田夏瓊,江華明,關(guān)統(tǒng)偉 *,楊 涵,彭 忠,林宜錦,張家旭,趙小林
(1.西華大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,四川 成都 610039;2.四川職業(yè)技術(shù)學(xué)院 食品與生物技術(shù)學(xué)院,四川 遂寧 629099;3.成都蜀之源酒業(yè)有限公司,四川 成都 611335)
白酒屬于世界六大蒸餾酒之一,是我國(guó)特有的傳統(tǒng)酒精飲料,已經(jīng)有數(shù)千年的文化歷史[1]。白酒文化的起源可以追溯到龍山文化時(shí)期,其多種微生物自然接種、長(zhǎng)時(shí)間、開(kāi)放式的固態(tài)發(fā)酵獨(dú)特工藝,造就了我國(guó)白酒不同于西方蒸餾酒純種液態(tài)發(fā)酵的風(fēng)格特征[2]。新中國(guó)成立后,白酒產(chǎn)業(yè)得到黨和政府的高度重視,從提高產(chǎn)量、質(zhì)量,改進(jìn)生產(chǎn)工藝與設(shè)備等方面組織了多次技術(shù)攻關(guān),取得了豐碩成果。如20世紀(jì)60年代后的白酒微生物技術(shù)以及后來(lái)的現(xiàn)代微生物技術(shù)[3-4];20世紀(jì)70-80年代的白酒機(jī)械化和低度白酒生產(chǎn)技術(shù)[5];20世紀(jì)90年代的固液結(jié)合白酒生產(chǎn)技術(shù)[6];21世紀(jì)初的“中國(guó)白酒169計(jì)劃”(白酒風(fēng)味及其微生物新技術(shù))、“中國(guó)白酒158計(jì)劃”(白酒機(jī)械化、自動(dòng)化和智能化)和“中國(guó)白酒3C計(jì)劃”(品質(zhì)誠(chéng)實(shí)、服務(wù)誠(chéng)心、產(chǎn)業(yè)誠(chéng)信)[7]。這一系列的研究,使我國(guó)白酒產(chǎn)量從1949年的10.4萬(wàn)kL提高到2017年的1 200萬(wàn)kL;產(chǎn)值近6 000億元,約占國(guó)內(nèi)生產(chǎn)總值的0.5%左右。
隨著白酒產(chǎn)業(yè)的迅速發(fā)展,我國(guó)對(duì)白酒產(chǎn)品的質(zhì)量也提出了更高的要求。其中白酒生產(chǎn)全過(guò)程中的安全風(fēng)險(xiǎn)物質(zhì)是衡量白酒質(zhì)量安全的關(guān)鍵指標(biāo),一般將其分為外源性和內(nèi)源性兩類[8]。內(nèi)源性風(fēng)險(xiǎn)物質(zhì)是指白酒在釀造發(fā)酵過(guò)程中生成的有害副產(chǎn)物,主要包括氨基甲酸乙酯(ethyl carbamate,EC)、氰化物、甲醇和生物胺等,其特點(diǎn)是無(wú)法完全避免,只能在了解物質(zhì)發(fā)酵生成機(jī)理的基礎(chǔ)上盡量減少白酒生產(chǎn)過(guò)程中相關(guān)副產(chǎn)物的產(chǎn)生,并控制該類副產(chǎn)物由原酒遷移到成品酒中的含量,從而降低內(nèi)源性風(fēng)險(xiǎn)物質(zhì)對(duì)人體健康的潛在危害[9]。
氨基甲酸乙酯(EC)俗稱尿烷、乙基尿烷,是酒精飲料(白酒、葡萄酒、啤酒、清酒、黃酒等)在生產(chǎn)和貯存過(guò)程中產(chǎn)生的一種天然副產(chǎn)物[10-11]。在日常生活中,酒精飲料是人體直接攝入EC的重要來(lái)源。(聯(lián)合國(guó))食品添加劑法規(guī)委員會(huì)(Codex Committee on Food Additive,CCFA)指出[12],人體從酒精飲品中攝入的EC含量平均為65 ng/(kg·d),約為通過(guò)食物攝入量的近5倍。EC在2007年已被世界衛(wèi)生組織國(guó)際癌癥研究機(jī)構(gòu)(International Agency for Research on Cancer,IARC)歸為2A類致癌物[13]??梢?jiàn),飲料酒既是大多數(shù)人攝入EC最主要的途徑,也是危害人體健康的EC的最直接來(lái)源。發(fā)酵和蒸餾是白酒釀造的兩個(gè)重要環(huán)節(jié)[14],此前已有大量關(guān)于黃酒或葡萄原酒以及成品酒中EC含量的研究報(bào)道,發(fā)現(xiàn)影響EC含量的因素是復(fù)雜多樣的,其中釀造的環(huán)境因素被認(rèn)為是影響EC含量的主要原因[15-16]。隨著研究的深入,越來(lái)越多的研究者發(fā)現(xiàn)微生物也是影響酒中EC含量的不可忽視的因素[17]。系統(tǒng)的研究中國(guó)白酒發(fā)酵過(guò)程中EC形成原因?qū)ξ覈?guó)白酒的飲用安全性以及白酒產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)健康發(fā)展是有利的。因此本研究以濃香型白酒發(fā)酵糟醅為主要研究對(duì)象,持續(xù)監(jiān)測(cè)發(fā)酵過(guò)程中的EC含量,環(huán)境因子以及微生物的群落變化,以確定濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中理化因素及微生物與EC含量的關(guān)系,為探索控制白酒中EC含量的措施提供參考數(shù)據(jù)。
酒醅樣本:中國(guó)四川省某知名白酒企業(yè)隨機(jī)選取三個(gè)平行窖池,分別于0 d、7 d、15 d、25 d、45 d、70 d、95 d這7個(gè)酒糟發(fā)酵節(jié)點(diǎn),參照GUAN T W等[18]的方法,在窖池上、中層等距離取樣,每個(gè)窖池共6個(gè)平行樣,每個(gè)發(fā)酵時(shí)間節(jié)點(diǎn)樣本由18個(gè)樣本混合均勻而成。采用無(wú)菌袋運(yùn)輸樣本回實(shí)驗(yàn)室,4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
實(shí)驗(yàn)試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。
PHS-320酸度計(jì):上海儀電科學(xué)儀器有限公司;BZF-50真空干燥箱:上海博訊實(shí)業(yè)有限公司;BSA224S-CW萬(wàn)分之一天平:賽多利斯科學(xué)儀器有限公司;2020NX氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS):日本島津公司;PowerSoil脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)Isolation Kit試劑盒:上海生工生物工程股份有限公司;聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerasechain reaction,PCR)Purification Kit試劑盒:賽默飛世爾科技有限公司。
1.3.1 氨基甲酸乙酯含量測(cè)定
參照參考文獻(xiàn)[15]的方法測(cè)定酒醅的EC含量:將20 g酒醅樣品與100 μL 1.0 g/L的d5-EC混勻,靜置過(guò)夜。次日添加蒸餾水稀釋混勻,超聲(功率60 W,超聲頻率40 kHz)浸提1 h后離心。取浸提液20 μL與0.1 g氯化鈉混合到離心管中。3 000 r/min旋轉(zhuǎn)1 min后,將混合物倒入硅藻土固相萃取柱中靜置10 min。使用10 mL正己烷進(jìn)行淋洗后,用10 mL 5%乙酸乙酯-乙醚溶液以約1 mL/min流速進(jìn)行洗脫。收集的洗脫液經(jīng)過(guò)濾、無(wú)水硫酸鈉脫水,收集于10 mL刻度試管中。室溫條件下用氮?dú)饩従彺抵良s0.5 mL,用甲醇定容至1 mL制成測(cè)定液,供GC-MS分析。進(jìn)樣口溫度為200 ℃,氦氣(He)流速為1 mL/min。
MS傳輸線溫度為250 ℃,MS源溫度為230 ℃。選擇m/z 64(氨基甲酸酯-d5)和m/z 62(氨基甲酸酯-d5)進(jìn)行定量分析。EC監(jiān)測(cè)離子為m/z 44、m/z 62、m/z 89,內(nèi)標(biāo)監(jiān)測(cè)離子為m/z 44、m/z 64、m/z 76。
1.3.2 環(huán)境因子的動(dòng)態(tài)變化
(1)溫度的測(cè)定
采用探針式溫度計(jì)檢測(cè)窖池中層酒糟的溫度,每個(gè)發(fā)酵節(jié)點(diǎn)在同一時(shí)段記錄三個(gè)平行窖池的溫度數(shù)據(jù)。
(2)水分的測(cè)定
在每個(gè)發(fā)酵節(jié)點(diǎn)稱取約10 g酒醅樣品(m),讀取質(zhì)量m1,在105 ℃條件下將樣品烘干至質(zhì)量恒定,隨后冷卻至室溫,再次稱質(zhì)量(m2)。水分含量計(jì)算公式如下:
(3)pH的測(cè)定
在每個(gè)發(fā)酵節(jié)點(diǎn)準(zhǔn)確稱取酒醅樣本10 g與50 mL去離子水混合均勻,靜置后用pH計(jì)測(cè)定酒醅樣品的pH值。
(4)乙醇含量的測(cè)定
在每個(gè)發(fā)酵節(jié)點(diǎn)準(zhǔn)確稱取酒醅50g置于500mL圓底燒瓶中,加入150 mL蒸餾水,加熱取餾出液。按照GB 5009.225—2016《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)酒中乙醇濃度的測(cè)定》,檢測(cè)餾出液的酒精度。
1.3.3 發(fā)酵過(guò)程中微生物分析
準(zhǔn)確稱取酒醅樣品8 g,采用PowerSoil DNA Isolation Kit試劑盒提取酒醅DNA,具體操作按說(shuō)明書(shū)使用。PCR所用的引物為515F/806R以及ITS5-1737F/ITS2-2043R。PCR擴(kuò)增程序?yàn)椋?4 ℃預(yù)變性5 min;(94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸45 s)32 個(gè)循環(huán);72 ℃保持5 min。PCR產(chǎn)物采用PCR Purification Kit試劑盒進(jìn)行純化[19]。純化后的PCR產(chǎn)物由上海生物工程股份有限公司完成高通量測(cè)序。所有原始數(shù)據(jù)保存在美國(guó)國(guó)家生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)數(shù)據(jù)庫(kù),登陸號(hào)為PRJNA 622890。原始數(shù)據(jù)通過(guò)Qiime-pipeline(v.1.8.0)進(jìn)行處理。選取置信度為80%的閾值對(duì)每個(gè)操作分類單元(operational taxonomic unit,OTU)的代表序列進(jìn)行分類,得到每個(gè)OTU的屬水平分類。
濃香型白酒中EC含量在發(fā)酵期間的變化趨勢(shì)見(jiàn)圖1。
圖1 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中氨基甲酸乙酯含量變化Fig.1 Changes of ethyl carbamate content during strong-flavor Baijiu fermentation
由圖1可知,EC含量隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)呈先緩升后快速增加,再達(dá)到穩(wěn)定的趨勢(shì),EC的積累主要發(fā)生在白酒發(fā)酵的中后期。發(fā)酵前15 d,EC積累速率較慢,EC含量從85.12 μg/kg增至102.78 μg/kg;15 d之后,EC生成速率逐漸加快;至發(fā)酵70 d時(shí),酒醅中EC含量達(dá)到188.34 μg/kg;此后(70~95 d)EC含量維持在相對(duì)穩(wěn)定的水平。此結(jié)果與梁晨[20]通過(guò)對(duì)醬香型白酒和芝麻香型白酒發(fā)酵30 d的追蹤得出的EC含量總體變化趨勢(shì)一致。
濃香型白酒發(fā)酵期間溫度和pH變化見(jiàn)圖2,水分和乙醇含量的變化見(jiàn)圖3。
圖2 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中溫度和pH值的變化Fig.2 Changes of temperature and pH during strong-flavor Baijiu fermentation
圖3 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中水分和乙醇含量的變化Fig.3 Changes of moisture and ethanol content during strong-flavor Baijiu fermentation
由圖2可知,0~7 d是發(fā)酵微生物初適應(yīng)階段,在此過(guò)程中溫度變化緩慢,從19.09 ℃升至20.38 ℃;隨后發(fā)酵體系開(kāi)始迅速升溫,在發(fā)酵第25天時(shí)溫度達(dá)到最高(33.76 ℃);在發(fā)酵的中后期(25~95 d),表現(xiàn)出降溫趨勢(shì),但溫度仍高于初始發(fā)酵期間,最終(95 d)溫度為26.99 ℃。濃香型白酒發(fā)酵期間pH值呈現(xiàn)整體下降趨勢(shì)。在發(fā)酵0~25 d,pH值下降速率較快,從pH3.96降至3.51;此后,pH值下降速率緩慢,至發(fā)酵結(jié)束時(shí),pH值為3.34。
由圖3可知,濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中水分含量在發(fā)酵前期(0~25 d)呈穩(wěn)定上升趨勢(shì),在第25天時(shí),水分含量為65.78%;之后水分含量維持基本恒定狀態(tài),到發(fā)酵結(jié)束時(shí),水分含量為64%。濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中乙醇含量變化趨勢(shì)與水分含量基本一致。發(fā)酵前25 d乙醇含量不斷提高,在第25天達(dá)到最大值,為7.46%vol;此后乙醇含量呈下降趨勢(shì)直至發(fā)酵結(jié)束(5.02%vol),數(shù)量變值在2%以內(nèi)。
本研究采用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌、真菌類群構(gòu)成進(jìn)行了揭示,并對(duì)其在屬水平上的注釋結(jié)果進(jìn)行了分析,結(jié)果見(jiàn)圖4、圖5。
濃香型白酒發(fā)酵中屬水平上豐度較高的細(xì)菌群落分布見(jiàn)圖4。由圖4可知,與數(shù)據(jù)庫(kù)比較后,10個(gè)主要的高豐度細(xì)菌群落分別為乳桿菌屬(Lactobacillus)、魏斯氏菌屬(Weissella)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、片球菌屬(Pediococcus)、科薩克氏菌屬(Kosakonia)、葡萄球菌屬(Staphylococcus)、泛菌屬(Pantoea)、發(fā)酵單胞菌屬(Fermentimonas)以及未被培養(yǎng)的厭氧繩菌屬(Anaerolineaceae)和擬桿菌屬(Bac teroides)。乳桿菌屬是整個(gè)發(fā)酵期間的優(yōu)勢(shì)菌屬,占比為5.14%~87.79%。并且隨著發(fā)酵時(shí)間的增加,Lactobacillus逐漸占據(jù)絕對(duì)主導(dǎo)地位。此外,魏斯氏菌屬在發(fā)酵前15 d占據(jù)優(yōu)勢(shì)(2.06~12.08%),此后相對(duì)豐度持續(xù)減小,到發(fā)酵后期僅為0.34%。芽孢桿菌屬、片球菌屬、科薩克氏菌屬以及泛菌屬在白酒發(fā)酵期間的相對(duì)豐度變化趨勢(shì)與Weissella基本一致,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,相對(duì)豐度都持續(xù)下降。值得注意的是,葡萄球菌屬在未發(fā)酵時(shí)(D0),其相對(duì)豐度占比(5.57%)較高,發(fā)酵期間豐度低(0.13%~0.79%),而發(fā)酵末期豐度有較大提升,達(dá)到2.18%。
圖4 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬相對(duì)含量Fig.4 Relative contents of dominant bacteria genus during strongflavor Baijiu fermentation
由圖5可知,與數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)比發(fā)現(xiàn),濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中有7個(gè)主要的真菌群相對(duì)豐度較高。包括哈薩克斯坦酵母屬(Kazachstania)、嗜熱子囊菌屬(Thermoascus)、曲霉屬(Aspergillus)、釀酒酵母屬(Saccharomyces)、嗜熱酵母屬(Thermomyces)、德巴利酵母屬(Debaryomyces)和未分類的屬。其中哈薩克斯坦酵母屬占比為0.01%~74%,但是隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)其相對(duì)豐度呈持續(xù)下降的趨勢(shì)。嗜熱子囊菌屬以及曲霉屬的相對(duì)豐度都隨著發(fā)酵的進(jìn)行有所減少。此外,嗜熱酵母屬和德巴利酵母屬幾乎只存在于發(fā)酵末期。釀酒酵母屬(0~24%)在整個(gè)發(fā)酵期間也占據(jù)優(yōu)勢(shì)地位,并且在發(fā)酵中期其相對(duì)豐度呈上升趨勢(shì)。
圖5 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中優(yōu)勢(shì)真菌屬相對(duì)含量Fig.5 Relative content of dominant fungi genus during strong-flavor Baijiu fermentation
為揭示環(huán)境因子對(duì)發(fā)酵期間EC含量的影響,利用Pearson量化兩者之間的相關(guān)性,結(jié)果見(jiàn)圖6。由圖6可知,EC含量的變化主要由pH以及水分含量驅(qū)動(dòng),兩者與EC含量的相關(guān)性系數(shù)分別為0.9和0.83,水分含量呈正相關(guān),而pH值呈負(fù)相關(guān)。相比之下,溫度和乙醇含量對(duì)EC的形成起到一定的促進(jìn)作用,但效果并不顯著,相關(guān)系數(shù)分別為0.48和0.71。
圖6 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中環(huán)境因子對(duì)氨基甲酸乙酯含量的影響Fig.6 Effects of environmental factors on ethyl carbamate content during strong-flavor Baijiu fermentation
之前的研究表明,較低的發(fā)酵溫度對(duì)減少EC的前體物質(zhì)與乙醇反應(yīng)速率上起到積極影響[21],并有研究者認(rèn)為溫度是影響EC含量至關(guān)重要的原因,然而本研究得出相反的結(jié)論??紤]到各研究選擇的發(fā)酵周期不一,推測(cè)溫度對(duì)于長(zhǎng)周期發(fā)酵下的EC含量并無(wú)顯著影響。pH對(duì)EC含量的影響可能在于pH對(duì)EC前體尿素的作用,pH值越高,尿素的去除率越高[22],因此pH可通過(guò)對(duì)尿素的影響從而起到調(diào)控EC含量的作用。目前暫未發(fā)現(xiàn)發(fā)酵過(guò)程中水分含量和乙醇含量與EC的相關(guān)性研究,本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明水分含量的增加會(huì)促進(jìn)EC的積累,因此可調(diào)節(jié)發(fā)酵窖池里的水分含量來(lái)控制EC的合成。
如圖7所示,總體來(lái)說(shuō),大部分白酒發(fā)酵過(guò)程中的優(yōu)勢(shì)微生物菌屬對(duì)EC的積累無(wú)顯著影響作用。Pearson分析表明,乳酸菌屬(Lactobacillus)以及芽孢桿菌屬(Bacillus)是響應(yīng)EC變化的主要細(xì)菌屬(圖7A),其中Lactobacillus的豐度與EC含量呈顯著正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.97。與之相反的是芽孢桿菌屬,其豐度越高,發(fā)酵體系中產(chǎn)生的EC越少,相關(guān)系數(shù)為0.78。在真菌群落中,釀酒酵母菌屬(Saccharomyces)是唯一能顯著推動(dòng)EC形成的菌屬(圖7B),兩者之間的相關(guān)系數(shù)高達(dá)0.96。
圖7 濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌(A)和真菌(B)群落變化對(duì)氨基甲酸乙酯含量的影響Fig.7 Effects of bacterial (A) and fungal (B) community changes on ethyl carbamate content during fermentation of strong-flavor Baijiu fermentation
本研究結(jié)果符合眾多學(xué)者對(duì)微生物和EC相關(guān)性的研究。EC 的前體瓜氨酸可以被乳酸菌通過(guò)精氨酸脫亞胺酶途徑代謝,而釀酒酵母通過(guò)鳥(niǎo)氨酸循環(huán)積累尿素,導(dǎo)致EC增加[23],因此,乳酸菌屬以及芽孢桿菌屬與發(fā)酵過(guò)程中EC含量呈顯著正相關(guān)。值得注意的是,本研究發(fā)現(xiàn)芽孢桿菌屬與EC含量呈顯著正相關(guān),這可能歸因于芽孢桿菌屬產(chǎn)脲酶能力較強(qiáng)[24-25],從而分解尿素,減少前體對(duì)積累EC的貢獻(xiàn),然而具體原因仍然需要更深入的探究。此外,未來(lái)可著手于添加芽孢桿菌屬對(duì)白酒EC含量以及風(fēng)味影響的研究。
本研究對(duì)濃香型白酒發(fā)酵過(guò)程中氨基甲酸乙酯(EC)的含量、環(huán)境因子及微生物群落進(jìn)行了連續(xù)追蹤監(jiān)測(cè),分析了環(huán)境因子及微生物群落與EC含量之間的相關(guān)性。發(fā)現(xiàn)EC含量隨著發(fā)酵時(shí)間的延長(zhǎng)呈先緩升后快速增加,再達(dá)到穩(wěn)定的趨勢(shì),EC的積累主要發(fā)生在白酒發(fā)酵的中后期。發(fā)酵過(guò)程中,pH和水分含量是影響EC含量的顯著因素,其中pH與EC呈負(fù)相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.9,而水分則與EC的積累呈正相關(guān),相關(guān)系數(shù)為0.83;溫度和乙醇含量對(duì)EC的形成有一定的促進(jìn)作用,但效果并不顯著,相關(guān)系數(shù)分別為0.48和0.71。此外,發(fā)酵體系中乳桿菌屬(Lactobacillus)和和釀酒酵母屬(Saccharomyces)與EC含量的相關(guān)系數(shù)為0.97和0.96,兩者的豐度越高,EC越容易積累;芽孢桿菌屬(Bacillus)則對(duì)EC的合成起到反作用,與EC含量的相關(guān)系數(shù)為0.78,隨著芽孢桿菌屬(Bacillus)的相對(duì)豐度增加,EC的形成受到抑制。由此可見(jiàn),在白酒的發(fā)酵期間可通過(guò)人為調(diào)控pH值及水分含量以控制EC含量,此外上調(diào)芽孢桿菌屬在發(fā)酵微生物中的比例,可達(dá)到降低EC含量的目的。