李勇,鄧卓丹,許均華
郴州市食品藥品檢驗檢測中心(郴州 423000)
果膠是一種雜多糖,廣泛分布在高等植物的細(xì)胞壁和細(xì)胞內(nèi)層[1]。果膠多糖是除了纖維素外最豐富的植物多糖,作為蔬菜和水果的天然成分,是一種極其安全的多功能食品添加劑,同時具有抗腫瘤、抗氧化、預(yù)防慢性疾病、調(diào)節(jié)免疫等生物活性,已被廣泛應(yīng)用于食品和制藥等行業(yè)。
鱷梨(Persea americanaMill)是月桂科植物的雙子葉水果,生長于世界熱帶和亞熱帶地區(qū)。近年來,鱷梨全球產(chǎn)量從2000年到2018年增長了2.3倍,2019年達(dá)到641萬 t[2]。而鱷梨工業(yè)化只用鱷梨果肉生產(chǎn)油脂、調(diào)味料等,從中產(chǎn)生的果皮和種子[3]約占整個水果質(zhì)量的25%,而果皮占11%~17%[4-5]。據(jù)報道,鱷梨果皮具有高含量生物活性化合物,例如縮水單寧、酚酸和黃酮醇羥基苯甲酸等[3-4,6-7],其被用作抗氧化劑、抗癌劑、抗菌劑等。但是,從鱷梨皮中提取果膠的有關(guān)研究及其相關(guān)性質(zhì)卻鮮有報道。
超聲波提取是新興綠色技術(shù),其已被廣泛應(yīng)用于不同植物中提取果膠,如葡萄柚皮[8]、酸橙皮[9]、茄子皮[10]。超聲輔助提取可以提高果膠的收率并顯著減少提取時間和殘留產(chǎn)物,提高加熱速率,節(jié)約能源并降低成本[11]。
以超聲波輔助酸提取鱷梨皮果膠,采用Box-Behnken試驗設(shè)計優(yōu)化浸提工藝,并對其氧化特性進(jìn)行研究,以期為鱷梨的深度開發(fā)及優(yōu)質(zhì)果膠新資源的生產(chǎn)利用提供一定的參考價值。
新鮮鱷梨,市售;D-半乳糖醛酸、DPPH、牛血清蛋白,HPLC級,上海源葉生物科技有限公司;咔唑、NaOH、磷酸、考馬斯亮藍(lán)、無水乙醇、無水甲醇、水楊酸、甲硫氨酸,均為分析純,上海國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
電子天平(AR124CN),上海奧豪斯儀器有限公司;pH計(FE20型),上海梅特勒-托利多儀器有限公司;超聲波清洗器(SK5200HP),上??茖?dǎo)超聲儀器有限公司;紫外可見分光光度計(TU1810型),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;ULTRA TURRAX(T25 digital),德國IKA儀器設(shè)備有限公司;離心機(jī)(H1850R),湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司;電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(DGG-9123A),上海森信實驗儀器有限公司;冷凍干燥機(jī)(Christ Alpha1型),德國Marin Christ公司。
1.3.1 果膠提取
將鱷梨果皮洗凈成碎片,在95 ℃下熱燙5 min以鈍化酶活,再放入55 ℃烘箱干燥至恒重。將干燥的果皮以粉碎機(jī)粉碎后于180 μm篩過濾,粉末以1∶30(g/mL)的比例溶解于蒸餾水,用鹽酸調(diào)節(jié)至pH為2,在超聲頻率320 W,溫度70 ℃條件下加熱30 min,將所得溶液冷卻至室溫,在4 ℃下以10 000 r/min離心20 min,得到的濾液用無水乙醇三倍體積沉淀后靜置1 h,為了減少果膠中含有的色素、可溶性糖和脂質(zhì)等雜質(zhì),用95%乙醇將凝結(jié)的果膠洗滌3次,用尼龍布過濾果膠分散體,凍干24 h。
1.3.2 單因素試驗設(shè)計
在1.3.1的試驗條件下,以超聲功率(160,200,240,280,320和360 W)、超聲溫度(40,50,60,70,80和90 ℃)、超聲時間(10,20,30,40,50和60 min)、料液比(1∶15,1∶20,1∶25,1∶30,1∶35和1∶40 g/mL)、pH(1.0,1.5,2.0,2.5,3.0和3.5)為影響因素,以鱷梨皮果膠得率為評價指標(biāo),對超聲波輔助酸提取鱷梨皮果膠工藝進(jìn)行優(yōu)化。
1.3.3 響應(yīng)面試驗
在單因素試驗基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面(Box-Behnken)設(shè)計(表1),對影響顯著的因素進(jìn)行優(yōu)化,進(jìn)行二次多項式回歸擬合,建立自變量數(shù)學(xué)模型,結(jié)合方差分析、各因素水平及其交互作用對結(jié)果進(jìn)行評價,并繪制相應(yīng)的響應(yīng)曲面圖,確定鱷梨皮果膠得率的最佳提取條件。
表1 Box-Behnken 試驗設(shè)計因素與水平
1.3.4 半乳糖醛酸測定
采用咔唑比色法測定半乳糖醛酸含量。準(zhǔn)確移取0,1.0,2.0,3.0,4.0和5.0 mL質(zhì)量濃度為1.0 g/L的半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)貯備溶液于6個50 mL容量瓶中,用水稀釋定容后搖勻,得到質(zhì)量濃度為0,20,40,60,80和100 mg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液。分別移取1.0 mL不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液于6支試管中,冷水循環(huán)下加入6.0 mL濃硫酸,再放置85 ℃水浴鍋中加熱25 min,冷至室溫,加入0.50 mL 0.15%的咔唑無水乙醇溶液,搖勻,在暗處放置30 min,以試劑空白為參比,在530 nm處測定其吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為Y=0.006 1X+0.007 8,R2=0.999 1。樣品稀釋液代替半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)液重復(fù)上述步驟測定吸光度。果膠半乳糖含量Y按式(1)計算。
式中:C為半乳糖醛酸的質(zhì)量濃度,mg/mL;V為果膠提取液的總體積,mL;N為提取液的稀釋倍數(shù);W為樣品的質(zhì)量,g。
1.3.5 蛋白質(zhì)和酯化度測定
果膠中的總蛋白質(zhì)含量通過Bradford蛋白質(zhì)測定試劑盒測定[12],其標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為Y=3.157X-0.008 4,R2=0.999 5。采用滴定法[13]對果膠的酯化度進(jìn)行分析。將0.5 g果膠溶解于250 mL去離子水,加入2 mL乙醇,混合后用磁力攪拌,以3滴1%酚酞作指示劑,用0.1 mol/L NaOH滴定并記錄滴定的體積V1,加入20 mL 0.5 mol/L NaOH溶液,靜置15 min使果膠去酯化。向溶液中加入20 mL HCl(0.5 mol/L)和3滴酚酞試劑,用0.1 mol/L NaOH再次操作,消耗的體積記為V2。至溶液呈粉紅色且30 s內(nèi)不褪色。酯化度按式(2)計算。
1.3.6 鱷梨皮果膠的抗氧化特性
1.3.6.1 DPPH自由基清除活性
測得無水甲醇溶液在吸光度A517處達(dá)到1.2~1.3。稱取0.002 g DPPH粉末于25 mL無水甲醇中充分溶解,以甲醇溶液與樣品溶液4∶1(mL/g)的比例加入具塞試管中,將混合溶液用振蕩器振蕩后,在30 ℃水浴鍋中恒溫避光加熱45 min,以甲醇為對照組,VC作為標(biāo)準(zhǔn)對照,在吸收波長為517 nm處測得樣品DPPH的自由基清除率,按式(3)計算[14]。
式中:A0為對照組甲醇的吸光度;A1為樣品的吸光度。
1.3.6.2 ABTS體外抗氧化活性
將ABTS以7.0 mmol/L的濃度溶于水中,與2.45 mmoL/L過硫酸鉀等體積反應(yīng),生成ABTS自由基陽離子(ABTS+·),在室溫(25±2 ℃)下暗靜置12~16 h。分析之前,ABTS+·使用0.22 μm濾膜過濾,用10 mmoL/L(pH 7.4)磷酸緩沖溶液稀釋,在紫外可見分光光度計734 nm處的吸光度達(dá)0.700(±0.02)。取0.1 mL不同質(zhì)量濃度樣品溶液,加入到3.9 mL已稀釋的ABTS+·溶液中,充分混合6 min后在波長734 nm處讀取吸光度(A1)。另外,把0.1 mL甲醇溶液加入3.9 mL ABTS+·溶液,混合后測得吸光度(A0);把1.0 mL樣品溶液加入到3.9 mL磷酸緩沖溶液中混勻,測其吸光度(Aj)。以VC作為標(biāo)準(zhǔn)對照,ABTS自由基清除率按式(4)計算。
1.3.6.3 羥自由基(·OH)清除率
參照趙俊仁等[15]的方法。將2.00 mL 1.80 mmol/L FeSO4溶液、1.50 mL 1.80 mmol/L水楊酸-乙醇溶液加入到1.00 mL不同質(zhì)量濃度的樣品溶液中,混合0.10 mL 0.03%的H2O2溶液以啟動反應(yīng),充分搖勻,在37℃下靜置30 min。以蒸餾水作對照組,在510 nm波長處測定吸光度。以VC作為標(biāo)準(zhǔn)對照,羥自由基清除率按式(5)計算。
1.3.6.4 超氧陰離子自由基(O2-·)清除率
分別將0.40 mL 0.13 mol/L甲硫氨酸、0.02 mmol/L維生素B2、0.70 mmol/L NBT溶液加入到0.40 mL 0.05 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.8)中,振蕩搖勻后分別加入0.40 mL不同質(zhì)量濃度的樣品溶液和1.00 mL蒸餾水,充分混合。將混合液置于35 ℃光照環(huán)境反應(yīng)20 min,在560 nm波長處測定樣品吸光度。以未添加甲硫氨酸和樣品溶液的作為空白組,未添加樣品的為對照組。以VC作為標(biāo)準(zhǔn)對照,樣品超氧陰離子自由基清除率按式(6)計算。
所有試驗平行3次,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。用SPSS Statistics,Origin 2018和Design-Expert 8.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進(jìn)行分析和繪圖。
2.1.1 超聲時間對果膠得率的影響
如圖1(A)所示:隨著提取時間從10 min增加到30 min,得率顯著上升,果膠得率從(14.71±0.1)%增加到(15.9±0.11)%;之后得率呈下降趨勢,可能由于超聲提取時間過長導(dǎo)致了果膠發(fā)生了結(jié)構(gòu)分解。當(dāng)超聲時間為30 min時,果膠的提取效果最佳。
圖1 不同單因素條件對鱷梨皮果膠得率的影響
2.1.2 料液比對果膠得率的影響
如圖1(B)所示:隨著料液比從1∶15(g/mL)至1∶30(g/mL),較高的料液比會使更多的溶劑進(jìn)入粉末中,從而使更多果膠溶出至溶劑中,果膠得率從(13.94±0.21)%增加到(15.45±0.13)%;當(dāng)料液比大于1∶30(g/mL)時,果膠得率逐漸下降,可能是由于萃取劑過量導(dǎo)致傳質(zhì)速率降低。因此,選用料液比1∶30(g/mL)時得率最高。
2.1.3 超聲功率對果膠得率的影響
如圖1(C)所示:當(dāng)超聲功率從160 W增加到320 W時,果膠得率呈現(xiàn)上升趨勢,當(dāng)功率達(dá)到320 W時,得率達(dá)到最大,隨后急劇下降。由于功率增大時,其對植物細(xì)胞破碎作用加大,破壞了原有結(jié)構(gòu),從而使果膠得率降低。故適宜超聲功率選擇320 W。
2.1.4 超聲溫度對果膠得率的影響
如圖1(D)所示,隨著超聲溫度的升高,果膠得率呈現(xiàn)出明顯的上升趨勢,在90 ℃時得率達(dá)到最大,可能是溫度的升高有利于果膠與溶劑充分混合后溶出,從而增加果膠得率。
2.1.5 pH對果膠得率的影響
如圖1(E)所示:當(dāng)pH從1.0增加到1.5時,果膠得率稍有上升趨勢,隨后急劇下降,可能是當(dāng)酸度過弱時,更多的原果膠不易轉(zhuǎn)化為水溶性的果膠;當(dāng)酸度過強(qiáng)時,水溶性果膠在強(qiáng)酸條件下進(jìn)一步脫脂裂解,使得果膠得率下降[16]。
2.2.1 Box-Behnken優(yōu)化設(shè)計試驗結(jié)果
結(jié)合單因素試驗結(jié)果,固定超聲溫度90 ℃、溶液pH 1.5,以料液比(A)、超聲時間(B)、超聲功率(C)為考察因素,果膠得率Y為響應(yīng)值,進(jìn)行響應(yīng)面試驗設(shè)計與分析,結(jié)果見表2。用Design-Expert 8.0軟件對表2數(shù)據(jù)進(jìn)行回歸擬合,對應(yīng)的二次回歸方程為Y=16.96+0.075A+0.32B+0.15C+0.17AB+0.15AC-0.29BC-0.69A2-0.17B2-0.065C2。
表2 Box-Benhnken 試驗設(shè)計與結(jié)果
2.2.2 響應(yīng)面二次模型的方差分析
方差分析結(jié)果見表3?;貧w模型p<0.01,極其顯著,方差失擬項p=0.254 5>0.05,不顯著,校正決定系數(shù)R2=0.839 1,說明此回歸方程模型擬合優(yōu)度較好,合理可靠。變異系數(shù)(C.V.)=1.95%,表明變異概率較低,因此模型可用于預(yù)測鱷梨皮果膠的最高得率。由表3可見,超聲時間(B)對果膠得率影響顯著,同時A2對得率影響非常顯著(p<0.001),其他均無顯著影響。依據(jù)p值大小,各因素的主效應(yīng)順序為B>C>A。
表3 響應(yīng)面二次模型的方差分析
2.2.3 各因素的交互作用
由圖2可見,隨著各因素水平的升高或延長,果膠得率均呈現(xiàn)先增大后減少的變化特征,響應(yīng)面有極大值。響應(yīng)面陡峭度、等高線形狀與密集度可以反映出兩因素之間交互作用的程度[17]。圖2(B)中超聲功率與料液比之間等高線沿料液比軸變化密集,呈橢圓狀,坡度相對較陡,表明兩因素間存有較明顯的促進(jìn)交互作用,且料液比對鱷梨皮果膠提取量的影響程度大于超聲功率。另外,在圖2(A)中,等高線呈圓形,表示料液比和超聲時間交互作用不明顯,兩因素間無促進(jìn)作用。同理圖2(C)中等高線沿超聲時間軸變化密集,而超聲功率比軸變化相對稀疏,結(jié)合響應(yīng)面陡峭程度也可以證明超聲時間的影響大于超聲功率。
圖2 各因素交互對鱷梨皮果膠提取率影響的響應(yīng)面及等高線圖
2.2.4 驗證性試驗
通過Design-Expert 8.0數(shù)據(jù)分析,最佳超聲波輔助酸法提取果膠的工藝條件為料液比1∶33.5(g/mL)、超聲時間40 min、超聲功率316.5 W,此條件下果膠得率預(yù)測值為(17±0.034)%。用試驗中得到的最佳提取工藝條件重復(fù)試驗。為便于實際操作,在料液比1∶33(g/mL)、超聲時間40 min、超聲功率317 W、超聲溫度90 ℃、pH 1.5條件下進(jìn)行重復(fù)試驗以驗證最佳提取工藝條件,其平均得率為(16.9±0.18)%,與理論值較吻合,表明響應(yīng)面優(yōu)化后的條件具有可行性。
最佳提取條件下提取的鱷梨皮果膠的化學(xué)成分示于表4中。果膠的半乳糖醛酸含量為(72±1.9)%,表明果膠較純。根據(jù)糧農(nóng)組織,作為食品添加劑或藥物的果膠半乳糖醛酸含量不應(yīng)低于65%[18],表明此方法提取出的鱷梨皮果膠符合要求。鱷梨皮果膠的含量高于開心果綠皮果膠(66%)[14]和仙人掌榕果皮果膠(64.5%)[19]。另外,鱷梨皮果膠的酯化值為(63±2.1)%,歸類為高甲氧基果膠,高甲基酯化的果膠對內(nèi)切PG和高溫似乎更穩(wěn)定[13],具有很強(qiáng)的食品保藏潛力。所提果膠的蛋白質(zhì)含量高于商業(yè)蘋果果膠(1.4%~1.6%)[20],可能具有較好的乳化能力。
表4 鱷梨皮果膠的理化性質(zhì) 單位:%
如圖3(A)所示,當(dāng)果膠質(zhì)量濃度從2 mg/mL增加到10 mg/mL時,鱷梨皮果膠DPPH自由基清除率從41.6%增加到76%,表明果膠的清除效果以濃度依賴性方式增加[21]。有研究曾報道,羥基的含量差異可能影響DPPH自由基的清除能力。Akihiro等[22]的研究也表明2-OaD-葡萄糖基-L-抗壞血酸(AA-2G)對DPPH自由基的清除活性低于抗壞血酸(AA),這是由于AA-2G的AA部分的C-2位的羥基被葡糖基取代,說明羥基與DPPH自由基的結(jié)合有利于DPPH自由基的清除。另外,DPPH自由基清除活性可能也與糖醛酸濃度相關(guān)[23],而鱷梨皮果膠糖醛酸濃度較純,提高了自由基清除率。這表明DPPH自由基清除活性很大程度上是由于物質(zhì)的化學(xué)組成差異所致。
如圖3(B)所示,在2~10 mg/mL濃度范圍內(nèi),鱷梨皮果膠溶液對ABTS自由基清除效果對濃度有很明顯的依賴性,在質(zhì)量濃度為6 mg/mL時,清除率增長速率較大,并在10 mg/mL時達(dá)到最大,為72%。
如圖3(C)所示,OH·自由基的清除率隨著果膠溶液濃度的增加呈現(xiàn)平緩上升的趨勢,從濃度為2 mg/mL時的34.2%增加到濃度為10 mg/mL時的68.9%。
O2-·自由基作為主要的ROS,會產(chǎn)生次要的ROS,導(dǎo)致DNA、蛋白質(zhì)和脂質(zhì)的氧化損傷[24]。如圖3(D)所示,在2~6 mg/mL濃度范圍內(nèi),鱷梨皮果膠溶液的·自由基清除活性依賴劑量濃度的增加而增加。在6 mg/mL濃度下,溶液的O2-·自由基清除率達(dá)到最高,為69.3%。當(dāng)果膠濃度大于6 mg/mL時,抗氧化活性沒有再明顯增加。
圖3 鱷梨皮果膠溶液的抗氧化活性
所有結(jié)果表明,鱷梨皮果膠溶液對DPPH自由基,ABTS自由基、OH·自由基、O2-·自由基有明顯的清除活性,說明此果膠的抗氧化能力較強(qiáng)。有報道稱,多糖的抗氧化活性與其給電子或給氫能力有關(guān)[25]。可能由于鱷梨皮果膠溶液中有更多的親電基團(tuán),在酸性條件下可以加速O—H鍵中的氫釋放,從而提高了其抗氧化活性。
利用三因素三水平Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計,通過超聲波輔助酸優(yōu)化鱷梨皮果膠提取工藝條件,建立了高度相關(guān)的二次多項式數(shù)學(xué)優(yōu)化模型,并通過方差分析表明具有較好的擬合度。其最佳工藝為料液比1∶33(g/mL)、超聲時間40 min、超聲功率317 W、超聲溫度90 ℃、pH 1.5,以此獲得的得率為(16.9±0.18)%,果膠中的半乳糖醛酸、酯化度和蛋白質(zhì)含量分別為(72±1.9)%,(63±2.1)%和(2.88±0.05)%??寡趸Y(jié)果表明,在2~10 mg/mL濃度范圍內(nèi),鱷梨皮果膠溶液對DPPH自由基、ABTS自由基、OH·自由基、O2-·自由基的清除率分別達(dá)76%,72%,68.9%和69.3%,表明果膠抗氧化效果較好,可為后續(xù)鱷梨皮果膠的進(jìn)一步研究和發(fā)展提供一定的理論依據(jù),同時對提高鱷梨皮資源的綜合經(jīng)濟(jì)效益具有重要意義。