王佳穎,鄭 宇,梁 潔,高青青,張金林,祁桂玲
(1.河北農(nóng)業(yè)大學(xué) 植物保護學(xué)院,河北 保定 071001;2.河北興柏農(nóng)業(yè)科技有限公司,河北 石家莊 050000)
多殺霉素(Spinosad),又名多殺菌素,是由刺糖多孢菌(Saccharopolyspora spinosa)經(jīng)過有氧發(fā)酵產(chǎn)生的一種大環(huán)內(nèi)酯類抗生素,由Spinosyn A(10%~15%)和Spinosyn D(85%~90%)組成,其作用模式獨特、自然分解快、對目標(biāo)害蟲高效,是一種具有廣闊市場前景的新型生物農(nóng)藥[1]。目前多殺霉素原藥由美國陶氏益農(nóng)公司獨家生產(chǎn),專利到期后,國內(nèi)的一些企業(yè)致力于多殺霉素的研究,完成了一些基礎(chǔ)性工作,但是由于產(chǎn)量低,還未能實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)[2]。
目前,提高菌株中多殺霉素產(chǎn)量的途徑主要集中在以下幾方面:前體化合物和多殺霉素生物合成途徑的代謝工程,調(diào)控基因的引入,基因組規(guī)模代謝模型(GSMM)指導(dǎo)的工程[3-4]、誘變[5]、基因組改組[6-7]、發(fā)酵過程優(yōu)化[8-10]和組學(xué)分析以及異源其他放線菌中多殺霉素的生物合成。程休等[11]將刺糖多孢菌菌液進行紫外線誘變40 s后涂在含有50 mg/L多殺霉素的平板上,篩選到了1株效價較原始菌株高59.1%的高產(chǎn)突變株。扶教龍等[12]把刺糖多孢菌引入鏈霉素、鼠李糖和安普霉素抗性,然后經(jīng)過紫外線和亞硝基胍誘變,結(jié)合響應(yīng)面試驗,篩選到1株效價較原始菌株提高了54.55%的高產(chǎn)突變株。
多殺霉素應(yīng)用范圍廣,己在73個國家250多種作物上注冊應(yīng)用[13-14],還被應(yīng)用于治療頭虱[15]、延長輪胎使用壽命[16]、抑制腫瘤增殖等方面[17],因此快速有效地提高多殺霉素的產(chǎn)量以達到工業(yè)化生產(chǎn)意義重大。本試驗通過對刺糖多孢菌株DS0322-3進行常溫常壓等離子誘變、紫外線誘變和鏈霉素、慶大霉素、氯霉素等抗性突變,進行高產(chǎn)菌株的選育,以期獲得可以穩(wěn)定遺傳的高產(chǎn)突變菌株,為工業(yè)化生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。
1.1.2 供試培養(yǎng)基 斜面/平板培養(yǎng)基:可溶性淀粉 18 g,葡萄糖 3 g,酵母膏 3 g,玉米漿 1 g,瓊脂粉 18 g,1 000 mL 蒸餾水,pH 值調(diào)至 7.0;種子培養(yǎng)基:可溶性淀粉 5 g,葡萄糖 15 g,酵母膏 3 g,玉米漿30 g,酪蛋白 30 g,硫酸鎂2 g,磷酸二氫鉀為 0.5 g,1 000 mL 蒸餾水,pH 值調(diào)至 7.0;發(fā)酵培養(yǎng)基:葡萄糖 55 g,可溶性淀粉 20 g,糊精 10 g,棉籽蛋白5 g,黃豆餅粉15 g,酵母膏5 g,硫酸鎂2 g,磷酸二氫鉀0.5 g,碳酸鈣4 g,1 000 mL蒸餾水,pH值調(diào)至7.0。
1.2.1 常溫常壓等離子體誘變選育 調(diào)整生物育種機(ARTP-ⅡS)功率為120 W,以氦氣為工作氣體,氣量為10 LSM。取10 μL孢子懸浮液(孢子量為108 cfu/mL)進行等離子體誘變,處理時間分別為 0、10、20、30、40、50和 60 s。誘變完成后加1 mL無菌水稀釋,取100 μL樣品進行涂板,每個處理重復(fù)3次,將涂布好的平板倒置于恒溫恒濕培養(yǎng)箱培養(yǎng)13 d后,統(tǒng)計各個平板上的菌落數(shù),計算致死率,選取長勢良好的單菌落進行篩選試驗。
1.2.2 紫外線誘變選育 試驗開始前將15 W的紫外線燈管預(yù)先開啟持續(xù)30 min左右,然后在黑暗條件下進行試驗,取10 mL孢子懸浮液于滅菌培養(yǎng)皿中,誘變時間分別為0、10、20、30、40、50和60 s,誘變完成后分別取100 μL樣品進行涂板,每個處理重復(fù)3次,涂布完成后立即用黑紙包住,同1.2.1進行培養(yǎng)和后續(xù)篩選試驗。
1.2.3 高產(chǎn)菌株的抗性突變篩選 ①抗性物質(zhì)母液的制備:分別稱取100 mg新霉素、紅霉素、慶大霉素和鏈霉素加10 mL無菌水溶解,分別稱取100 mg氯霉素、利福平和多殺霉素加10 mL甲醇溶解,用無菌注射器及針頭過濾器進行過濾后完成母液的制備。②最小抑制濃度的測定:取相應(yīng)質(zhì)量的鼠李糖和相應(yīng)劑量上述母液加入固體培養(yǎng)基中,混合均勻后倒平板,獲得目標(biāo)濃度的抗性平板,取100 μL孢子懸浮液涂板,每個處理3個重復(fù),于30 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)13 d,比較對照組和處理組平板上菌落的生長情況,確定最小抑制濃度。平板上抗性物質(zhì)的濃度如表1所示。
表1 固體平板中不同抗性物質(zhì)的濃度Table 1 Concentrations of different resistant substances in the solid plate
1.2.4 對誘變獲得的高產(chǎn)菌株進行抗性突變篩選以誘變育種篩選出的高產(chǎn)突變菌為出發(fā)菌株,根據(jù)上述試驗結(jié)果,選擇合適濃度的鏈霉素、新霉素、氯霉素、慶大霉素、紅霉素、利福平、鼠李糖和多殺霉素抗性平板進行高產(chǎn)抗性菌株的選育,試驗方法同1.2.3,選取長勢良好的單菌落進行篩選試驗。
1.2.5 96孔板高通量篩選 選取平板上長勢良好且形態(tài)豐富的菌落接種到96孔板中,8 d后通過HPLC檢測發(fā)酵液中多殺霉素的濃度,計算突變率。將多殺霉素產(chǎn)量高于對照組的突變菌株進行搖瓶復(fù)篩驗證。
1.2.6 多殺菌素的HPLC檢測 按照發(fā)酵液和甲醇的體積比例為1:4,進行多殺霉素的萃取試驗,振蕩混勻后,超聲波超聲破碎 30 min,3 500 r/min,離心10 min,取上清液過有機濾膜后進行HPLC檢測。色譜條件為色譜柱:島津Shim-pack VP-ODS 150 mm×4.6 mm;流動相:V甲醇∶V乙腈∶V水(含0.05% 乙酸銨)=45∶45∶10;進樣量 20 μL;流速為1.0 mL/min;柱溫:28℃;檢測波長:245 nm。依據(jù)多殺霉素標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)A和D組分的峰面積計算發(fā)酵液中多殺霉素的含量。
多殺霉素標(biāo)準(zhǔn)曲線的制備:配制5個不同濃度的多殺霉素標(biāo)準(zhǔn)樣品,進行標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制,濃度分別為 40、80、120、160 和 200 mg/L。
春節(jié)前夕,奶奶起得特別早。她一直忙前忙后,一會兒去泡糯米,一會兒又去準(zhǔn)備柴火。爺爺也忙得不可開交。到了下午,爸爸和幾個叔叔合力抬來了一個奇形怪狀的大家伙:一塊圓圓的大石頭,中間被掏空了,光滑得發(fā)亮,就像一個大石碗。爸爸說這大家伙叫石臼(),是打糍粑用的。
1.2.7 數(shù)據(jù)處理 運用Excel2010和SPSS19.0 等相關(guān)軟件完成數(shù)據(jù)分析。計算方法和公式如下:
在系統(tǒng)誤差存在的條件下,突變菌株的多殺霉素產(chǎn)量提高10%以上認(rèn)定為正突變菌株;突變株多殺霉素產(chǎn)量降低10%以下認(rèn)定為負突變菌株。
1.2.8 高產(chǎn)突變菌株的遺傳穩(wěn)定性檢測 根據(jù)96孔板的試驗結(jié)果,選取產(chǎn)量高于對照組的突變菌株進行搖瓶驗證試驗。根據(jù)搖瓶試驗結(jié)果對篩選到的高產(chǎn)突變株進行3次傳代穩(wěn)定性檢測,每次變化幅度小于10%認(rèn)定為可穩(wěn)定遺傳,并進行菌種保藏。
多殺霉素標(biāo)準(zhǔn)樣品的HPLC檢測如圖1所示,Spinosyn A 的保留時間在 8.5 min左右,Spinosyn D的保留時間在10.1 min左右,以多殺霉素濃度為橫坐標(biāo),Spinosyn A 和 Spinosyn D 的峰面積之和為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到線性回歸方程為Y=13.891X+35.461,相關(guān)系數(shù)R2=0.999 7,表明當(dāng)檢測液中多殺霉素濃度在40~200 mg/L時,濃度和峰面積之間存在良好的線性關(guān)系,可以用此方法檢測發(fā)酵液中多殺霉素的含量。
圖1 多殺霉素標(biāo)準(zhǔn)樣品的HPLC圖Fig.1 HPLC chromatogram for the standard solution of spinosad
2.2.1 常溫常壓等離子誘變選育 常溫常壓等離子(ARTP)對刺糖多孢菌DS0322-3的誘變效應(yīng)如圖2所示,在誘變時間為10~60 s時,致死率隨著時間的增加而增加,處理30 s后致死率達到90%左右。通過96孔板初篩統(tǒng)計了ARTP對刺糖多孢菌的突變率,在誘變時間為30 s時,刺糖多孢菌的突變率和正突變率均最高,分別為67.55%和16.34%,說明在后續(xù)試驗中利用ARTP篩選菌株時可以選擇30 s的誘變時間,減少工作量,提高工作效率。
圖2 ARTP對多刺糖多孢菌DS0322-3的誘變效應(yīng)Fig.2 The mutagenic effects of ARTP to Saccharopolyspora spinosa DS0322-3
96孔板初篩后選取高于對照組的高產(chǎn)菌株進行搖瓶復(fù)篩,結(jié)果如表2所示,有4株突變菌株的多殺霉素產(chǎn)量增長率在10%以上,誘變30 s得到的菌株AR1019-4的效價最高,為547.78 mg/L,較出發(fā)菌株增加了21.88%。
表2 高產(chǎn)突變菌株經(jīng)搖瓶培養(yǎng)時多殺霉素產(chǎn)量Table 2 Spinosad yield of high-yield mutant strains cultured in shake flasks
2.2.2 紫外誘變選育 紫外線對刺糖多孢菌DS0322-3的誘變效應(yīng)如圖3所示,在誘變時間為10~60 s時,致死率隨著誘變時間的增加而增加,處理30 s后致死率達到90%以上。通過96孔板初篩統(tǒng)計了紫外線對刺糖多孢菌的突變率,在誘變時間為40 s時,刺糖多孢菌的突變率和正突變率均最高,分別為81.53%和19.89%,說明在利用紫外線誘變篩選菌株時誘變時間可以選擇40 s,能快速高效的得到高產(chǎn)菌株。
圖3 UV對多刺糖多孢菌DS0322-3的誘變效應(yīng)Fig. 3 The mutagenic effects of UV to Saccharopolyspora spinosa DS0322-3
96孔板初篩后選取高于對照組的高產(chǎn)菌株進行搖瓶復(fù)篩,如表3所示,有5株突變菌株的多殺霉素產(chǎn)量增長率在10%以上,誘變40 s得到的菌株UV 1105-6的效價為500.28 mg/L,較原始菌株增加了14.15%。
表3 高產(chǎn)突變菌株經(jīng)搖瓶培養(yǎng)時多殺霉素產(chǎn)量Table 3 Spinosad yield of high-yield mutant strains cultured in shake flasks
2.2.3 高產(chǎn)菌株的抗性突變篩選 最小抑制濃度的確定:隨著平板中抗性物質(zhì)濃度的增加,刺糖多孢菌DS0322-3菌落生長逐漸受到抑制。將菌體完全被抑制生長的濃度視為最小抑制濃度,鏈霉素、新霉素、氯霉素、慶大霉素、紅霉素、利福平、鼠李糖和多殺霉素對刺糖多孢菌的最小抑制濃度分別為5、50、1.5、14、10、30、2 500 和 50 mg/L。
抗生素篩選濃度的確定:添加不同抗性物質(zhì)后,如圖4所示,菌落形態(tài)均發(fā)生了明顯的變化,對照平板上的菌落外緣有褐色色素,但經(jīng)過鏈霉素和氯霉素等進行抗性突變后,菌落邊緣褐色色素減少甚至消失。由于在最小抑制濃度時,固體平板上幾乎沒有菌落產(chǎn)生,故后續(xù)試驗選取具有明顯抑制作用且菌落形態(tài)良好的抑制濃度,具體濃度如表4所示。
圖4 刺糖多孢菌DS0322-3在不同抗性平板上的菌落形態(tài)Fig.4 Different colony morphologies of Saccharopolysporaspinosa DS0322-3 on resistant plates
表4 抗性物質(zhì)濃度篩選結(jié)果Table 4 Screening results of resistant substance concentration
2.2.4 以AR1019-4菌株為出發(fā)菌株進行高產(chǎn)菌株的篩選 將AR1019-4的孢子懸浮液稀釋涂布在表4處理濃度的抗性平板上,篩選結(jié)果如表5所示,有13株突變菌株的多殺霉素產(chǎn)量增長率在10%以上,在0.5 mg/L的氯霉素平板上得到的菌株Chl1215-5效價為637.12 mg/L,較出發(fā)菌株增加了16.31%,在12 mg/L的慶大霉素抗性平板上篩選到的菌株Gen1207-8,效價為597.59 mg/L。出發(fā)菌株AR1019-4和突變菌株Gen1207-8所產(chǎn)多殺霉素的液相色譜圖如圖5所示,菌株AR1019-4 D組分占比為11.14%,菌株Gen1207-8 D組分占比為30.52%,表明突變菌株Gen1207-8 D組分占比增加。
圖5 多殺霉素的HPLC圖Fig. 5 HPLC chromatogram for the spinosad
表5 高產(chǎn)突變菌株經(jīng)搖瓶培養(yǎng)時多殺霉素產(chǎn)量Table 5 Spinosad yield of high-yield mutant strains cultured in shake flasks
將多殺霉素產(chǎn)量較對照菌株增加15%以上的2個突變菌株Spi1210-28、Chl1215-5和D組分增加至30%以上的突變菌株Gen1207-8進行3次遺傳穩(wěn)定性檢測。結(jié)果如圖6所示,菌株Gen1207-8和Chl1215-5的3次產(chǎn)量無顯著性差異(P>0.05),且突變菌株Gen1207-8 D組分比例穩(wěn)定在30%~35%,菌株Spi1210-28的第2、3次產(chǎn)量均顯著低于第1次的產(chǎn)量(P<0.05)。表明本研究篩選得到2株具有良好遺傳穩(wěn)定性狀的突變菌株,為實現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。
圖6 突變菌株的遺傳穩(wěn)定性檢測Fig.6 The heredity stability test of mutant strain
通過常溫常壓等離子體誘變,篩選到了1株效價為547.78 mg/L的突變菌株AR1019-4,較原始菌株增加了21.06%。通過紫外誘變篩選高產(chǎn)突變株,效價較原始菌株最多提高14.15%。常溫常壓等離子誘變是一種新型的誘變技術(shù),原始菌株可能未接觸過該種誘變方式,菌株對等離子體比較敏感,所以有著較高的突變率。閔勇等[18]利用ARTP誘變處理多粘類芽孢桿菌NBF188,篩選到了1株使多粘菌素的產(chǎn)量提高106.2%的高產(chǎn)突變株,該突變株對番茄青枯病的抑制效果顯著優(yōu)于原始菌株。紫外誘變是一種經(jīng)典的誘變方式,但是難以獲得產(chǎn)量變化大的菌株,本試驗結(jié)果與大部分文獻報道相一致,紫外誘變提高產(chǎn)量的幅度一般低于15%。孫夢潔等[19]通過紫外線誘變篩選葡萄球菌D14,篩選到的陽性突變體的活性只有原始菌株1.04倍,所以為篩選得到高產(chǎn)菌株,紫外誘變經(jīng)常與其他育種技術(shù)相結(jié)合,如ARTP誘變,亞硝基胍誘變,抗生素突變篩選,原生質(zhì)體融合等[20-21]。
通過抗生素突變技術(shù),以ARTP誘變得到的高產(chǎn)突變菌株AR1019-4作為出發(fā)菌株,獲得1株具有氯霉素抗性的高產(chǎn)菌株Chl 1215-5,效價為637.12 mg/L,較出發(fā)菌株增加了16.31%;慶大霉素抗性篩選出1株Spinosyn D組分增加至30%~35%的突變菌株 Gen 1207-8,效價為 597.59 mg/L,效價較出發(fā)菌株提高了12.18%,且該2種突變株均可穩(wěn)定遺傳。抗生素突變技術(shù)通過向微生物體內(nèi)引入一些特定的突變,改變與微生物代謝途徑相關(guān)的核糖體變化,達到提高代謝產(chǎn)物的目的。氯霉素能夠與50S亞基結(jié)合,阻斷新肽鏈的形成,抑制蛋白質(zhì)的合成。張金兒等[22]將NTG誘變的水稻惡苗病菌6028菌株的原生質(zhì)體引入氯霉素抗性,使赤霉素產(chǎn)量比出發(fā)菌高20%。慶大霉素能夠修飾改造微生物體內(nèi)的翻譯元件,分析多殺霉素的合成途徑可知,多殺霉素的聚酮合成酶有10個延伸模件和1個裝載模件,其中只有裝載模件和延伸模件3能夠以丙酸為底物,大多聚酮合成酶以乙酸為底物,延伸模件8對底物的特異性不強,乙酸和丙酸都可以利用,利用乙酸時產(chǎn)生Spinosyn A,利用丙酸時產(chǎn)生 Spinosyn D,但是利用丙酸的幾率只有15%左右,所以多殺霉素中Spinosyn D組分只占10%~15%[23-25]。本試驗獲得慶大霉素抗性的菌株Gen1207-8 Spinosyn D組分比例提高至30%~35%,可能是因為獲得慶大霉素抗性,增加了延伸模件8對丙酸的催化機率。
本研究通過ARTP誘變、UV誘變和抗性突變技術(shù)選育多殺霉素高產(chǎn)菌株,共篩選了1 536株突變菌株,得到1株具有氯霉素抗性的突變菌株,效價為637.12 mg/L,較出發(fā)菌株DS0322-3增加了41.76%,為工業(yè)化生產(chǎn)奠定了基礎(chǔ),前期文獻均為多殺霉素整體產(chǎn)量提高[2-12],未出現(xiàn)關(guān)于Spinosyn D占比增加的報道,本研究得到1株具有慶大霉素抗性的突變菌株,Spinosyn D組分比例由10%~15%增加至30%~35%,效價為597.59 mg/L,但Spinosyn D組分的殺蟲活性有待進一步研究。