■董琛琳 劉 娜 王 園 宋 敏 王瑞芳 楊艷平 安曉萍 齊景偉
(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,內(nèi)蒙古自治區(qū)草食家畜飼料工程技術(shù)研究中心,內(nèi)蒙古呼和浩特 010018)
米糠(rice bran),稻谷加工的主要副產(chǎn)品,由種皮、果皮、糊粉層和珠心層組成[1],占稻谷總重量的5%~8%[2]。稻谷是全球產(chǎn)量最高的糧食作物之一[3],而米糠作為其副產(chǎn)物,產(chǎn)量也極為豐富,但利用率卻很低。國(guó)際相關(guān)組織把米糠列為未充分利用的天然原材料之一[4]。米糠中除糖類、脂肪、維生素等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)外,還含有大量多酚、黃酮、蛋白等天然抗氧化劑和功能性物質(zhì),在生產(chǎn)實(shí)踐中具有重要意義。如提高雞的產(chǎn)蛋量[5]、促進(jìn)寧鄉(xiāng)豬的小腸絨毛發(fā)育,提高其生長(zhǎng)性能[6]、提高肉牛的平均日增重[7]等。
微生物發(fā)酵是指在有氧或無(wú)氧條件下進(jìn)行生長(zhǎng)繁殖產(chǎn)生代謝產(chǎn)物的過(guò)程,微生物發(fā)酵不僅能促進(jìn)許多功能性物質(zhì)的釋放,而且還能夠抑制有害微生物的生長(zhǎng)繁殖[8]。用微生物來(lái)發(fā)酵飼料原料不僅可以降低、消除飼料原料中的有毒有害物質(zhì)、抗?fàn)I養(yǎng)因子,還可以促進(jìn)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收利用、補(bǔ)充有益微生物、調(diào)控宿主腸道微生態(tài)平衡、提高機(jī)體免疫力等[9]。微生物發(fā)酵可以改變米糠中的活性成分含量,從而改善米糠穩(wěn)定性差、易哈變的特質(zhì)[10]。水提是一種較為便捷且成本較低的提取方法[11]。1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)是一種較穩(wěn)定的自由基,其乙醇水溶液呈較深的紫色,而樣品中的抗氧化物質(zhì)可將其清除從而使紫色變淺,所以可根據(jù)其吸光度值減少的程度來(lái)判斷樣品抗氧化能力的強(qiáng)弱,是一種簡(jiǎn)單快速的測(cè)定方法[12]。本試驗(yàn)以DPPH 自由基清除率為指標(biāo),優(yōu)化了發(fā)酵米糠水提物的提取時(shí)間、提取溫度和料水比,并對(duì)其活性成分以及體外抗氧化活性進(jìn)行了研究,為米糠深加工提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
米糠、麩皮、腐植酸鈉、博善菌均購(gòu)于市場(chǎng);葡萄糖、苯酚、濃硫酸、無(wú)水乙醇、DPPH、水楊酸鈉、瓊脂糖等均為分析純;葡聚糖酶購(gòu)于濟(jì)南諾能生物工程有限公司;Bradford 試劑盒購(gòu)于南京建成生物研究所;pBRR322 質(zhì)粒DNA 購(gòu)于美國(guó)Thermo Fisher 公司;5xTBE Buffer購(gòu)于北京酷來(lái)搏科技有限公司。
1.2.1 發(fā)酵米糠的制備
在發(fā)酵袋中加入80%的米糠原料和20%的麩皮輔料,加入0.5%的腐植酸鈉,再添加葡聚糖酶2 000 U,接種博善菌5‰,添加50%的蒸餾水,攪拌均勻,然后封口,排出發(fā)酵袋中的氣體,在28 ℃的培養(yǎng)箱中發(fā)酵72 h。
1.2.2 發(fā)酵米糠水提物的制備
根據(jù)1.2.1 制備出發(fā)酵米糠。以DPPH 自由基清除率為指標(biāo),優(yōu)化發(fā)酵米糠水提物的提取時(shí)間、提取溫度和料水比。
1.2.2.1 提取時(shí)間
稱取1 g發(fā)酵米糠樣品和20 mL蒸餾水,在80 ℃水浴鍋中分別浸提0、20、40、60、80 min,冷卻后5 000 r/min 離心15 min,吸取上清液,稀釋8倍作為樣液待測(cè)。
1.2.2.2 提取溫度
稱取1 g 發(fā)酵米糠樣品和20 mL 蒸餾水,分別在70、75、80、85、90 ℃水浴鍋中浸提60 min,冷卻后5 000 r/min 離心15 min,吸取上清液,稀釋8 倍作為樣液待測(cè)。
1.2.2.3 料水比
稱取1 g 發(fā)酵米糠樣品,分別添加10、15、20、25、30 mL 蒸餾水,在85 ℃水浴鍋中浸提60 min,冷卻后5 000 r/min離心15 min,吸取上清液,稀釋8倍作為樣液待測(cè)。
1.2.2.4 DPPH自由基清除率測(cè)定
參照Musa[13]的方法略做修改。吸取樣液1 mL,加1 mL DPPH應(yīng)用液,混勻靜置30 min,在517 nm處測(cè)定吸光度A1;用蒸餾水代替樣液測(cè)定吸光度A2;用95%乙醇代替DPPH應(yīng)用液測(cè)定吸光度A3。
DPPH自由基清除率(%)=[1-(A1-A3)/A2]×100
1.2.3 發(fā)酵米糠水提物活性成分含量測(cè)定
多糖含量的測(cè)定采用苯酚-硫酸法[14];多酚含量的測(cè)定采用任雪榮等[15]的方法;黃酮含量的測(cè)定采用傅杰[16]的方法;蛋白含量的測(cè)定采用Bradford試劑盒;具體方法參照說(shuō)明書(shū),根據(jù)蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線公式計(jì)算其含量。
1.2.4 發(fā)酵米糠水提物的體外抗氧化活性分析
1.2.4.1 羥基自由基清除能力
參考Rajauria 等[17]的方法略做修改。吸取樣液0.5 mL,加入0.5 mL(9.0 mmol/L)硫酸亞鐵溶液和0.5 mL(8.8 mmol/L)過(guò)氧化氫溶液,室溫反應(yīng)10 min后,加入0.5 mL(9.0 mmol/L)水楊酸乙醇溶液,室溫反應(yīng)30 min 后,在510 nm 處測(cè)吸光度A1。用蒸餾水代替硫酸亞鐵溶液重復(fù)上述步驟測(cè)吸光度A2,用蒸餾水代替樣液重復(fù)上述步驟測(cè)吸光度A3。
羥基自由基清除率(%)=[1-(A1-A2)/A3]×100
1.2.4.2 還原力
1.2.4.3 DNA損傷保護(hù)
參考張溢等[19]的方法略做修改,采用瓊脂糖凝膠電泳法研究發(fā)酵米糠水提物對(duì)質(zhì)粒DNA 氧化損傷的保護(hù)作用。精密量取1 μL pBR322DNA(0.1 μg/μL),2 μL發(fā)酵米糠水提物的水溶液加入離心管中,混合均勻后再加入30%過(guò)氧化氫2 μL,反應(yīng)總體積為5 μL。在超凈臺(tái)中紫外線照射15 min,室溫靜置20 min。結(jié)束后,加入6×Loading Buffer 2.5 μL,混勻后點(diǎn)樣于0.5%瓊脂糖凝膠,110 V 電壓下電泳,40 min 后停止電泳。在凝膠成像系統(tǒng)下觀察電泳結(jié)果,試驗(yàn)數(shù)據(jù)用Fluor Chem分析軟件進(jìn)行處理。
1.2.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析
試驗(yàn)數(shù)據(jù)用SAS 9.2 單因素方差分析(one-way ANOVA),并用Duncan’s 法對(duì)各組間進(jìn)行多重比較,P<0.05為差異顯著。
2.1.1 提取時(shí)間(見(jiàn)圖1)
圖1 提取時(shí)間對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響
提取時(shí)間對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響見(jiàn)圖1。由圖1可知,隨著提取時(shí)間的增加,發(fā)酵米糠水提物的DPPH 自由基清除率呈現(xiàn)先增加后下降的趨勢(shì),其中提取時(shí)間為60 min 時(shí),發(fā)酵米糠水提物的DPPH 自由基清除率最高且顯著高于其他組(P<0.05);提取時(shí)間為20、40、80 min時(shí),發(fā)酵米糠水提物的DPPH 自由基清除率差異不顯著(P>0.05),但顯著高于0 min 組(P<0.05)。原因可能在于,未提取或提取時(shí)間過(guò)短時(shí),發(fā)酵米糠中的活性物質(zhì)未充分釋放出來(lái),發(fā)酵米糠抗氧化活性較低。提取時(shí)間過(guò)長(zhǎng)時(shí),發(fā)酵米糠抗氧化活性也較低,是因?yàn)殡S著加熱時(shí)間的延長(zhǎng),釋放出來(lái)的活性物質(zhì)被破壞[20]。綜上所述,80 ℃水浴浸提時(shí),60 min為發(fā)酵米糠水提物的最佳水提時(shí)間。
2.1.2 提取溫度(見(jiàn)圖2)
提取溫度對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響見(jiàn)圖2。由圖2可知,發(fā)酵米糠水提物的DPPH自由基清除率隨著提取溫度的增加呈現(xiàn)先上升再下降的趨勢(shì);其中提取溫度為85 ℃時(shí),發(fā)酵米糠水提物的DPPH 自由基清除率達(dá)到最大值,且顯著高于70、75、80 ℃組(P<0.05),但與90 ℃組無(wú)顯著差異(P>0.05)。原因可能在于提取溫度主要通過(guò)影響活性物質(zhì)的釋放速度來(lái)影響發(fā)酵米糠的抗氧化活性。提取溫度較低時(shí),分子的活動(dòng)較弱,活性物質(zhì)釋放得較慢。提取溫度較高時(shí),活性物質(zhì)變性而被破壞了[21]。由此可得,85 ℃為發(fā)酵米糠水提物的最佳水提溫度。
圖2 提取溫度對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響
2.1.3 料水比(見(jiàn)圖3)
曾有人問(wèn)任正非,華為成功的關(guān)鍵是什么?“還是財(cái)務(wù)體系和人力資源體系?!比握堑倪@個(gè)回答被看作是對(duì)孟晚舟的極大肯定。
圖3 料水比對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響
料水比對(duì)發(fā)酵米糠水提物抗氧化活性的影響見(jiàn)圖3。由圖3可知,發(fā)酵米糠水提物的DPPH自由基清除率隨著料水比的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì);在料水比為1∶30(g/mL)時(shí),發(fā)酵米糠水提物的DPPH自由基清除率最低,且顯著低于其他組;在料水比為1∶10、1∶15、1∶20(g/mL)和1∶25(g/mL)時(shí),各組無(wú)顯著差異(P>0.05),但在1∶20(g/mL)時(shí),發(fā)酵米糠水提物的DPPH自由基清除率達(dá)到最高。原因可能在于水作為一種溶劑,在其體積不斷增加的過(guò)程中,水的傳質(zhì)動(dòng)力增大,從而導(dǎo)致傳質(zhì)效率也增大,使得發(fā)酵米糠水提物的DPPH 自由基清除率增大。隨著料水比不斷增加,其清除率開(kāi)始下降,可能是水體積的增加致使傳質(zhì)擴(kuò)散達(dá)到一種過(guò)飽和穩(wěn)定狀態(tài)[22]。綜上所述,料水比為1∶20(g/mL)為發(fā)酵米糠水提物的最佳料水比。
綜上所述,確定發(fā)酵米糠水提物提取時(shí)間為60 min,提取溫度為85 ℃,料水比為1∶20(g/mL)。此時(shí)其DPPH自由基清除率可達(dá)85.55%,較原料提高了52.63%。因此,發(fā)酵可明顯提高米糠的抗氧化活性,這與其活性成分在發(fā)酵過(guò)程中得到了大量釋放有關(guān)。
表1 發(fā)酵米糠水提物活性物質(zhì)含量(n=3)
由表1可知,與米糠水提物(RBE)相比,發(fā)酵米糠水提物中多酚、黃酮、蛋白均顯著增加(P<0.05),且分別增加了68.16%、80.31%、28.92%。原因可能在于在米糠發(fā)酵過(guò)程中,米糠中葡萄糖等營(yíng)養(yǎng)成分被微生物所利用了,從而導(dǎo)致米糠中的其他活性物質(zhì)被釋放出來(lái),而這些活性物質(zhì)的增加可能就是發(fā)酵米糠抗氧化活性增加的原因[23]。
2.3.1 羥基自由基清除能力(見(jiàn)圖4)
圖4 不同濃度米糠水提物和發(fā)酵米糠水提物羥基自由基清除率
羥基自由基被認(rèn)為是最活潑最有害的氧自由基,其可穿過(guò)細(xì)胞膜,從而損傷核生物大分子,導(dǎo)致組織產(chǎn)生氧化損傷[24]。不同濃度米糠水提物和發(fā)酵米糠水提物羥基自由基清除率見(jiàn)圖4,由圖4可知,同一濃度下,發(fā)酵米糠水提物羥基自由基清除率顯著高于米糠水提物(P<0.05),且顯著高于標(biāo)準(zhǔn)品(BHA)(P<0.05);當(dāng)濃度為4 mg/mL 時(shí),標(biāo)準(zhǔn)品對(duì)羥基自由基清除率為33.69%,而發(fā)酵米糠水提物可達(dá)到78.58%。原因可能在于發(fā)酵有利于活性成分的釋放,使其更容易和羥基自由基反應(yīng),因此發(fā)酵米糠水提物具有較高羥基自由基清除能力[25]。
2.3.2 還原力(見(jiàn)圖5)
衡量一種抗氧化物質(zhì)是否可以高效地提供電子的一個(gè)重要指標(biāo)就是還原力,還原力強(qiáng)的物質(zhì)可提供電子從而使自由基變?yōu)榉€(wěn)定的物質(zhì),阻止自由基所產(chǎn)生的連鎖反應(yīng)[26]。不同濃度米糠水提物和發(fā)酵米糠水提物還原力見(jiàn)圖5。由圖5可知,同一濃度下,發(fā)酵米糠水提物的還原力顯著高于米糠水提物(P<0.05),雖然其還原力顯著低于標(biāo)準(zhǔn)品(P<0.05),但在濃度為4 mg/mL時(shí),其還原力可達(dá)到1.432。原因可能在于發(fā)酵能夠提高米糠中酚酸的含量,而酚酸具有較強(qiáng)的還原力。因此,發(fā)酵米糠水提物具有較強(qiáng)的還原力[27]。
圖5 不同濃度米糠水提物和發(fā)酵米糠水提物還原力
2.3.3 DNA損傷保護(hù)(見(jiàn)圖6~圖8和表2)
表2 發(fā)酵米糠水提物對(duì)·OH 介導(dǎo)的DNA損傷的保護(hù)作用
圖6 不同處理對(duì)·OH介導(dǎo)的DNA的損傷
圖8 米糠水提物與發(fā)酵米糠水提物對(duì)·OH介導(dǎo)的DNA損傷的保護(hù)作用
米糠水提物與發(fā)酵米糠水提物對(duì)羥自由基(·OH)介導(dǎo)的DNA損傷保護(hù)作用以DNA雙螺旋比例進(jìn)行表征。在一定的場(chǎng)強(qiáng)下,DNA分子的遷移速率與其自身的大小和構(gòu)型有關(guān),通常情況下,DNA 分子為雙螺旋結(jié)構(gòu),條帶移動(dòng)較快。但當(dāng)DNA分子受到損傷后,雙螺旋結(jié)構(gòu)會(huì)變成開(kāi)環(huán)結(jié)構(gòu)或線性結(jié)構(gòu),條帶移動(dòng)較慢[28]。雙螺旋比例越高表明其對(duì)DNA損傷的保護(hù)作用越強(qiáng)[29]。由圖6、圖7可知,正常pBRR322質(zhì)粒DNA以雙螺旋結(jié)構(gòu)為主(泳道1),被·OH損傷后,部分雙螺旋結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變?yōu)殚_(kāi)環(huán)或線型(泳道4)。與正常pBRR322質(zhì)粒DNA 相比,在紫外光(UV)的照射下(泳道2),DNA雙螺旋比例無(wú)顯著差異(P>0.05);加入30% H2O2(泳道3)時(shí),DNA 雙螺旋比例顯著低于正常pBRR322 質(zhì)粒DNA組(P<0.05);當(dāng)兩者共同作用時(shí)(泳道4),DNA雙螺旋比例顯著低于30% H2O2組(P<0.05);這表明在紫外光(UV)的照射下或者加入30% H2O2時(shí),不足以直接損傷DNA,而兩者共同作用時(shí),過(guò)氧化氫可被光解產(chǎn)生羥自由基(·OH),而·OH被認(rèn)為是最活潑的活性氧,也是引起DNA 氧化損傷的主要因素之一。
圖7 不同處理對(duì)·OH介導(dǎo)的DNA的損傷
發(fā)酵米糠水提物對(duì)·OH介導(dǎo)的DNA損傷的保護(hù)作用見(jiàn)圖8 以及表2。由表2 可知,在同一濃度下,各組之間的差異都顯著(P<0.05),這表明,發(fā)酵米糠水提物對(duì)·OH介導(dǎo)的DNA損傷保護(hù)作用顯著高于米糠水提物。
綜上所述,文章以DPPH 自由基清除率為指標(biāo),優(yōu)化了發(fā)酵米糠水提物的提取時(shí)間、提取溫度和料水比,得出發(fā)酵米糠水提物提取時(shí)間為60 min,提取溫度為85 ℃,料液比為1∶20(g/mL)時(shí),其DPPH 自由基清除率可達(dá)85.55%,較原料提高了52.63%。對(duì)其活性成分含量進(jìn)行測(cè)定,得出發(fā)酵米糠水提物中多酚、黃酮、蛋白含量可達(dá)29.58、8.15、74.44 mg/g,較米糠水提物分別增加了68.16%、80.31%、28.92%;對(duì)其體外抗氧化活性進(jìn)行了研究,發(fā)酵米糠水提物的羥基自由基清除率、還原力以及對(duì)羥自由基(·OH)介導(dǎo)的DNA 損傷的保護(hù)作用都顯著強(qiáng)于米糠水提物。徐磊等[30]研究了米根霉發(fā)酵對(duì)脫脂薏米麩皮抗氧化活性的影響,發(fā)現(xiàn)與未發(fā)酵脫脂薏米麩皮相比,發(fā)酵處理后脫脂薏米麩皮的游離型酚類提取物的抗氧化活力顯著提高。李冰等[31]研究了發(fā)酵前后芍藥花中總酚總黃酮含量的變化及抗氧化活性,發(fā)現(xiàn)與發(fā)酵前相比,發(fā)酵后芍藥花的總酚、總黃酮含量和抗氧化活性顯著提高。本研究結(jié)果與此相一致。
總體而言,發(fā)酵后米糠的活性成分含量和抗氧化活性均顯著提高,試驗(yàn)研究結(jié)果將為深度開(kāi)發(fā)利用米糠資源提供一定的理論依據(jù)。