薄曉文, 張 敏, 郭利娟, 劉雪婷, 沈 永*
(1.山東省醫(yī)療器械和藥品包裝檢驗研究院,山東濟(jì)南 250101;2.國家藥品監(jiān)督管理局藥品包裝材料質(zhì)量控制重點實驗室,山東濟(jì)南 250101;3.山東省醫(yī)療器械生物學(xué)評價重點實驗室,山東濟(jì)南 250101)
多環(huán)芳烴(Polycyclic Aromatic Hydrocarbons,PAHs)具有致癌、致畸和致突變等危害,并且具有生物難降解性和累積性[1],因此,美國環(huán)境總署(EPA)把具有致癌、致畸和致突變的16種PAHs確定為重點控制污染物。歐盟發(fā)布的2005/69/EC指令,對填充油和輪胎中8種PAHs的含量進(jìn)行限制[2]。歐盟REACH法規(guī)附件X VII50也對消費品中的8種PAHs進(jìn)行了限制[3]。德國認(rèn)證技術(shù)文件ZEK 01.4-08[4]結(jié)合美國EPA及歐盟REACH法規(guī)管控的PAHs,將PAHs測試種類擴(kuò)大到了18種。
丁基橡膠塞因其良好的氣密性、低吸濕率、穩(wěn)定性、耐老化性和低析出性而被廣泛用于醫(yī)療器械生產(chǎn)和藥品包裝[5]。丁基橡膠塞在生產(chǎn)過程中需加入硫化劑、硫化促進(jìn)劑、硫化活性劑、補強(qiáng)劑、填充劑、軟化劑、防老劑、著色劑等多種加工助劑,以使橡膠基體獲得良好的加工性能和使用性能[6,7],PAHs通常隨填充油(軟化劑)和炭黑(補強(qiáng)劑和著色劑)的使用而被引入其中[8]。丁基橡膠塞與藥品長期接觸,多環(huán)芳烴等有毒有害物質(zhì)可能會遷移進(jìn)入藥品,這不僅會影響藥品的質(zhì)量,還有可能對患者的健康造成威脅。因此,需建立快速、準(zhǔn)確、靈敏的方法測定藥用丁基橡膠塞中多環(huán)芳烴的含量。
目前,針對橡膠類產(chǎn)品中PAHs的檢測主要包括氣相色譜-質(zhì)譜法(GC-MS)、氣相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(GC-MS/MS)及高效液相色譜法(HPLC)[7,9 - 14]。但現(xiàn)有方法主要集中在15~17種PAHs的測定上,存在同分異構(gòu)體不能有效分離的缺點。另外,由于橡膠類產(chǎn)品添加劑種類繁多、成分復(fù)雜,若樣品浸提液不經(jīng)凈化,直接進(jìn)樣GC-MS分析會存在基質(zhì)干擾,影響PAHs的定性及定量,并且容易造成進(jìn)樣口、色譜柱、檢測器等污染,影響儀器的使用壽命[10]。本文采用超聲浸提法對藥用丁基橡膠塞中的PAHs進(jìn)行極限浸提,通過固相萃取柱對樣品浸提溶液進(jìn)行凈化,同時對浸提條件進(jìn)行了優(yōu)化。利用GC-MS法建立了藥用丁基橡膠塞中18種PAHs的分析方法,并對不同生產(chǎn)廠家的樣品中18種PAHs的含量進(jìn)行了測定。該方法靈敏度高、準(zhǔn)確性好,抗基質(zhì)干擾能力強(qiáng),適用于藥用丁基橡膠塞中18種PAHs的檢測。
7890A-5977B氣相色譜-質(zhì)譜儀(美國,安捷倫公司);Turbovap LV全自動氮吹濃縮儀(瑞典,Biotage公司)。PAH-MIP固相萃取柱(博納艾杰爾,規(guī)格1 g/6mL);Strata?PAH固相萃取柱(飛諾美,規(guī)格750 mg/6mL);Oasis?HLB固相萃取柱(沃特世,規(guī)格5cc,200 mg);Oasis?HLB固相萃取柱(沃特世,規(guī)格6cc,200 mg)。
18種多環(huán)芳烴(表1)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液(美國o2si公司,濃度:1 000 mg/L,溶劑為二氯甲烷),萘-D8標(biāo)準(zhǔn)溶液(美國o2si公司,濃度:2 019 mg/L,溶劑為二氯甲烷);蒽-D10標(biāo)準(zhǔn)品(德國Dr Ehrenstorfer GmbH公司,批號:G1001140,純度:98.94%);苝-D12標(biāo)準(zhǔn)品(德國Dr Ehrenstorfer GmbH公司,純度:99.42%)。分別取內(nèi)標(biāo)萘-D8、蒽-D10和苝-D12適量,用二氯甲烷配制成濃度約為2 μg/mL的混合內(nèi)標(biāo)溶液。標(biāo)準(zhǔn)曲線溶液:用二氯甲烷將18種PAHs標(biāo)準(zhǔn)品稀釋成一定濃度的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,臨用前精密吸取二氯甲烷1 mL,加入混合內(nèi)標(biāo)溶液20 μL、不同量的PAHs標(biāo)準(zhǔn)儲備液,配制成濃度為1 ng/mL、2 ng/mL、4 ng/mL、5 ng/mL、6 ng/mL、8 ng/mL、10 ng/mL、20 ng/mL、50 ng/mL、100 ng/mL、150 ng/mL、200 ng/mL的標(biāo)準(zhǔn)曲線溶液(內(nèi)標(biāo)濃度約為40 ng/mL)。甲苯、乙酸乙酯、正己烷、二氯甲烷及丙酮均為色譜純。
藥用丁基橡膠塞樣品均由企業(yè)提供。
將橡膠塞樣品剪成粒徑為2 mm~3 mm的顆粒,稱取1 g(精確至0.0001 g),置于20 mL頂空瓶中,加入5 mL正己烷-丙酮(體積比1∶1),再精確加入混合內(nèi)標(biāo)溶液20 μL,混勻,密閉。在60 ℃水浴下超聲1 h。待頂空瓶冷卻至室溫后,將浸提液轉(zhuǎn)移至玻璃試管中。再向頂空瓶中加入5 mL正己烷-丙酮混合溶液,重復(fù)上述操作2次,將3次的浸提液合并至玻璃試管中,待凈化。
將浸提液于35 ℃水浴中氮吹至近干,用2 mL正己烷復(fù)溶,過固相萃取柱(預(yù)先依次用20 mL二氯甲烷和10 mL正己烷活化),再用2 mL正己烷沖洗玻璃試管,重復(fù)操作兩次,將沖洗液過柱,棄去上述濾液。用10 mL二氯甲烷淋洗,收集淋洗液。將淋洗液在35 ℃水浴中氮吹濃縮至1 mL,渦旋振蕩混勻,如有必要過0.22μm有機(jī)濾膜,待測。
氣相色譜條件:DB-EUPAH色譜柱(60 m×0.25 mm×0.25 μm);進(jìn)樣口溫度:300 ℃;進(jìn)樣量:1 μL;不分流;流速:1.4 mL/min;柱溫:60 ℃保持2 min,以25 ℃/min升溫至200 ℃,再以20 ℃/min升溫至320 ℃并保持24 min;傳輸線溫度:300 ℃。
質(zhì)譜條件:離子源類型:電子轟擊離子源(EI)源;離子源溫度:230 ℃;MS四極桿溫度:150 ℃;溶劑延遲:7.5 min;掃描方式:選擇離子模式(SIM)。
根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)報道[11 - 13,15],在采用GC-MS或GC-MS/MS法測定PAHs含量時,通常選用DB-EUPAH和HP-5MS這兩種色譜柱??疾炝薍P-5MS(60 m×0.25 mm×0.25 μm)和DB-EUPAH(60 m×0.250 mm×0.25 μm)兩種色譜柱。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在使用HP-5MS色譜柱時,同分異構(gòu)體苯并(b)熒蒽、苯并(k)熒蒽和苯并(j)熒蒽無法完全分離,使用DB-EUPAH色譜柱時,在優(yōu)化后的色譜條件下,18種PAHs可以完全分離,色譜見圖1。萘-D8與萘、菲和蒽-D10在色譜圖中存在的峰重疊現(xiàn)象,可通過它們的定性、定量離子的不同來區(qū)分目標(biāo)物與內(nèi)標(biāo)。
圖1 PAHs和內(nèi)標(biāo)的選擇離子色譜圖Fig.1 Selected ion chromatograms of PAHs and internal standard compounds
2.2.1 固相萃取柱的選擇根據(jù)文獻(xiàn)報道[1,9,10],PAHs大多采用硅膠固相萃取柱進(jìn)行凈化,但董彩玉等[9]報道過柱液重現(xiàn)性較差。因此,我們實驗了市售固相萃取柱的凈化效果。發(fā)現(xiàn)其中兩家的固相萃取柱雖然對樣品浸提液有凈化作用,但對分子量較小的PAHs的回收率低。而博納艾杰爾的固相萃取柱不僅能對樣品浸提溶液起到凈化作用,降低背景干擾,還可確保目標(biāo)物在凈化過程中不損失。將樣品浸提液、正己烷上樣濾液和二氯甲烷淋洗液分別用二氯甲烷定容至10 mL,然后分別用全掃描模式(SCAN,掃描范圍m/z45~450)和SIM模式進(jìn)行分析。結(jié)果表明,樣品浸提溶液在用上述固相萃取柱凈化過程中,其中的雜質(zhì)在用正己烷上樣時會被保留在萃取柱中,但經(jīng)固相萃取柱凈化后,基質(zhì)干擾極大降低,不僅可避免假陽性結(jié)果的出現(xiàn),還有助于樣品中目標(biāo)物的準(zhǔn)確定量。
2.2.2 浸提溶劑的選擇參照相關(guān)文獻(xiàn)報道[7,9,10],選用乙酸乙酯、正己烷、甲苯、正己烷-二氯甲烷(1∶1)、正己烷-乙酸乙酯(1∶1)、正己烷-丙酮(1∶1)6種常見的PAHs浸提溶劑,通過對1個陽性樣品進(jìn)行浸提,考察不同浸提溶劑的浸提能力。結(jié)果表明,樣品中含有苊、芴、菲、熒蒽以及芘,乙酸乙酯浸提的峰響應(yīng)值最大,記為100%,其次為正己烷-丙酮(1∶1),其所得樣品溶液中5種目標(biāo)物的峰響應(yīng)相對值均在95%以上,與乙酸乙酯幾乎相同,其余4種溶劑對目標(biāo)物的浸提效果明顯比前述兩種溶劑差,目標(biāo)物的峰響應(yīng)相對值大部分在80%以下。考慮到正己烷-丙酮(1∶1)氮吹至近干耗時短、所需水浴溫度低,有利于提高樣品前處理效率,因此選擇正己烷-丙酮(1∶1)為浸提溶劑。
2.2.3 浸提比例的優(yōu)化采用正己烷-丙酮(1∶1)為浸提溶劑,按不同浸提比例,對1個陽性樣品進(jìn)行浸提。具體操作如下:稱取樣品1 g(精確至0.0001 g),分別加入5 mL、10 mL、15 mL和20 mL正己烷-丙酮(1∶1),密封,于60 ℃水浴中超聲1 h,得浸提液,按儀器條件進(jìn)樣分析,記錄峰面積。結(jié)果表明,樣品中含有苊、芴、菲、熒蒽以及芘,隨著浸提比例的增大,其響應(yīng)值有所增加,但增幅僅在10%左右,當(dāng)浸提溶劑體積為20 mL時,浸提出的多環(huán)芳烴的響應(yīng)值反而下降。綜合考慮,最終確定浸提比例為5 mL/g。
2.2.4 極限浸提考察稱取樣品1 g(精確至0.0001 g),加入5 mL正己烷-丙酮(1∶1),密封,于60 ℃水浴中超聲1 h,制得樣品浸提液。然后,再向上述樣品中加入5 mL正己烷-丙酮(1∶1),重復(fù)上述操作直至達(dá)到極限浸提。結(jié)果表明,第二次浸提時各檢出的PAHs的峰面積約為首次浸提檢出量的30%,第三次浸提時各檢出的PAHs的峰面積約為首次浸提檢出量的10%。因此,選擇樣品超聲浸提3次,合并浸提液作為樣品浸提液。
2.3.1 檢出限和定量限取混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣分析,按信噪比(S/N)為3時的濃度為檢出限,S/N為10且具有良好精密度和準(zhǔn)確度的濃度為定量限。本方法18種PAHs的檢出限和定量限見表1。結(jié)果顯示,萘檢出限為4.0 ng/mL,定量限為10.0 ng/mL;二苯并(a,h)蒽檢出限和定量限均為10.0 ng/mL;其余PAHs的檢出限為0.2~1.0 ng/mL,定量限為1.0~2.0 ng/mL,表明方法檢出限良好,靈敏度高。
表1 18種PAHs和內(nèi)標(biāo)的保留時間、定量離子、定性離子、檢出限(LOD)和定量限(LOQ)Table 1 Retention times,quantitative ions,qualitive ions,LODs and LOQs of 18 PAHs and internal standards(ISTDs)
(續(xù)表1)
2.3.2 線性和范圍采用內(nèi)標(biāo)法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,見表2。結(jié)果顯示,在1~10 ng/mL和10~200 ng/mL范圍內(nèi),所有目標(biāo)物均呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,線性相關(guān)系數(shù)r均大于0.9992。
表2 PAHs的線性范圍、線性方程和相關(guān)系數(shù)Table 2 Regression equations,linear ranges and correlation coefficients(r) of PAHs
2.3.3 精密度和回收率取濃度為1 ng/mL、10 ng/mL和100 ng/mL的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液分別連續(xù)進(jìn)樣6次,計算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。在上述3個濃度水平進(jìn)行樣品加標(biāo)回收試驗中,每個濃度水平做3個平行樣,結(jié)果見表3。18種PAHs的加標(biāo)回收率為76.63%~113.93%,RSD值為0.11%~6.86%。上述結(jié)果表明方法精密度和準(zhǔn)確度良好,能夠滿足分析要求。
表3 PAHs的精密度和加標(biāo)回收率(%)Table 3 Precisions and recoveries of PAHs(%)
表4 不同廠家生產(chǎn)的藥用丁基膠塞中18種PAHs 的含量(ng/g)Table 4 Contents of PAHs in pharmaceutical butyl rubber closures acquired from different producers (ng/g)
本文建立了GC-MS法測定藥用丁基橡膠塞中18種PAHs含量。該方法靈敏度高、準(zhǔn)確度好,能夠有效降低膠塞樣品中的基質(zhì)干擾,避免假陽性結(jié)果的出現(xiàn),適用于藥用丁基膠塞中18種PAHs含量的測定,為此類產(chǎn)品的安全評價和質(zhì)量控制提供了方法參考。