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    MicroRNA-30a、microRNA-181a在原發(fā)免疫性血小板減少癥中的表達(dá)及其臨床意義*

    2022-01-13 08:18:08譚琳謝瑜楊堅(jiān)黃穎
    關(guān)鍵詞:免疫性血小板炎癥

    譚琳,謝瑜,楊堅(jiān),黃穎

    (昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院 血液科,云南 昆明650032)

    原發(fā)免疫性血小板減少癥(immune thrombocytopenic purpura, ITP)病理機(jī)制為血小板計(jì)數(shù)(platelet count, PLT)下降,伴或不伴皮膚黏膜出血,其發(fā)病機(jī)制尚存在爭(zhēng)議,認(rèn)為免疫作用在其中起主導(dǎo)地位[1]。ITP 發(fā)生后,B 淋巴細(xì)胞功能亢進(jìn),產(chǎn)生針對(duì)血小板抗原的自身反應(yīng)性抗體,導(dǎo)致血小板的破壞增加和生成減少[2]。近年來(lái)有研究報(bào)道,ITP 發(fā)生、發(fā)展的分子機(jī)制可能與microRNA(miRNA)有關(guān),認(rèn)為其可通過(guò)與靶基因的3′-非編碼區(qū)(UTR)結(jié)合而對(duì)靶基因的表達(dá)發(fā)揮負(fù)向調(diào)節(jié)作用,調(diào)節(jié)多種蛋白的合成而參與多個(gè)細(xì)胞生物活動(dòng)過(guò)程[3]。多種miRNA 表達(dá)與自身免疫性疾病的發(fā)生、發(fā)展有關(guān),目前報(bào)道的有miR-142、 miR-143、 miR-181、 miR-30a-3p、 miR-223[4-7]。有報(bào)道顯示,在EB 病毒陽(yáng)性皮肌炎患者中發(fā)現(xiàn)miR-30a-3p 靶向調(diào)控ANXA1,從而促進(jìn)外周血單個(gè)核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cells,PBMC)相關(guān)炎癥因子的表達(dá)及皮肌炎炎癥反應(yīng)的發(fā)生[6]。系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者PBMC 中miR-223 異常表達(dá),介導(dǎo)機(jī)體炎癥反應(yīng),參與疾病的發(fā)生、發(fā)展[7]。本研究前期通過(guò)靶基因生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),在ITP 患者PBMC 中存在異常表達(dá)的miR-30a、miR-181a,考慮其可能作為ITP 發(fā)病的靶基因,但目前國(guó)內(nèi)外尚無(wú)該類報(bào)道。因此本研究旨在明確miR-30a、miR-181a 在ITP 中的表達(dá)及其臨床意義,初步明確其是否可作為ITP 的潛在治療靶點(diǎn),現(xiàn)報(bào)道如下。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料

    選取2020年1月—2020年12月昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院收治的ITP 患者48 例作為ITP 組,另取同期本院40 例化療后骨髓抑制血小板減少患者作為對(duì)照組,體檢健康者45 例作為健康組。本研究獲得醫(yī)院倫理會(huì)批準(zhǔn),所有患者家屬知情并簽署同意書。ITP 組男性23 例,女性25 例;中位年齡35 歲,平均(35.62±5.25)歲;PLT 0~55×109/L;平均血小板體積(mean platelet volume, MPV)3.5~7.9 fl,平均(5.62±1.33)fl;出血分級(jí):0 級(jí)8 例,1 級(jí)10 例,2 級(jí)11 例,3 級(jí)13 例,4 級(jí)6 例。對(duì)照組男性19 例,女性21 例;中位年齡36 歲,平均(36.08±5.31)歲;PLT 70×109/L~120×109/L,平均(85.73±10.19)×109/L;MPV 5~10 fl,平 均(6.52±1.37)fl。健康組男性22 例,女性23 例;中位年齡37 歲,平均(36.15±5.37)歲;PLT 82×109/L~290×109/L,平均(178.96±22.33)×109/L;MPV 7~11 fl,平均(7.88±1.48)fl。3 組性別、年齡比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),具有可比性。

    1.2 納入與排除標(biāo)準(zhǔn)

    1.2.1 納入標(biāo)準(zhǔn) ①由??漆t(yī)師根據(jù)診療共識(shí)確診為ITP[8];②年齡≥18 歲;③肝腎功能正常,無(wú)其他自身免疫性疾??;④依從性較好;⑤無(wú)溝通障礙和神經(jīng)系統(tǒng)疾病,能接受各項(xiàng)檢查;⑥無(wú)潰瘍病史或未長(zhǎng)期使用免疫調(diào)節(jié)劑。

    1.2.2 排除標(biāo)準(zhǔn) ①胃腸手術(shù)史;②難治性或無(wú)法控制的高血壓、糖尿病等原發(fā)性疾??;③合并惡性腫瘤;④合并大出血或內(nèi)出血性疾??;⑤合并代謝性疾??;⑥各系統(tǒng)組織潰瘍。

    1.3 方法

    采集受試者空腹靜脈血檢測(cè)MPV 和PLT。采集受試者空腹靜脈血5 ml 置于枸櫞酸抗凝管中,采用密度梯度離心法分離PBMC,總RNA 提取試劑盒(北京厚生博泰科技有限公司)提取細(xì)胞總RNA,消除RNA 中基因組DNA 并除去DNase1 后,采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(德國(guó)Qiagen 公司)逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,以此cDNA 為模板參照引物序列(上海生工生物工程股份有限公司)進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction, qRTPCR)擴(kuò)增。qRT-PCR 擴(kuò)增體系:SYBR Green Mix 10 μl,正向引物0.5 μl(10 μmol/L),反向引物0.5 μl(10 μmol/L),cDNA 模板1 μl,ddH2O 8 μl。qRTPCR 反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性3 min,95℃變性5 s,56℃退火10 s,72 ℃延伸25 s,共計(jì)39 次循環(huán)。qRTPCR 引物序列見(jiàn)表1。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,采用凝膠數(shù)字成像系統(tǒng)(美國(guó)Alpha Inotech 公司)掃描分析,測(cè)定各擴(kuò)增帶吸光度值,以目的基因與β-actin 吸光度比值計(jì)算miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量。

    表1 qRT-PCR引物序列

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    數(shù)據(jù)分析采用SPSS 18.0 統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,比較用方差分析,兩兩比較用SNK-q檢驗(yàn);計(jì)數(shù)資料以構(gòu)成比(%)表示,比較用χ2檢驗(yàn);相關(guān)性分析用Spearman 法;影響因素的分析用多因素一般Logistic 回歸模型,將獨(dú)立危險(xiǎn)因素?cái)M合多變量的臨床模型;繪制ROC 曲線。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 3 組患者miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量及PLT、MPV比較

    3 組患者miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。進(jìn)一步兩兩比較結(jié)果:ITP 組高于對(duì)照組和健康組(P<0.05)。3 組患者PLT、MPV 比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。進(jìn)一步兩兩比較結(jié)果:ITP 組低于對(duì)照組和健康組(P<0.05)。見(jiàn)表2。

    表2 3組患者miR-30a、miR-181a相對(duì)表達(dá)量及PLT、MPV比較 (±s)

    表2 3組患者miR-30a、miR-181a相對(duì)表達(dá)量及PLT、MPV比較 (±s)

    組別ITP組對(duì)照組健康組F 值P 值n 48 40 45 miR-30a 3.05±0.86 1.78±0.52 1.28±0.34 100.030 0.000 miR-181a 16.25±3.05 9.85±2.26 7.66±2.01 148.060 0.000 PLT/(×109/L)6.22±1.05 85.73±10.19 178.96±22.33 1731.018 0.000 MPV/fl 5.62±1.33 6.52±1.37 7.88±1.48 30.780 0.000

    2.2 miR-30a、miR-181a與各臨床指標(biāo)的相關(guān)性

    Spearman 相關(guān)性分析結(jié)果顯示,miR-30a與年齡和性別無(wú)關(guān)(P>0.05),與PLT、MPV 呈負(fù)相關(guān)(P<0.05),與出血分級(jí)呈正相關(guān)(P<0.05)。miR-181a 與年齡和性別無(wú)關(guān)(P>0.05),與PLT、MPV 呈負(fù)相關(guān)(P<0.05),與出血分級(jí)呈正相關(guān)(P<0.05)。見(jiàn)表3。

    表3 miR-30a、miR-181a與各臨床指標(biāo)的相關(guān)性

    2.3 發(fā)生ITP的多因素Logistic回歸分析

    以是否發(fā)生ITP 為因變量(是=1,否=0),以年齡、性別、PLT、MPV、出血分級(jí)及miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量為自變量,進(jìn)行Logistic 回歸分析,結(jié)果顯示:MPV [=0.685(95% CI:0.332,0.968)]、miR-30a [=1.876(95% CI:1.230,6.336)]和miR-181a [=2.665(95% CI:1.365,8.558)]是發(fā)生ITP 的影響因素(P<0.05)。見(jiàn)表4。

    表4 發(fā)生ITP的多因素Logistic回歸分析參數(shù)

    2.4 臨床模型建立與評(píng)估

    選擇多因素分析差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的指標(biāo)(MPV、miR-30a相對(duì)表達(dá)量、miR-181a相對(duì)表達(dá)量)及其回歸系數(shù)建立臨床模型的多元回歸方程:Logistic(P)=-4.115+1.305×MPV-1.258×miR-30a-1.664×miR-181a。在臨床模型中,MPV 6.2~11.0 fl定義為0,MPV <6.2 fl 定義為1;miR-30a 相對(duì)表達(dá)量<2.85 定義為0,≥2.85 定義為1;miR-181a 相對(duì)表達(dá)量<8.44 定義為0,≥8.44 定義為1。臨床模型診斷ITP 的標(biāo)準(zhǔn)誤為0.055,AUC 為0.889(95%CI:0.662,0.956),敏感性為75.25%(95% CI:1.123,2.084)、特異性為88.24%(95% CI:1.672,2.583)(見(jiàn)圖1)。選擇48 例ITP 組患者中的11 例,基于臨床模型下的散點(diǎn)圖經(jīng)過(guò)9 次迭代后達(dá)精度要求,利用制定好的臨床模型對(duì)所有樣本進(jìn)行診斷測(cè)試;散點(diǎn)均圍繞參考線波動(dòng),未顯著偏離,診斷ITP的敏感性為90.00%(9/10),特異性為100.00%(1/1),總準(zhǔn)確率為90.91%(10/11)。

    圖1 臨床模型診斷ITP的ROC曲線

    2.5 臨床模型的臨床效能評(píng)估

    極端情況下,預(yù)測(cè)未發(fā)生ITP 臨床凈獲益為0(紅色斜線),預(yù)測(cè)發(fā)生ITP 臨床凈獲益為0~3(藍(lán)色斜線);正常情況下,DCA 決策曲線斜率高于2 條極端線。見(jiàn)圖2。

    圖2 臨床模型預(yù)測(cè)ITP的DCA決策曲線

    3 討論

    近年來(lái)關(guān)于免疫功能、微炎癥狀態(tài)與ITP 密切相關(guān)的報(bào)道較多,已證實(shí)ITP 患者機(jī)體內(nèi)內(nèi)源性或外源性抗原可導(dǎo)致毛細(xì)血管及微靜動(dòng)脈變態(tài)反應(yīng)而激發(fā)氧化應(yīng)激反應(yīng)[9]。既往研究發(fā)現(xiàn),在自身免疫性疾病中存在500 多個(gè)miRNA,而健康者與ITP患兒及不同出血分級(jí)、類型的ITP 患兒間存在60 多個(gè)miRNA 差異性表達(dá),提示miRNA 可能參與ITP 的發(fā)生、發(fā)展[10]。本研究中ITP 組PMBC 中miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量顯著高于健康組,與吳曉芳等[11]報(bào)道m(xù)iR-30a 通過(guò)介導(dǎo)Th17 細(xì)胞分化影響ITP發(fā)病的研究結(jié)果一致。本研究中miRNA 差異與既往報(bào)道有所區(qū)別,與不同物種、樣本來(lái)源和疾病階段、病情等有關(guān)[12-13]。王毅力等[12]報(bào)道,ITP 患者PMBC 中可檢測(cè)到異常表達(dá)的miR-146a,其可鑒別診斷ITP 和急性髓系白血病。miRNA 由體內(nèi)大多數(shù)細(xì)胞產(chǎn)生后分泌到外泌體中,進(jìn)入循環(huán)細(xì)胞后被其他細(xì)胞攝取,在血液和各細(xì)胞組織間轉(zhuǎn)運(yùn)異常和/或機(jī)體表達(dá)抗炎miRNA 的能力受損時(shí)促進(jìn)自身免疫性疾病的發(fā)病。有研究發(fā)現(xiàn),MEK-ERK 通路激活后可誘導(dǎo)miR-30a、miR-181a 的表達(dá),而其又可負(fù)向調(diào)節(jié)信號(hào)通路[14]。miR-30a 通過(guò)靶向位點(diǎn)結(jié)合SOCS3,影響Th17細(xì)胞分化,參與ITP發(fā)病[11]。

    臨床骨髓巨噬細(xì)胞增生活躍時(shí),外周MPV 增大,由于ITP 患者血小板破壞過(guò)多,骨髓巨核細(xì)胞代償性增生活躍,且血小板代謝旺盛,導(dǎo)致MPV迅速升高。有研究顯示,MPV 在PLT 明顯升高之前,已發(fā)生顯著變化,提示MPV 在判斷ITP 的發(fā)生、發(fā)展更敏感[15]。MPV 升高被認(rèn)為是ITP 發(fā)生的危險(xiǎn)因素,血小板功能直接決定骨髓巨核細(xì)胞功能特點(diǎn),骨髓代償功能異常可誘發(fā)ITP[16]。本研究中MPV 預(yù)測(cè)ITP 具有較高的準(zhǔn)確性,與既往報(bào)道結(jié)果基本一致[13]。既往研究認(rèn)為,miRNA 可調(diào)控血小板誘導(dǎo)的炎癥因子合成及PBMC 增殖;同時(shí),miRNA 通過(guò)促進(jìn)/抑制轉(zhuǎn)錄因子的活性來(lái)影響T 細(xì)胞增殖,直接影響T 細(xì)胞活化誘導(dǎo)的細(xì)胞死亡過(guò)程[13]。本研究未分析相關(guān)炎癥因子,但通過(guò)檢測(cè)miR-30a、miR-181a 相對(duì)表達(dá)量發(fā)現(xiàn),其在ITP 患者中變化較為敏感,與MPV、PLT 呈負(fù)相關(guān),與出血分級(jí)呈正相關(guān),提示其參與ITP 的發(fā)生機(jī)制。miR-30a 介導(dǎo)炎癥反應(yīng)和免疫機(jī)制[17],由相對(duì)表達(dá)量在一定程度反映了機(jī)體免疫功能,miR-30a 表達(dá)升高,提示機(jī)體免疫功能差,血小板代謝旺盛引起自身免疫性疾病。ITP 發(fā)生后,大量炎癥因子釋放,加劇了氧化應(yīng)激和免疫功能受損,導(dǎo)致受體相關(guān)激酶變化,引起miR-181a 改變,加劇血小板損傷。本研究結(jié)合多項(xiàng)臨床資料,進(jìn)行單因素和多因素分析,建立的MPV、miR-30a、miR-181a 臨床模型區(qū)分度評(píng)估中,AUC 為0.889,提示準(zhǔn)確度高,略高于MAXIMILIAN 等[18]的報(bào)道結(jié)果,與選擇的預(yù)測(cè)因子不同有關(guān)。校準(zhǔn)度評(píng)估中,散點(diǎn)圖示散點(diǎn)均圍繞參考線波動(dòng),未顯著偏離參考線;說(shuō)明該臨床模型具有較好的區(qū)分度和校準(zhǔn)度,對(duì)預(yù)測(cè)ITP 的發(fā)生概率具有較高的敏感性和準(zhǔn)確性。DCA 決策曲線分析說(shuō)明本預(yù)測(cè)模型具有較好的臨床應(yīng)用價(jià)值,使用該模型的患者能從中獲益。

    綜上所述,miR-30a、miR-181a 與ITP 發(fā)生相關(guān),通過(guò)miR-30a、miR-181a 建立個(gè)體化預(yù)測(cè)模型可準(zhǔn)確判斷ITP 的發(fā)生,且具有較高的臨床實(shí)用價(jià)值。

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