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    山黧豆LsSULTR基因的克隆與表達分析

    2022-01-14 14:52:10徐全樂
    西北植物學報 2021年11期
    關(guān)鍵詞:跨膜硫酸鹽擬南芥

    陳 紅,曾 鵬,徐全樂

    (西北農(nóng)林科技大學 生命科學學院,陜西楊陵 712100)

    山黧豆(Lathyrussativus)具有較高的蛋白含量、廣譜的抗逆性以及對環(huán)境友好等特征,對于聯(lián)合國糧農(nóng)組織零饑餓計劃(Zero Hunger in Asia and the Pacific)的實施具有重要的作用[1]。其內(nèi)源活性成分β-N-草酰-L-α,β-二氨基丙酸(β-N-oxalyl-L-α,β-diaminopropionic acid,β-ODAP)廣泛存在于三七和人參等傳統(tǒng)中藥材中,具有止血、抗炎、保護神經(jīng)的作用,被命名為三七素[2-3]。研究表明,β-ODAP的生物合成途徑和硫代謝途徑密切相關(guān)[3-6]。

    植物硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白(sulfate transporter,SULTRs)可以吸收和轉(zhuǎn)運土壤硫酸鹽參與植物硫代謝[7]。目前,擬南芥[8](Arabidopsisthaliana)、大豆[9](Glycinemax)、水稻[10](Oryzasativa)等多種植物的SULTR基因已經(jīng)得到克隆和鑒定。通常,植物基因組含有多個SULTR基因,例如擬南芥、水稻等基因組分別含有12和11個SULTR基因,苔蘚基因組含有5個SULTR基因[11-12]。植物硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白屬于ABC轉(zhuǎn)運蛋白超家族(ATP-binding cassette transporter,ABC),其特征為C端具有抗σ因子拮抗(antisigma factor antagonist,STAS)結(jié)構(gòu)域,N端具有硫轉(zhuǎn)運(Sulfate_transp)結(jié)構(gòu)域;同時,還包含跨膜結(jié)構(gòu)域(transmebrane domains,TMDs)[13]。根據(jù)序列同源性、亞細胞定位、功能特異性等將SULTR劃分為SULTR Ⅰ-Ⅳ等4個亞家族,包含高親和力硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白(high-affinitysulfatetransporters,HAST)、低親和力硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白(low-affinity sulfate transporters,LAST)、液泡轉(zhuǎn)運蛋白、質(zhì)膜及內(nèi)共生體轉(zhuǎn)運蛋白等[14-15]。其中,HAST廣泛分布于根表皮,包含SULTR1;1、SULTR1;2、SULTR1;3,促進植物對土壤硫酸鹽的吸收;LAST主要在鄰近木質(zhì)部和韌皮部的薄壁組織表達,負責長距離運輸,包含SULTR2;1、SULTR2;2、SULTR3;5。SULTR1;3、SULTR2;1、SULTR2;2、SULTR3;5協(xié)同作用將根吸收的硫酸鹽長距離運輸?shù)角o及葉片的葉肉細胞,一部分被SULTR4;1和SULTR4;2運載到液泡儲存,一部分被SULTR3;1、SULTR3;2、SULTR3;3、SULTR3;4等運載到胞質(zhì)參與代謝反應(yīng)[7,12,16]。

    本研究經(jīng)序列比對分析,從山黧豆種子萌發(fā)期不同組織的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)(SRP145030)中查找到13條LsSULTR基因序列。通過LsSULTR基因表達與β-ODAP含量的相關(guān)性分析,篩選了LsSULTR3;3和LsSULTR3;5進行功能預(yù)測、基因克隆和組織表達分析等,為進一步研究山黧豆LsSULTR基因在β-ODAP生物合成中的功能奠定基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 材 料

    山黧豆(Lathyrussativus)種子為本實驗室保存,種植于西北農(nóng)林科技大學試驗田。取山黧豆不同生長時期的主根、側(cè)根、幼葉、成熟葉、莖、花、莢,以及盛莢初期(S2)、鼓粒滿期(S6)和完熟期(S8)的種子,液氮速凍后于-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2 方 法

    1.2.1 本地山黧豆轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中鑒定LsSULTR從NCBI下載12條擬南芥(Arabidopsisthaliana)硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的編碼序列(coding sequence,CDS)作為參考序列,利用BioEdit在本實驗室前期所測的山黧豆種子萌發(fā)期不同組織[播種后2 d(days after sowing,DAS)種子、6DAS幼苗、25DAS葉片]的轉(zhuǎn)錄組分析數(shù)據(jù)庫(SRP145030)中進行本地序列比對,獲得山黧豆硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白基因序列。用ORF Finder (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)獲得轉(zhuǎn)錄本對應(yīng)的蛋白序列,并用MEGA-X軟件按最大似然法(Maximum Likelihood)構(gòu)建擬南芥和山黧豆硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白進化樹,Bootstrap設(shè)置500次重復(fù)。

    1.2.2 生物信息學分析利用MEGA-X軟件,以最大似然法建立山黧豆(L.sativus)、擬南芥(A.thaliana)、豌豆(Pisumsativum)等的硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白SULTR3;3和SULTR3;5的進化樹。運用在線軟件SMART(http://smart. embl-heidelberg.de/)分析LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白的保守結(jié)構(gòu)域,利用SOPMA(https://npsa-prabi.ibcp. fr/cgi- bin/npsa_automat.pl?page=npsa_sopma.

    表1 本研究所用的引物

    html)預(yù)測蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)組成,TMHMM(http://www. cbs.dtu.dk/services/(TMHMM/)預(yù)測蛋白質(zhì)跨膜結(jié)構(gòu)域,SignalP 4.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP-4.0/)和WoLFPSORT (https://wolfpsort.hgc.jp/)等方法預(yù)測蛋白亞細胞定位,SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org)預(yù)測蛋白質(zhì)的三維結(jié)構(gòu)。利用NetPhos3.1Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)預(yù)測蛋白磷酸化位點,PlantCare(http:// bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html)預(yù)測啟動子順式作用元件。

    1.2.3LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因CDS全長序列的克隆采用RNAiso Plus(TaKaRa)提取山黧豆25 DAS葉片的總RNA,經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后,采用FastKing RT Kit(With gDNase)反轉(zhuǎn)錄試劑盒(天根)獲得cDNA序列用于LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因CDS全長序列的克隆。PCR擴增體系為20 μL,包含cDNA模板1 μL,2×Green Taq Mix 10 μL,上、下游引物各0.5 μL,ddH2O 8 μL;PCR程序為:95 ℃預(yù)變性2 min;95 ℃變性15 s,67 ℃退火15 s,72 ℃延伸2 min,35個循環(huán)。PCR產(chǎn)物送北京擎科生物科技有限公司西安分公司測序。

    1.2.4 基因表達分析采用RNAiso Plus(TaKaRa)提取不同生長時期山黧豆的主根、側(cè)根、幼葉、成熟葉、莖、花、莢、S2時期種子、S6時期種子、S8時期種子的總RNA。根據(jù)LsSULTR3;3和LsSULTR3;5序列設(shè)計基因特異性引物(表1),以poly-ubiquitine(LspUBQ)為內(nèi)參基因進行半定量RT-PCR分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 本地轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中LsSULTR基因的表達分析

    以擬南芥硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的CDS序列為參考序列,在山黧豆種子萌發(fā)期不同組織的轉(zhuǎn)錄組學分析數(shù)據(jù)庫(SRP145030)中比對到13條山黧豆LsSULTR基因(表2)。進化樹分析表明,擬南芥SULTR蛋白和本地轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫中的LsSULTR基因編碼蛋白分別隸屬于SULTR Ⅰ-Ⅳ 4個亞家族,(圖1)。

    黑色三角表示山黧豆硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白圖1 山黧豆和擬南芥(AtSULTRs)硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的進化分析LsSULTRs were marked with black triangleFig.1 Phylogenetic tree of putative LsSULTRs and characterized AtSULTRs

    在轉(zhuǎn)錄組樣本中,LsSULTR基因的表達量呈現(xiàn)顯著性差異。例如,當6 DAS和2 DAS比較時,LsSULTR3;5基因的表達量下調(diào)了6.067倍(P<0.05);在25 DAS和6 DAS比較時,LsSULTR2;1和LsSULTR2;2-2基因的表達量分別上調(diào)了3.277(P<0.05)和3.865倍(P<0.01)(表2)。LsSULTR2;1和LsSULTR2;2與擬南芥低親和力轉(zhuǎn)運蛋白AtSULTR2聚為一簇(圖1),可能主要負責硫酸鹽的運輸[14];LsSULTR3;5與擬南芥 AtSULTR3;5聚為一簇(圖1),可能參與硫酸鹽的跨膜運輸、還原或者增強SULTR2蛋白的硫酸鹽運輸能力[13-14]。本研究選取LsSULTR3;3和LsSULTR3;5進行后續(xù)分析。

    表2 山黧豆種子萌發(fā)期LsSULTRs轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的差異表達分析

    2.2 LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白生物信息學分析

    2.2.1 蛋白理化性質(zhì)分析蛋白質(zhì)理化性質(zhì)分析顯示,LsSULTR3;3由653個氨基酸組成,分子量為71.39 kD,等電點為9.28;LsSULTR3;5蛋白由640個氨基酸組成,分子量為70.72 kD,等電點為9.01。

    2.2.2 進化分析構(gòu)建山黧豆、擬南芥、豌豆等物種的SULTR3;3和SULTR3;5蛋白系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2)。結(jié)果顯示,LsSULTR3;3蛋白與豌豆PsSULTR3;3(AKV94662.1)聚在同一支,LsSULTR3;5蛋白與豌豆PsSULTR3;5(AKV94664.1)聚在同一支,且相似度均達到100%。說明LsSULTR3;3和LsSULTR3;5分別隸屬于SULTR3;3和SULTR3;5蛋白家族,山黧豆與豌豆硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的親緣關(guān)系最近。

    2.2.3 蛋白結(jié)構(gòu)分析SMART分析表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5具有硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的典型結(jié)構(gòu)域。LsSULTR3;3在N端存在Sulfate_transp結(jié)構(gòu)域(PF00916,80-461位氨基酸),C端存在STAS結(jié)構(gòu)域(PF01740,512-630位氨基酸);LsSULTR3;5在N端存在Sulfate_transp結(jié)構(gòu)域(PF00916,74-455位氨基酸),C端存在STAS結(jié)構(gòu)域(PF01740,506-620位氨基酸)。

    黑色三角形為LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白圖2 硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白SULTR3;3和SULTR3;5系統(tǒng)發(fā)育樹Black triangle represents LsSULTR3;3 and LsSULTR3;5 Fig.2 Phylogeny of SULTR3;3 and SULTR3;5 proteins

    采用SignalP 4.0分析表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5均為分泌蛋白;采用WoLF PSORT分析表明,LsSULTR3;3定位于質(zhì)膜、液泡和內(nèi)質(zhì)網(wǎng),LsSULTR3;5定位于質(zhì)膜。采用TMHMM預(yù)測蛋白質(zhì)的跨膜結(jié)構(gòu)域顯示,LsSULTR3;3有9個跨膜結(jié)構(gòu)(transmebrane domains,TMDs),跨膜區(qū)段分別為104-126、160-182、195-212、242-264、269-291、362-384、397-416、426-448和455-477位氨基酸。LsSULTR3;5有11個TMDs,跨膜區(qū)段分別為73-95、115-137、158-180、190-212、235-253、263-285、320-342、357-379、392-414、418-435、455-477位氨基酸。拓撲結(jié)構(gòu)表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白N端位于質(zhì)膜內(nèi),C端位于質(zhì)膜外(圖3)。

    運用在線軟件SOPMA進行二級結(jié)構(gòu)預(yù)測顯示,在LsSULTR3;3蛋白中,β-螺旋50.23%、無規(guī)卷曲30.93%、β-轉(zhuǎn)角3.98%、延伸鏈14.85%;在LsSULTR3;5蛋白中,α-螺旋49.06%、無規(guī)卷曲31.56%、β-轉(zhuǎn)角4.22%、延伸鏈15.16%。說明α-螺旋和無規(guī)卷曲是LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白二級結(jié)構(gòu)的主要元件。

    采用SWISS-MODEL預(yù)測LsSULTR3;3 和LsSULTR3;5三維結(jié)構(gòu)表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5蛋白三維結(jié)構(gòu)相似,均可形成同源二聚體。LsSULTR3;3和LsSULTR3;5具有兩個明顯的結(jié)構(gòu)域,其中N端主要由α-螺旋圍繞形成通道進行硫酸鹽的跨膜轉(zhuǎn)運,C端為STAS結(jié)構(gòu)域。

    2.2.4 蛋白磷酸化位點分析利用NetPhos3.1 Server預(yù)測蛋白磷酸化位點表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5具有多個潛在的磷酸化位點,可被PKA、PKC、cdc2、CKII、DNAPK等多個蛋白激酶磷酸化(圖4)。其中,LsSULTR3;3有101個潛在的磷酸化位點,預(yù)測得分大于0.5的有51個位點,包括32個Ser、16個Thr、3個Tyr。LsSULTR3;5有109個潛在的磷酸化位點,預(yù)測得分大于0.5的有60個位點,包括34個Ser、20個Thr、6個Tyr(圖4)。

    圖3 LsSULTR3;3(A)和LsSULTR3;5(B)跨膜結(jié)構(gòu)域預(yù)測Fig.3 Prediction of transmembrane domains of LsSULTR3;3 (A) and LsSULTR3;5(B)

    圖4 LsSULTR3;3(A)和LsSULTR3;5(B)磷酸化位點預(yù)測Fig.4 Phosphorylation sites prediction of LsSULTR3;3 (A) and LsSULTR3;5 (B)

    表3 LsSULTR3;3和LsSULTR3;5的啟動子順式作用元件分析

    2.2.5 啟動子順式元件分析以LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因起始密碼子(ATG)上游2 000 bp作為啟動子區(qū)段,用在線軟件PlantCare預(yù)測啟動子順式作用元件。結(jié)果表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5啟動子除了含有真核生物啟動子基本元件CAAT-box、TATA-box等以外,還含有ABRE等脫落酸響應(yīng)元件、干旱響應(yīng)MYB結(jié)合位點MBS等干旱脅迫響應(yīng)元件、GARE-motif等赤霉素響應(yīng)元件、AuxRR-core等生長素響應(yīng)元件及AAAC-motif等多種光響應(yīng)元件等(表3)。

    2.3 LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因克隆和組織表達分析

    以山黧豆25DAS成熟葉片的cDNA為模板,以LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因特異引物進行PCR擴增,分別獲得1 962 bp和1 923 bp的目的條帶(圖5)。經(jīng)測序后和轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)比對表明,所獲序列為LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因的CDS序列。

    利用半定量RT-PCR分析LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因在山黧豆不同組織中的表達,結(jié)果顯示,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5的組織表達水平存在明顯差異。LsSULTR3;3在主根、成熟葉、莖、花、S2時期種子和S6時期種子中表達,以在莖中的表達量較高;LsSULTR3;5在主根、側(cè)根、花、S2時期種子中均有表達,以花中的表達量最為顯著(圖6)。

    3 討 論

    擬南芥中的研究表明,AtSULTR3調(diào)控硫酸鹽向葉綠體的轉(zhuǎn)運,影響Cys和ABA的生物合成,并參與硫酸鹽介導的氣孔關(guān)閉[17];AtSULTR3;5在根部的維管組織中高度表達,本身不具有硫酸鹽轉(zhuǎn)運功能,但是能夠顯著促進SULTR2;1的轉(zhuǎn)運效率[18]。在山黧豆中,至少有13條SULTR基因,分別編碼SULTR Ⅰ-Ⅳ。其中,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5可能與山黧豆活性物質(zhì)-ODAP的生物合成密切相關(guān)。蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測分析表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5具有SULTR蛋白家族保守結(jié)構(gòu)域STAS和Sulfate_transp[13]。包含胞質(zhì)跨膜結(jié)構(gòu)域TMDs說明LsSULTR3;3和LsSULTR3;5可能參與硫酸鹽的跨膜轉(zhuǎn)運,進而進行硫的同化作用,調(diào)控Cys及β-ODAP含量。

    蛋白水平、翻譯后修飾水平等調(diào)控是植物硫代謝、Cys及β-ODAP代謝調(diào)控的重要方式[19]。例如,硫代謝調(diào)控關(guān)鍵酶絲氨酸乙?;D(zhuǎn)移酶(serine acetyltransferase,SAT)和半胱氨酸合成酶[cysteine synthase,CS;或 O-acetylserine (thiol)lyase,OAS-TL]或其家族成員β-腈基丙氨酸合成酶(β-cyanoalanine synthase,CAS)可以通過形成半胱氨酸調(diào)控復(fù)合物(cysteine regulatory complex,CRC)調(diào)控二者酶活性[20-21]。而SAT的磷酸化會降低Cys對SAT酶活性的反饋抑制程度[21-22]。對SULTR而言,AtSULTR1;2 蛋白STAS結(jié)構(gòu)域和CS的結(jié)合可以增加CS酶活性[23]。在山黧豆中,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5可能以同源二聚體方式發(fā)揮活性。磷酸化位點預(yù)測則表明,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5具有PKA、PKC等多個蛋白激酶磷酸化作用的潛在位點,可能通過磷酸化/去磷酸化調(diào)控硫酸鹽轉(zhuǎn)運活力。針對擬南芥SULTR保守結(jié)構(gòu)域 STAS磷酸化位點的研究也證實了該結(jié)論[24-27]。

    M.DNA 標準分子質(zhì)量;1.LsSULTR3;3;2.LsSULTR3;5圖5 LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因的CDS序列克隆M.DNA marker;1.LsSULTR3;3;2.LsSULTR3;5Fig.5 Cloning of coding sequences of LsSULTR3;3 and LsSULTR3;5

    1.主根;2.側(cè)根;3.幼葉;4.成熟葉;5.莖;6.花;7.莢;8.S2時期種子;9.S6時期種子;10.S8時期種子圖6 山黧豆不同組織中LsSULTR3;3和LsSULTR3;5的相對表達分析1. Main root; 2. Lateral root; 3. Young leaf; 4. Old leaf; 5. Stem; 6. Flower; 7. Pod; 8. Seed of S2 stage; 9. Seed of S6 stage; 10. Seed of S8 stageFig.6 Expression analysis of LsSULTR3;3 and LsSULTR3;5 in different tissues of L. sativus

    硫的同化途徑還受到植物激素信號及轉(zhuǎn)錄因子等的調(diào)控。缺硫條件導致生長素、茉莉酸(jasmonic acid,JA)水平及其合成基因上調(diào)[28-29],JA處理上調(diào)硫同化通路和GSH合成相關(guān)基因表達水平[30-31],這表明了生長素信號、JA信號通路和硫同化通路的交互作用[28,32]。細胞分裂素也可以顯著下調(diào)SULTR1;2表達水平[33]。LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因啟動子含有激素響應(yīng)等多個順式作用元件,這表明山黧豆硫同化途徑及β-ODAP可能受到多種激素的交互調(diào)控。此外,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5基因啟動子還具有轉(zhuǎn)錄因子MYB的結(jié)合位點MBS,說明轉(zhuǎn)錄因子MYB可能調(diào)控山黧豆硫同化途徑。實際上,MYB-like 轉(zhuǎn)錄因子PHR1(phosphate starvation response 1)可以調(diào)節(jié)N、P、S、Fe和Zn的平衡[34];而N、P、S、Fe和Zn等均可以影響山黧豆β-ODAP含量[35]。因此,MYB可能在山黧豆β-ODAP含量調(diào)控中起到重要作用。

    綜上所述,山黧豆至少含有13條SULTR基因,分別編碼SULTRⅠ-Ⅳ。其中,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5編碼蛋白具有SULTR蛋白家族保守結(jié)構(gòu)域STAS和Sulfate_transp,其表達水平可能與山黧豆活性物質(zhì)β-ODAP的生物合成密切相關(guān)。生物信息學預(yù)測顯示,LsSULTR3;3和LsSULTR3;5活性受到轉(zhuǎn)錄因子MYB和激素響應(yīng)等多個順式作用元件的共同調(diào)節(jié),蛋白水平互作及磷酸化等翻譯后修飾也在該過程起到重要作用。上述結(jié)果為進一步研究山黧豆中硫酸鹽的吸收、轉(zhuǎn)運及同化、β-ODAP的生物合成途徑等奠定了基礎(chǔ)。

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