)作為抗氧化劑對公豬精子及體外受精后胚胎發(fā)育的作用,結(jié)果表明,低濃度GSH可平衡ROS的產(chǎn)生,防止因過多ROS而降低精子活力和破壞頂體完整性,有效提高囊胚率。本研究也發(fā)現(xiàn),高繁殖力公豬的精子ROS水平極顯著低于低繁殖力公豬,結(jié)合精子DFI與ROS水平呈正相關(guān)的結(jié)論,可以確定精子ROS水平過高會導(dǎo)致公豬精子DFI升高,進(jìn)而降低公豬產(chǎn)仔率。
精子DNA碎片化與公豬繁殖力密切相關(guān),即精子DFI可為評估公豬精液品質(zhì)及繁殖力提供重要參考依據(jù)。因此,在篩選種公豬時精子DFI檢測可作為公豬精子質(zhì)量評估的補(bǔ)充手段,以協(xié)同人工授精技術(shù)提高受精率及豬場經(jīng)濟(jì)效益,進(jìn)而推動養(yǎng)豬業(yè)的高質(zhì)量發(fā)展。