李維政,寧忠雄,梁 赫,路 偉
(新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院/棉花教育部工程研究中心/自治區(qū)農(nóng)林有害生物監(jiān)測(cè)與安全防控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,烏魯木齊 830052)
【研究意義】丁布是玉米、小麥等禾本科作物中特有的次生代謝物質(zhì)(DIMBOA、2,4-二羥基-7-甲氧基-1,4-苯并噁嗪-3-酮)[1,2]。棉鈴蟲是一種雜食性的害蟲,玉米是新疆地區(qū)棉鈴蟲的重要寄主植物之一,運(yùn)用丁布作為標(biāo)記物,通過(guò)分析蟲體內(nèi)丁布的含量,對(duì)判斷棉鈴蟲取食的寄主植物來(lái)源有實(shí)際意義?!厩叭搜芯窟M(jìn)展】劉小紅等[3]采取HPLC-MS方法測(cè)定多個(gè)玉米品種幼苗中丁布含量,丁布回收率大約為99.97%。宋鵬飛等[4]利用HPLC方法對(duì)多種在生產(chǎn)上已經(jīng)推廣使用的玉米品種檢測(cè)丁布含量,11個(gè)玉米品種葉片中都含有丁布,但不同玉米品種之間丁布含量存在顯著性差異。李曉輝等[5]利用高效液相色譜方法對(duì)各種玉米品類黃化苗進(jìn)行了丁布含量檢測(cè),所有玉米品類黃化苗的丁布含量均顯著?!颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】目前丁布?xì)埩舴治龅奈墨I(xiàn)報(bào)道較少。目前丁布在蟲體內(nèi)的殘留分析報(bào)道較少,多集中于玉米等禾本科植物樣本中丁布的分析,新疆地區(qū)棉鈴蟲寄主植物主要有棉花、玉米、小麥等,小麥只有部分生長(zhǎng)期與棉花重合,其作為庇護(hù)所的作用較為有限[6]。而玉米能夠在時(shí)間和空間上為棉鈴蟲提供有效的產(chǎn)卵場(chǎng)所,能誘集棉鈴蟲成蟲產(chǎn)大量的卵,成為最適宜的庇護(hù)所作物[7]。目前丁布?xì)埩舴治龅那疤幚聿襟E較為繁瑣復(fù)雜,大多采用液相色譜法檢測(cè),檢測(cè)蟲體內(nèi)的丁布含量需要靈敏度更高的儀器才能實(shí)現(xiàn)。研究對(duì)比2種前處理方法對(duì)丁布含量的影響?!緮M解決的關(guān)鍵問題】比較2種不同的前處理方式,用Waters UPLC-MS/MS (Xevo TQS質(zhì)譜)檢測(cè)丁布的含量,建立一種UPLC-MS/MS測(cè)定棉鈴蟲體內(nèi)丁布含量的分析方法,為丁布在快速殘留分析提供科學(xué)依據(jù)。
Waters的UPLC-MS/MS(Waters Xevo TQS質(zhì)譜),Xinyi-2020樣品快速研磨儀(浙江寧波市新藝超聲設(shè)備有限公司)、小型冷凍離心機(jī)、AL204型電子天平(德國(guó)梅特勒)、KQ5200DE型超聲波儀(江蘇昆山市超聲儀器有限公司)。
丁布標(biāo)準(zhǔn)品(98%,上海市吉至生化科技有限公司);甲醇、甲酸、冰乙酸均為色譜純(賽默飛世爾科技公司),超純水用Milli-Q IQ 7010超純水儀(上海默克化工技術(shù)有限公司)制備,液氮。
供試棉鈴蟲飼養(yǎng)于新疆農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所養(yǎng)蟲室,每頭棉鈴蟲樣品分別裝入1 mL離心管中,-20℃保存。
1.2.1 提取
采取2種前處理方法提取,方法1參考Glauser等[8],方法2參考張曉影等[9]。
方法1:將棉鈴蟲樣品去除翅膀,在盛有液氮研缽中將蟲體研磨成粉末,研磨期間要保證研缽中有液氮,研缽需提前預(yù)冷。將棉鈴蟲粉末轉(zhuǎn)移到2 mL離心管中,加入2 mL含有0.5%甲酸的甲醇-水(50∶49.5,v/v)提取液,充分渦旋震蕩,每個(gè)離心管中放入10個(gè)直徑為1 mm的鋼珠,使用數(shù)字研磨儀30 Hz下提取2 min。樣品在4℃條件下14 000 r/min離心4 min,移液槍將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管,用甲醇定容至2 mL,過(guò)0.22 μm濾膜,貯存于HPLC棕色進(jìn)樣瓶中,-20℃保存。
方法2:將棉鈴蟲樣品去除翅膀,在盛有液氮的研缽中將蟲體研磨成粉末,研磨期間要保證研缽中有液氮,研缽需提前預(yù)冷。將棉鈴蟲粉末轉(zhuǎn)移到2 mL離心管中,每管加入500 μL甲醇,室溫下超聲提取30 min后,樣品在4℃條件下14 000 r/min離心4 min,移液槍將上清液轉(zhuǎn)移到新的離心管,在殘?jiān)性偌尤?00 μL提取液,4℃條件下14 000 r/min離心4 min,合并2次離心的上清液,用甲醇定容至2 mL,過(guò)0.22 μm濾膜,貯存于HPLC棕色進(jìn)樣瓶中,-20℃保存。
1.2.2 丁布系列濃度溶液的配制
準(zhǔn)確稱取丁布標(biāo)準(zhǔn)品,用色譜純甲醇配制成10 mg/L標(biāo)準(zhǔn)溶液,用色譜純甲醇逐級(jí)稀釋為5、10、20、50、100 μg/L 5個(gè)梯度濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液。
將5、10、20、50、100 μg/L 5個(gè)梯度濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液按照色譜質(zhì)譜條件檢測(cè),以儀器響應(yīng)值的峰面積為縱坐標(biāo),丁布的質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算丁布的線性回歸方程。
采用標(biāo)準(zhǔn)添加法,在不含丁布的棉鈴蟲空白樣品中,添加5、50 μg/L兩種濃度的丁布標(biāo)準(zhǔn)溶液,每個(gè)濃度重復(fù)5次,測(cè)定丁布添加回收率。
1.2.3 色譜質(zhì)譜條件
色譜柱為Waters Acquity UPLC BEH C18色譜柱(2.1×50 mm、1.7 μm)。采用Waters UPLC-MS/MS (Waters Xevo TQS質(zhì)譜),電噴霧離子化源(ESI)、多重反應(yīng)模式(MRM),正噴霧模式進(jìn)行測(cè)定。流動(dòng)相A為純水(含0.5%冰乙酸),B為甲醇。脫溶劑氣溫度和流速為650℃和800 L/Hr;毛細(xì)管電壓為3.0 kV。表1,表2
表1 流動(dòng)相梯度洗脫程序Table 1 Gradient elution procedure of mobile phase
表2 丁布多重反應(yīng)監(jiān)測(cè)條件(MRM)Table 2 Multiple reaction monitoring conditions of DIMBOA
研究表明,在5~100 μg/L質(zhì)量濃度范圍內(nèi),丁布的峰面積(y)與濃度(x)線性關(guān)系,回歸方程為y=283.435x+121.274,相關(guān)系數(shù)r為0.999 1。表3,圖1
研究表明,在5 μg/L添加水平下,2種方法棉鈴蟲樣品中丁布的平均添加回收率分別為52.32%±7.67%、84.26%±2.70%。在50 μg/L添加水平下,2種方法的平均添加回收率分別為29.38%±4.65%、96.78%±9.12%。方法2準(zhǔn)確度和精密度優(yōu)于方法1,丁布峰型及響應(yīng)值均較好,最低檢測(cè)濃度為5 μg/L。圖2,表3
表3 棉鈴蟲體內(nèi)丁布添加回收率Table 3 Recovery rate of DIMBOA in Helicoverpa armigera
Larsen等[10]采用丙酮提取玉米幼苗中的丁布,樣品需低溫冷凍、勻漿混合,再添加Amberlite XAD-7非離子聚合吸附劑,再用大量丙酮淋洗,洗脫液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)后用二氯甲烷定容,該方法的提取步驟繁瑣、時(shí)間較長(zhǎng)。劉保川等[11]用乙醚萃取法提取玉米苗中的丁布,3次萃取后還需要用氯仿-甲醇(95∶5,v/v)、純氯仿等多步重結(jié)晶來(lái)分離丁布,純化步驟較多。劉小紅等[3]用勻漿機(jī)將玉米苗搗碎,用無(wú)水乙醚將提取液萃取3次,再分別用無(wú)水硫酸鈉和和無(wú)水氯化鈣除去丁布提取液中殘余水分,濃縮蒸干后用甲醇定容。李曉輝等[5]在玉米苗樣品中加少許蒸餾水勻漿,用0.1 mol/L磷酸溶液酸化,將酸化液12 000 r/min離心15 min,上清液用乙醚萃取多次后旋蒸,甲醇定容。Li等[12]簡(jiǎn)化了前人的提取步驟,將玉米苗冷凍磨碎,用乙酸乙酯溶液直接萃取,將有機(jī)箱蒸干,殘余物用丙酮-己烷混合溶液重結(jié)晶后,即可得到丁布。
Glauser等[8]和張曉影等[9]2種前處理方法提取丁布,添加回收率實(shí)驗(yàn)表明,發(fā)現(xiàn)方法2(甲醇超聲提取)優(yōu)于方法1(甲醇-水混合溶液振蕩提取),在5、50 μg/L 2個(gè)添加水平下,方法1的添加回收率均小于70%,方法2在2個(gè)水平下的添加回收率分別為在50 μg/L添加水平下,甲醇超聲提取法的平均添加回收率分別為84.26%、96.78%,符合化合物殘留分析的要求。方法2丁布峰型及響應(yīng)值均較好,靈敏度優(yōu)于HPLC的最低檢測(cè)濃度。
對(duì)比甲醇超聲提取和甲醇-水混合溶液振蕩提取丁布的方法,甲醇超聲提取法的添加回收率均介于80.42%~110.13%,滿足化合物殘留分析的要求。棉鈴蟲樣品在低濃度5 μg/L、高濃度50 μg/L 2個(gè)添加水平下,甲醇超聲提取法的添加回收率最佳,平均添加回收率分別為84.26%、96.78%,最低檢測(cè)質(zhì)量濃度為5 μg/L。前處理方法安全、便捷、快速,檢測(cè)方法穩(wěn)定、分離效果高。