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    鹽酸納美芬聯(lián)合迷走神經(jīng)電刺激對(duì)肺缺血-再灌注損傷大鼠肺組織強(qiáng)啡肽及IL-17 的影響

    2021-12-28 04:47:28徐標(biāo)李文華吳威
    實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志 2021年22期
    關(guān)鍵詞:納美芬動(dòng)脈血肺泡

    徐標(biāo) 李文華 吳威

    武漢市第四醫(yī)院(華中科技大學(xué)附屬武漢普愛醫(yī)院)(武漢 430035)

    肺缺血-再灌注損傷病理變化表現(xiàn)為肺泡-毛細(xì)血管網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)通透性增高,進(jìn)而引起間質(zhì)水腫及炎性細(xì)胞浸潤(rùn)、肺泡上皮細(xì)胞損傷及凋亡,最終導(dǎo)致肺水腫、通氣/換氣功能障礙,其發(fā)病機(jī)制可能與炎性介質(zhì)釋放增加等因素有關(guān)[1-3]。目前對(duì)肺缺血-再灌注損傷的防治研究手段單一、效果不佳且藥物防治研究多集中于“預(yù)防作用”,即在缺血期前給藥,然而在面對(duì)休克、心肺復(fù)蘇等危重癥救治過程中已經(jīng)發(fā)生肺缺血-再灌注損傷的病理生理狀態(tài)時(shí)如何治療,目前卻研究甚少,更缺乏多種治療方式聯(lián)合應(yīng)用的研究。近期研究表明迷走神經(jīng)電刺激可減輕急性肺損傷[4],而納美芬可通過抑制TLR4 信號(hào)通路減輕肺缺血-再灌注損傷[5]。因此本研究將納美芬、迷走神經(jīng)電刺激聯(lián)合應(yīng)用于大鼠肺缺血-再灌注損傷模型,探討多種治療方式聯(lián)合應(yīng)用能否更有效地防治肺缺血-再灌注損傷及其機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物清潔級(jí)雄性SD 大鼠75 只,動(dòng)物許可證號(hào):SCXK(鄂)2010-0009,體質(zhì)量(200±50)g,購(gòu)自同濟(jì)醫(yī)學(xué)院動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,在潔凈動(dòng)物飼養(yǎng)室內(nèi)自由攝食、飲水。飼養(yǎng)室溫度保持在20~25 ℃,相對(duì)濕度保持在50%~70%。

    1.2 主要藥物、試劑與儀器鹽酸納美芬注射液(商品名:樂萌,成都天臺(tái)山制藥有限公司產(chǎn)品),規(guī)格:1 mL:0.1 mg,批準(zhǔn)文號(hào):國(guó)藥準(zhǔn)字H20080645,批號(hào):11210502161。兔抗大鼠強(qiáng)啡肽、κ受體、IL-17單克隆抗體(美國(guó)Santa Cruz 公司)。髓過氧化物酶(myeloperoxidase,MPO)試劑盒(南京建成生物工程研究所)。BCA 試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司)。C9000光密度掃描儀(日本島津公司)。BL-420 型生物機(jī)能實(shí)驗(yàn)系統(tǒng)(成都泰盟科技有限公司)。

    1.3 方法

    1.3.1 動(dòng)物模型建立、分組與給藥將75 只大鼠隨機(jī)均分為5 組,每組15 只。(1)模型組:參考何義等[6]方法開胸游離左肺門后,夾閉左肺門45 min(肺組織由淡紅色變成暗紫紅色,表明缺血阻斷成功)后解除阻斷,觀察5 min 后肺組織膨脹、顏色恢復(fù)(表明肺組織循環(huán)再灌注成功),繼續(xù)再灌注3 h。(2)迷走神經(jīng)電刺激組:預(yù)先分離出左側(cè)頸迷走神經(jīng),參照模型組方法于再灌注成功時(shí)進(jìn)行迷走神經(jīng)電刺激,頻率30 Hz,脈寬0.5 ms,電流1.0 mA,刺激總時(shí)間為30 min(方法參考文獻(xiàn)[7]),同步繼續(xù)再灌注肺組織3 h。(3)納美芬組:參照模型組方法于再灌注成功時(shí)即刻尾靜脈注射納美芬(15 μg/kg),余處理同模型組。(4)納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組:預(yù)先分離出左側(cè)頸迷走神經(jīng),參照迷走神經(jīng)電刺激組于再灌注成功時(shí)進(jìn)行迷走神經(jīng)電刺激,同時(shí)尾靜脈注射納美芬(15 μg/kg),余處理同模型組。(5)假手術(shù)組:只開胸游離左肺門,不行夾閉,在上述各組大鼠相同時(shí)間點(diǎn)尾靜脈注射等體積生理鹽水及處死大鼠。各組大鼠于再灌注3 h 后經(jīng)右頸總動(dòng)脈采血留取血標(biāo)本后處死大鼠,留取左肺上葉組織待檢。

    1.3.2 大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治鋈〈笫髣?dòng)脈血標(biāo)本經(jīng)血?dú)夥治鰞x檢測(cè)動(dòng)脈血pO2值、pCO2值。

    1.3.3 大鼠肺組織濕/干重(W/D)測(cè)定取左肺上葉組織,以0.9%氯化鈉溶液沖洗后用濾紙吸干多余水分后稱重,計(jì)量為濕重(W);置80 ℃恒溫箱,烘烤72 h 至恒重后稱重,計(jì)量為干重(D);計(jì)算肺組織W/D。

    1.3.4 大鼠肺組織病理學(xué)觀察將左肺上葉組織置于4%多聚甲醛中固定24 h 后切成5 μm 的石蠟切片,HE 染色后光鏡下觀察肺組織病理形態(tài)變化。

    1.3.5 大鼠肺組織MPO 測(cè)定切取大鼠肺組織相應(yīng)部位0.5 × 0.5 × 0.5 cm3稱重,加入肺組織10倍重的生理鹽水,置入勻漿器中在冰水中勻漿。再以4 000 r/min 離心5 min,分別吸取0.1 mL 上清液按照MPO 測(cè)定試劑盒提供的方法測(cè)定MPO含量。

    1.3.6 Western blot 檢測(cè)大鼠肺組織強(qiáng)啡肽、κ 受體、IL-17表達(dá)取大鼠肺組織100 mg/份,勻漿后加入適量組織蛋白裂解液,離心后吸取上清,按照BCA 蛋白定量試劑盒操作。樣品經(jīng)15%SDS-PAGE分離后,轉(zhuǎn)移于硝酸纖維素膜上。以1∶1 000 的兔抗大鼠強(qiáng)啡肽、κ 受體、IL-17 單克隆一抗4 ℃靜置孵育過夜,再以1∶15 000 過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG 二抗室溫孵育2 h,用ECL 試劑盒發(fā)光顯影,同時(shí)檢測(cè)GAPDH 的表達(dá)作為內(nèi)參對(duì)照。圖像經(jīng)掃描儀掃描,重復(fù)3 次。采用凝膠圖像分析系統(tǒng)檢測(cè)蛋白質(zhì)跡條帶灰度,測(cè)定并計(jì)算強(qiáng)啡肽、κ 受體、IL-17 與GAPDH 表達(dá)灰度的比值。

    1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SPSS 13.0 軟件行方差分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用方差分析和LSD-t檢驗(yàn)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治黾胺谓M織濕/干重比值與模型組比較,迷走神經(jīng)電刺激組、納美芬組的濕/干重比值、動(dòng)脈血pCO2值均顯著降低,動(dòng)脈血pO2值顯著升高(P<0.01)。與迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬組濕/干重比值、動(dòng)脈血pCO2值、pO2值差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與納美芬組、迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組濕/干重比值、pCO2值均顯著降低,pO2值顯著升高(P<0.01),見表1。

    表1 各組大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治黾胺谓M織濕/干重比值Tab.1 Arterial blood gas analysis and lung tissue wet/dry weight ratio

    表1 各組大鼠動(dòng)脈血?dú)夥治黾胺谓M織濕/干重比值Tab.1 Arterial blood gas analysis and lung tissue wet/dry weight ratio

    注:與模型組比較,aP <0.01;與迷走神經(jīng)電刺激組比較,bP >0.05,cP <0.01;與納美芬組比較,dP <0.01

    2.2 大鼠肺組織病理變化模型組、迷走神經(jīng)電刺激組、納美芬組、納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組均可見肺泡間隔破壞,部分肺泡萎陷,肺間質(zhì)水腫明顯、見炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)和紅細(xì)胞滲出。假手術(shù)肺組織結(jié)構(gòu)完整清晰,肺泡腔內(nèi)無炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),肺間質(zhì)無滲出。在病變程度和病變范圍上,納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組比迷走神經(jīng)電刺激組、納美芬組明顯減輕(圖1)。

    圖1 各組大鼠肺組織病理變化(HE×100)Fig.1 Pathological changes of lung tissue in each group(HE×100)

    2.3 大鼠肺組織MPO 水平與模型組比較,迷走神經(jīng)電刺激組、納美芬組MPO 表達(dá)顯著降低(P<0.01);與迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬組MPO表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與納美芬組、迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組MPO 表達(dá)均顯著降低(P<0.01),見表2。

    2.4 大鼠肺組織強(qiáng)啡肽、κ受體、IL-17表達(dá)水平與模型組比較,納美芬組強(qiáng)啡肽、κ 受體、IL-17表達(dá)均顯著降低(P<0.01),而迷走神經(jīng)電刺激組強(qiáng)啡肽、κ 受體表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)、IL-17 表達(dá)顯著降低(P<0.01)。與迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬組強(qiáng)啡肽、κ 受體表達(dá)均顯著降低(P<0.01)、IL-17 表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與納美芬組、迷走神經(jīng)電刺激組比較,納美芬+迷走神經(jīng)電刺激組強(qiáng)啡肽、κ 受體、IL-17 表達(dá)均顯著降低(P<0.01),見圖2、表2。

    圖2 各組大鼠肺組織強(qiáng)啡肽、κ 受體和IL-17 表達(dá)(Western blot)Fig.2 Expression of dynorphin,κ-receptor and IL-17 in lung tissue of rats in each group(Western blot)

    表2 各組大鼠肺組織強(qiáng)啡肽及MPO、κ 受體、IL-17 表達(dá)水平Tab.2 Expression of dynorphin and MPO、κ-receptor and IL-17 in lung tissue of each group

    表2 各組大鼠肺組織強(qiáng)啡肽及MPO、κ 受體、IL-17 表達(dá)水平Tab.2 Expression of dynorphin and MPO、κ-receptor and IL-17 in lung tissue of each group

    注:與模型組比較,aP >0.05,bP <0.01;與迷走神經(jīng)電刺激組比較,cP <0.01,dP >0.05;與納美芬組比較,eP <0.01

    3 討論

    阿片肽與其受體的相互作用在炎癥反應(yīng)中發(fā)揮重要作用[8-9]。強(qiáng)啡肽是目前已知的活力最強(qiáng)的內(nèi)源性阿片肽,是κ 阿片受體的內(nèi)源性配體[10]。研究表明阿片肽與肺泡細(xì)胞表面受體結(jié)合后可誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,導(dǎo)致肺泡—毛細(xì)血管網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)通透性增高、肺間質(zhì)水腫[11]。阿片肽物質(zhì)與免疫細(xì)胞表面特定阿片肽受體結(jié)合后能誘導(dǎo)炎癥細(xì)胞活化增殖、釋放IL-17 等炎性細(xì)胞因子導(dǎo)致細(xì)胞損傷[12]。MPO是多型核粒細(xì)胞的一種標(biāo)志性酶,其活性和組織中中性粒細(xì)胞的浸潤(rùn)程度成正比,是反映中性粒細(xì)胞浸潤(rùn)的可靠指標(biāo)[13]。IL-17 是一種強(qiáng)有力的中性粒細(xì)胞趨化及激活因子,可早期特異性地出現(xiàn)在炎癥部位[14],在肺組織炎癥啟動(dòng)中發(fā)揮主要作用。在急性肺組織損傷過程中,IL-17可趨化巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞大量聚集、誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)發(fā)生導(dǎo)致肺組織損傷,同時(shí)隨著肺組織損傷加重,肺組織中IL-17 表達(dá)明顯升高[15]。本研究發(fā)現(xiàn)肺缺血-再灌注損傷組大鼠肺泡組織炎癥反應(yīng)(表現(xiàn)為MPO、IL-17 表達(dá)水平明顯升高)、肺功能損害(表現(xiàn)為動(dòng)脈血pO2值下降、pCO2值升高)明顯加重,而肺組織中強(qiáng)啡肽及κ 受體表達(dá)水平亦明顯升高,表明肺組織中強(qiáng)啡肽與受體相互作用在肺缺血-再灌注損傷后介導(dǎo)粒細(xì)胞浸潤(rùn)、促進(jìn)炎癥反應(yīng)過程中發(fā)揮重要作用。納美芬作為阿片肽受體拮抗劑可加速阿片肽物質(zhì)降解,經(jīng)納美芬處理后,肺組織中強(qiáng)啡肽水平明顯降低,κ 受體表達(dá)水平也隨之下降,炎癥反應(yīng)程度亦明顯減輕,推測(cè)納美芬抑制肺缺血-再灌注損傷的作用機(jī)制可能與加速?gòu)?qiáng)啡肽降解、抑制κ 受體表達(dá)水平,減輕炎癥反應(yīng)有關(guān)。體內(nèi)膽堿能抗炎通路(cholinergic anti-inflammatory pathway,CAP)將神經(jīng)系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)緊密聯(lián)系起來[16-17]。迷走神經(jīng)激活后傳出纖維釋放乙酰膽堿,直接或間接地作用于肺泡巨噬細(xì)胞的表面的α7n ACh R(膽堿能受體)[18],抑制NF-κB等信號(hào)通路的轉(zhuǎn)導(dǎo),降低炎癥因子的表達(dá)來減輕炎癥反應(yīng)。既往研究表明迷走神經(jīng)電刺激釋放乙酰膽堿可以降低IL-6 等炎性因子的表達(dá)從而控制炎癥的級(jí)聯(lián)反應(yīng),減輕肺組織損傷[19-20]。給予迷走神經(jīng)電刺激后,肺組織中強(qiáng)啡肽及κ 受體表達(dá)水平無顯著變化,但炎癥反應(yīng)程度明顯減輕(MPO、IL-17 表達(dá)水平明顯降低),推測(cè)迷走神經(jīng)電刺激可能通過CAP 來減輕缺血-再灌注損傷時(shí)肺組織中的炎癥反應(yīng)。將迷走神經(jīng)電刺激和納美芬聯(lián)合應(yīng)用后,肺組織中強(qiáng)啡肽及κ 受體表達(dá)水平、炎癥反應(yīng)程度較之單獨(dú)應(yīng)用納美芬出現(xiàn)明顯下降,表明聯(lián)合應(yīng)用迷走神經(jīng)電刺激可以增強(qiáng)納美芬降解強(qiáng)啡肽、抑制炎癥反應(yīng)的作用,推測(cè)肺組織內(nèi)膽堿能抗炎通路與阿片肽—受體炎癥通路可能存在交叉、級(jí)聯(lián)反應(yīng),具體過程尚需進(jìn)一步研究。本研究表明迷走神經(jīng)電刺激與納美芬聯(lián)合應(yīng)用于防治肺缺血-再灌注損傷可產(chǎn)生協(xié)同、增效作用,鑒于目前國(guó)外已出現(xiàn)體表外的頸部迷走神經(jīng)電刺激儀器[20],若能在臨床上將物理療法與藥物治療結(jié)合起來,多種方式聯(lián)合應(yīng)用防治肺缺血-再灌注損傷,有利于克服單一療法的效果局限,發(fā)揮各自優(yōu)勢(shì),其應(yīng)用前景將進(jìn)一步廣闊。

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