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    改進的QuEChERS-氣相色譜-質(zhì)譜法測定中式臘肉中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺

    2021-11-05 10:48:18戴裕杰關(guān)榮發(fā)黃海智孫玉敬何榮軍
    食品科學(xué) 2021年20期
    關(guān)鍵詞:亞硝胺臘肉中式

    戴裕杰,關(guān)榮發(fā),,黃海智,孫玉敬,何榮軍,楊 開,蔡 銘

    (1.中國計量大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,浙江 杭州 310018;2.浙江工業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,浙江 杭州 310014)

    作為N-亞硝基化合物中的一類,目前已知的N-亞硝胺約有300 種,其基本結(jié)構(gòu)為R1(R2)N—N=O,且大部分具有致癌性。N-亞硝胺廣泛存在于飲料和酒類[1-2]、醬油[3]、 蔬菜制品[4-6]、水產(chǎn)品[7-9]、肉及肉制品[10-11]等食品中。食品中的N-亞硝胺可分為揮發(fā)性N-亞硝胺和非揮發(fā)性 N-亞硝胺兩類,而揮發(fā)性N-亞硝胺的致癌作用強于非揮發(fā)性N-亞硝胺[12]。食品中常見的揮發(fā)性N-亞硝胺包括 N-亞硝基二甲胺(N-nitrosodimethylamine,NDMA)、N-亞硝基甲乙胺(N-nitrosomethylethylamine,NMEA)、N-亞硝基二乙胺(N-nitrosodiethylamine,NDEA)、N-亞硝基二丙胺(N-nitrosodipropylamine,NDPA)、N-亞硝基二丁胺(N-nitrosodibutylamine,NDBA)、N-亞硝基哌啶(N-nitrosopiperidine,NPIP)、N-亞硝基吡咯烷(N-nitrosopyrrolidine,NPYR)、N-亞硝基嗎啉(N-nitrosomorpholine,NMOR)等。1987年國際癌癥研究機構(gòu)將N-亞硝胺定義為強致癌性食品污染物,并將NDMA和NDEA列為2A類致癌物[13]。

    中式臘肉是一種以畜肉為原料,配以其他輔料,經(jīng)腌制、烘干(或曬干、風(fēng)干)、煙熏(或不煙熏)等工藝加工而成的非即食肉制品[14]。煙熏臘肉主要在四川和湖南生產(chǎn)消費[15-16],因其獨特的風(fēng)味和易于保存的特性而深受當(dāng)?shù)鼐用竦南矏?。在臘肉腌制過程中常會加入亞硝酸鹽,以起到發(fā)色、抗氧化和抑菌的作用[17],進而提高產(chǎn)品的食用品質(zhì)和生物安全性。但在臘肉加工和后續(xù)貯藏過程中,特別是在酸性條件下,亞硝酸鹽會和蛋白質(zhì)分解產(chǎn)生的仲胺通過亞硝化反應(yīng)生成N-亞硝胺[18]。此外,以豬肉這類紅肉作為制作原料[11,19]以及采用烘烤煙熏的熱加工方式[20-21]都會提高臘肉中N-亞硝胺的含量水平。臘肉中N-亞硝胺的存在,嚴重影響其食用安全性并對公眾健康安全構(gòu)成威脅。GB 2762—2017《食品中污染物限量》要求肉制品中NDMA含量應(yīng)不大于3.0 μg/kg[22];而美國農(nóng)業(yè)部規(guī)定腌制肉類中總揮發(fā)性N-亞硝胺的限量標(biāo)準(zhǔn)為10.0 μg/kg。目前,尚未有研究報道中式臘肉中N-亞硝胺的風(fēng)險水平,因而有必要對代表性產(chǎn)地中式臘肉中N-亞硝胺的種類和含量進行檢測并評估其風(fēng)險水平。

    QuEChERS方法通過使用萃取鹽和吸附劑將前處理中的提取和凈化相結(jié)合,相比固相萃取[23-24]和固相微萃取[11,25]無需專用設(shè)備,具有簡便、廉價的特點。該方法目前已在部分動物性食品中N-亞硝胺檢測的前處理環(huán)節(jié)使用[8,10,26-27],但尚未用于中式臘肉。此外,臘肉中N-亞硝胺含量低,且基質(zhì)復(fù)雜(含脂肪、煙熏和香辛料等成分),因此需基于QuEChERS法對前處理中的提取、凈化和濃縮環(huán)節(jié)進行系統(tǒng)優(yōu)化。目前,色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)憑借其出色的分離能力和高靈敏度已廣泛應(yīng)用于食品中N-亞硝胺的檢測[1,6,11]。綜合儀器的靈敏度和通用性,本研究采用GB 5009.26—2016《食品中N-亞硝胺類化合物的測定》第1法中的氣相色譜-質(zhì)譜(gas chromatographymass spectrometry,GC-MS)法[28]進行分離定量。

    本研究旨在采用改進的QuEChERS和GC-MS法建立測定中式臘肉中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺(包括NDMA、NMEA、NDEA、NDPA、NDBA、NPIP、NPYR和NMOR,化學(xué)結(jié)構(gòu)見圖1)的檢測方法。系統(tǒng)優(yōu)化提取溶劑種類、超聲時間、冷凍時間、吸附劑種類和用量、氮吹水浴溫度以及氮吹定容體積,并從線性關(guān)系、基質(zhì)效應(yīng)、靈敏度、準(zhǔn)確度和精密度方面對方法進行評價。同時,應(yīng)用該方法檢測12 份代表性市售樣品,評估目前中式臘肉中N-亞硝胺的風(fēng)險水平,并分析產(chǎn)地和豬肉種類對N-亞硝胺含量影響的顯著性。以期能為臘肉及其他肉制品中N-亞硝胺的控制工藝研發(fā)、風(fēng)險評估和法規(guī)完善提供方法支持和數(shù)據(jù)借鑒。

    圖1 8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Fig. 1 Chemical structures of eight volatile N-nitrosamines

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    12 份代表性中式臘肉樣品(四川和湖南各6 份)均購自電商平臺;通過預(yù)實驗選擇基質(zhì)最復(fù)雜的7號中式臘肉(豬五花)樣品作為前處理優(yōu)化和方法評價中的實驗基質(zhì),計算回收率時扣除其N-亞硝胺本底含量。

    乙腈、甲醇、正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯、氯化鈉、無水硫酸鎂、無水硫酸鈉(均為分析純) 杭州高晶精細化工有限公司;N-丙基乙二胺(primary secondary amine,PSA)、十八烷基硅烷鍵合硅膠(octadecylsilane,C18) 上海安譜實驗科技股份有限公司;甲殼素、殼聚糖、多壁碳納米管(multi-walled carbon nanotubes,MWCNTs)、納米Fe3O4上海阿拉丁生化科技股份有限公司;N-亞硝胺混標(biāo)(2 mg/mL,含NDMA、NMEA、NDEA、NDPA、NDBA、NPIP、NPYR和NMOR) 美國o2si公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    BCD-215YD E冰箱 青島海爾股份有限公司;PL403電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司; NP-30旋渦混合器 常州恩培儀器制造有限公司; KQ-100E超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;DW-FW251超低溫冷凍儲存箱 中科美菱低溫科技有限責(zé)任公司;Allegra X-30R高速冷凍離心機 美國 Beckman Coulter公司;7890A-5975C GC-MS聯(lián)用儀 美國Agilent公司。

    1.3 方法

    1.3.1 樣品前處理

    1.3.1.1 提取

    將樣品去皮后切成約0.5 cm×0.5 cm×0.5 cm的肉丁,混勻后-20 ℃冷凍3 h以上。取適量樣品放入粉碎機中絞碎,稱取10 g(精確至0.01 g)試樣至50 mL聚丙烯離心管中。加入10 mL乙腈,渦旋10 s混勻;再加入1 g氯化鈉和4 g無水硫酸鎂,渦旋10 s、振蕩5 s混勻;30 ℃超聲波輔助提取10 min。

    1.3.1.2 凈化

    -40 ℃冷凍20 min后,0 ℃、8 000 r/min離心10 min。將上清液轉(zhuǎn)移至另一含300 mg PSA和900 mg無水硫酸鈉的50 mL離心管中,渦旋1 min后,0 ℃、8 000 r/min離心10 min。

    1.3.1.3 濃縮

    將上清液轉(zhuǎn)移至另一50 mL離心管中,30 ℃水浴氮吹至約1 mL。將濃縮液移取至濃縮管中,室溫氮吹至300 μL。用1 mL注射器吸取樣液,過0.22 μm尼龍濾膜后注入含內(nèi)插管的進樣瓶中,-20 ℃保存待測。

    1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

    混標(biāo)儲備液(1 000 ng/mL)的配制:準(zhǔn)確移取25 μL混標(biāo)原液于50 mL容量瓶,乙腈定容。

    溶劑混標(biāo)工作液的配制:用乙腈將混標(biāo)儲備液逐級稀釋,配制成質(zhì)量濃度分別為5、10、15、20、50、150、500 ng/mL的溶劑混標(biāo)工作液。

    基質(zhì)混標(biāo)工作液的配制:取7號樣品按1.3.1.1節(jié)和1.3.1.2節(jié)處理,將上清液轉(zhuǎn)移至50 mL離心管,30 ℃水浴完全氮吹干后分別加入300 μL 5、10、20、50、150 ng/mL 和500 ng/mL的溶劑混標(biāo)工作液,渦旋混勻。

    上述標(biāo)液均置于-20 ℃保存。

    1.3.3 GC-MS條件

    參考相關(guān)文獻[27,29]方法進行分析。DB-WAX極性毛細管色譜柱(60 m×0.25 mm,0.5 μm);程序升溫:初始溫度50 ℃,以20 ℃/min升至120 ℃,再以5 ℃/min升至200 ℃,最后以20 ℃/min升至240 ℃;進樣口溫度240 ℃;載氣(氦氣)流速1.0 mL/min;不分流進樣;進樣量2 μL。

    電子電離源;離子源溫度230 ℃;四極桿溫度150 ℃;采用選擇離子監(jiān)測模式。8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的保留時間和質(zhì)譜參數(shù)見表1,色譜圖見圖2。

    圖2 8 種揮發(fā)性N-亞硝胺標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖(500 ng/mL)Fig. 2 Chromatograms of a mixture of eight volatile N-nitrosamine standards (500 ng/mL)

    表1 8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的保留時間和質(zhì)譜參數(shù)Table 1 Retention time and mass spectrometric parameters for eight volatile N-nitrosamines

    1.4 統(tǒng)計分析

    利用Excel 2019軟件進行數(shù)據(jù)處理,利用GraphPad Prism 8軟件進行作圖和統(tǒng)計分析。實驗設(shè)置3 個重復(fù),結(jié)果以±s表示。分別采用單因素方差分析Tukey檢驗和獨立樣本t檢驗確定多組和2 組數(shù)據(jù)均值間的差異顯著性(P<0.05)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 前處理優(yōu)化

    2.1.1 提取溶劑種類和超聲時間

    提取不同動物性食品基質(zhì)中N-亞硝胺實驗確定的最佳提取溶劑有所不同[9,24,29]。因此,本實驗綜合采用5 種不同極性的溶劑(乙腈、甲醇、正己烷、二氯甲烷和乙酸乙酯)對加標(biāo)樣品中8 種不同極性的N-亞硝胺[30]進行提取。樣品按1.3.1.1節(jié)提取,加入不同溶劑前均勻滴加200 μL 500 ng/mL的溶劑混標(biāo)工作液并室溫靜置15 min[10]進行加標(biāo)處理(后續(xù)加標(biāo)方式同此),其中超聲提取0 min;并按1.3.1.2節(jié)凈化,其中-40 ℃冷凍10 min,僅使用900 mg無水硫酸鈉作為凈化填料。將提取凈化后的樣液50 ℃水浴充分氮吹,上述溶劑對應(yīng)的共提取雜質(zhì)體積分別約為0.2、0.5、1.0、1.4 mL和1.8 mL??梢娬和?、二氯甲烷和乙酸乙酯這3 種親油性溶劑對高脂肪食品中油脂的溶解性較高[24,27]。為降低后續(xù)凈化難度同時滿足500 μL以下氮吹定容體積的要求,因此選擇乙腈作為提取溶劑(圖3a)。此外,Qiu Yuesheng[8]和Dong Hao[9]等的研究結(jié)果表明,采用乙腈提取N-亞硝胺相比其他溶劑具有更高的回收率。

    圖3 提取條件對8 種揮發(fā)性N-亞硝胺回收率的影響Fig. 3 Effect of extraction conditions on recoveries of eight volatile N-nitrosamines

    而陶森等[29]的實驗結(jié)果表明,乙酸乙酯(96.3%)相比乙腈(87.4%)對NDMA的提取回收率更高。為進一步提高8 種N-亞硝胺的回收率,采用乙腈結(jié)合超聲波輔助提取。加標(biāo)樣品按1.3.1.1節(jié)提取,超聲提取不同時間(0、10 min和20 min);凈化處理同提取溶劑種類優(yōu)化;按1.3.1.3節(jié)濃縮,其中水浴溫度50 ℃、氮吹濃縮至500 μL。如圖3b所示,超聲提取10 min相比不處理(0 min),5 種N-亞硝胺(除NDBA、NPIP和NMOR)的回收率均有顯著提高(P<0.05)。而隨著超聲時間延長到20 min,部分小分子質(zhì)量、低沸點的N-亞硝胺(NDMA、NMEA、NDEA和NDPA)的回收率相比10 min出現(xiàn)顯著下降(P<0.05),這可能是萃取鹽進一步吸水放熱和超聲提取熱效應(yīng)造成的損失。因此,選擇超聲提取時間為10 min。

    2.1.2 冷凍時間、吸附劑種類和用量

    中式臘肉中脂肪含量較高,尤其是以豬五花肉為原料制作的臘肉。雖然采用乙腈提取能夠明顯減少脂肪類共萃取物,但提取液中仍會保留少量的脂類物質(zhì)。提取液經(jīng)氮吹濃縮,其中雜質(zhì)的比例會進一步提高,從而影響結(jié)果定量的準(zhǔn)確性。根據(jù)脂類在低溫下易凝固的特性及其與N-亞硝胺熔點的差異,可利用冷凍和低溫離心的方法使脂肪從提取液中析出并與之分離[13,29]。加標(biāo)樣品按1.3.1.1節(jié)提?。话?.3.1.2節(jié)凈化,分別冷凍不同時間(0、10、20 min和30 min),其中僅使用900 mg無水硫酸鈉作為凈化填料;濃縮處理同超聲時間優(yōu)化。隨著冷凍時間的延長,除脂效果會更加徹底,但當(dāng)時間延長至30 min,NMOR的回收率出現(xiàn)顯著下降(P<0.05) (圖4)。因此,確定最佳冷凍時間為20 min。

    圖4 冷凍時間對8 種揮發(fā)性N-亞硝胺回收率的影響Fig. 4 Effect of freezing time on recoveries of eight volatile N-nitrosamines

    冷凍凈化后的上清液呈淡黃綠色,將其充分氮吹,離心管底部仍有微量紅色油狀雜質(zhì)。本實驗分別采用6 種不同除雜效果的吸附劑(PSA[3,27]、C18[3,26]、甲殼 素[31-33]、殼聚糖[32-33]、MWCNTs[34-35]和納米Fe3O4[36])結(jié)合無水硫酸鈉作為QuEChERS凈化填料進行第2步凈化。樣品按1.3.1.1節(jié)提?。话?.3.1.2節(jié)凈化,其中凈化填料分別采用6 種不同吸附劑+900 mg無水硫酸鈉的形式。在200、300 mg和400 mg添加量條件下,提取液經(jīng)PSA凈化并充分氮吹后離心管底部無明顯油狀物殘留,其凈化效果均明顯優(yōu)于其他5 種吸附劑。這可能是由于經(jīng)冷凍凈化后提取液中保留的主要是少量極性共萃取物,它們更易通過極性相互作用與PSA結(jié)合。在已加入PSA的50 mL離心管中添加10 mL 10 ng/mL的溶劑混標(biāo)工作液,渦旋1 min后0 ℃、8 000 r/min離心10 min,濃縮處理同超聲時間優(yōu)化,考察不同PSA用量(200、300 mg和400 mg)對8 種N-亞硝胺回收率的影響。由表2可知,當(dāng)用量增加到400 mg時,NDMA、NDBA和NPYR的回收率均出現(xiàn)顯著下降(P<0.05),因而選擇300 mg作為PSA的最終用量。在此基礎(chǔ)上,確定凈化填料的最佳組合為300 mg PSA+900 mg無水硫酸鈉。

    表2 吸附劑種類和用量對8 種揮發(fā)性N-亞硝胺回收率的影響Table 2 Effects of adsorbent types and amounts on recoveries of eight volatile N-nitrosamines

    2.1.3 氮吹水浴溫度和氮吹定容體積

    8 種N-亞硝胺為低分子質(zhì)量、易揮發(fā)性物質(zhì),根據(jù)超聲提取溫度實驗結(jié)果(該因素未列出),其回收率易受溫度影響。取10 mL 10 ng/mL溶劑混標(biāo)工作液按1.3.1.3節(jié)濃縮至500 μL,考察不同水浴溫度(30、40、50、60 ℃和70 ℃)對8 種N-亞硝胺回收率的影響。如圖5a所示,當(dāng)水浴溫度從30 ℃升至40 ℃,NDMA、NMEA和NDEA 3 種N-亞硝胺的回收率出現(xiàn)顯著下降 (P<0.05)。為保證小分子質(zhì)量N-亞硝胺的回收率,最終采用30 ℃的氮吹水浴溫度。

    圖5 濃縮條件對8 種揮發(fā)性N-亞硝胺回收率的影響Fig. 5 Effects of condensation conditions on recoveries of eight volatile N-nitrosamines

    為提高方法的靈敏度,需將樣液濃縮至微量體積。取10 mL 10 ng/mL溶劑混標(biāo)工作液按1.3.1.3節(jié)氮吹濃縮至不同體積(0、100、300 μL和500 μL)。如圖5b所示,當(dāng)采用完全吹干(0 μL)后加對應(yīng)體積溶劑的定容方式時,會造成8 種N-亞硝胺回收率的顯著下降 (P<0.05),這與Dong Hao等[9]的研究結(jié)果一致。而選擇氮吹至近干后定容的方式,在微量定容體積條件下會使結(jié)果產(chǎn)生較大偏差。因而選擇先將樣液水浴氮吹至約1 mL再轉(zhuǎn)移至濃縮管常溫氮吹至對應(yīng)定容體積的方式進行濃縮。分別考察濃縮至100、300 μL和500 μL對8 種N-亞硝胺回收率的影響,結(jié)果表明當(dāng)?shù)禎饪s至300 μL時8 種N-亞硝胺的回收率相較500 μL無顯著下降,同時能在一定程度上降低方法的定量限。而當(dāng)濃縮至100 μL時,由于定容體積過小,無法保證部分N-亞硝胺的回收率。因此,最終選擇將樣液氮吹濃縮至300 μL。

    2.2 方法評價

    2.2.1 線性關(guān)系、基質(zhì)效應(yīng)、檢出限和定量限結(jié)果

    按1.3.3節(jié)方法分別對6 個質(zhì)量濃度梯度(5、10、20、50、150 ng/mL和500 ng/mL)的溶劑和基質(zhì)混標(biāo)工作液進行檢測,以質(zhì)量濃度(ng/mL)為橫坐標(biāo)、目標(biāo)物定量離子峰面積為縱坐標(biāo)進行線性回歸,分別得到相應(yīng)的線性方程和相關(guān)系數(shù)?;|(zhì)和溶劑線性方程的相關(guān)系數(shù)均大于0.997(表3僅為基質(zhì)的),表明目標(biāo)物在相應(yīng)質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

    表3 8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、 基質(zhì)效應(yīng)、檢出限和定量限Table 3 Linear ranges, linear equations, correlation coefficients, matrix effects, limits of detection and limits of quantification for eight volatile N-nitrosamines

    通過計算基質(zhì)與溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線間斜率的比值考察基質(zhì)效應(yīng)[8]。根據(jù)SANTE文件[37],當(dāng)基質(zhì)效應(yīng)為0.8~1.2時,表明基質(zhì)效應(yīng)較弱,可忽略其對結(jié)果的影響。由表3可知,8 種N-亞硝胺的基質(zhì)效應(yīng)為0.86~0.98,表現(xiàn)為不同程度的基質(zhì)抑制,但整體較弱,這表明通過低溫冷凍結(jié)合PSA兩步凈化實現(xiàn)了良好的除雜效果。但為獲得更準(zhǔn)確的結(jié)果,本研究仍采用基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線對目標(biāo)物進行校正定量。

    分別將定量離子信噪比為3∶1和10∶1時每種目標(biāo)物的含量定義為該方法的檢出限和定量限。如表3所示,該方法8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的檢出限和定量限范圍分別為0.05~0.14 μg/kg和0.15~0.47 μg/kg,其定量限水平均低于GB 5009.26—2016《N-亞硝胺類化合物的測定》第一法的定量限(1.0 μg/kg)[28],這表明方法的靈敏度較高。

    2.2.2 平均回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差結(jié)果

    取10 g粉碎后的7號樣品于50 mL離心管中,分別添加200 μL 15、50 ng/mL和150 ng/mL低中高3 個添加量(0.3、1.0 μg/kg和3.0 μg/kg)的溶劑混標(biāo)工作液進行加標(biāo)處理。按1.3.1節(jié)和1.3.3節(jié)進行加標(biāo)回收實驗,每個添加量設(shè)置6 個重復(fù)。如表4所示,8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的平均回收率為71.3%~94.1%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.4%~11.2%,均在SANTE文件規(guī)定的可接受范圍內(nèi)(70%≤平均回收率≤120%、相對標(biāo)準(zhǔn)偏差≤20%)[37]。

    表4 8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的平均回收率和相對標(biāo)準(zhǔn)偏差Table 4 Average recoveries and relative standard deviations of eight volatile N-nitrosamines

    2.3 實際樣品測定結(jié)果

    采用建立的方法對12 份代表性中式臘肉樣品進行檢測,結(jié)果如表5所示,中式臘肉中主要的揮發(fā)性N-亞硝胺為NDMA、NDEA、NDBA、NPIP、NMEA和NDPA,其檢出率和平均含量分別為41.7%~58.3%和0.33~0.74 μg/kg, 其中NMOR未檢出。目前國標(biāo)中尚未對總揮發(fā)性N-亞硝胺含量進行限定,本研究以樣品中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺含量之和作為樣品中的總揮發(fā)性N-亞硝胺含量。參照GB 2762—2017和美國農(nóng)業(yè)部的限量標(biāo)準(zhǔn),將單項和總N-亞硝胺的限量水平分別設(shè)置為3.0 μg/kg和10.0 μg/kg。12 份樣品中僅1 份樣品的NDEA含量(3.06 μg/kg)超標(biāo),而總揮發(fā)性N-亞硝胺含量均未超標(biāo),這表明目前市售中式臘肉中揮發(fā)性N-亞硝胺的含量水平整體較低。這可能與近年來臘肉生產(chǎn)工藝的不斷改進有關(guān),如亞硝酸鹽添加量的控制、衛(wèi)生狀況的改善和低溫?zé)熝夹g(shù)的運用等。此外,由表6可知,產(chǎn)地和豬肉種類對中式臘肉中總揮發(fā)性N-亞硝胺含量均未產(chǎn)生顯著影響(P>0.05)。

    表5 12 份中式臘肉樣品中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的含量水平Table 5 Contents of eight volatile N-nitrosamines in 12 Chinese bacon samples

    表6 產(chǎn)地和豬肉種類對12 份中式臘肉樣品中總揮發(fā)性 N-亞硝胺含量的影響Table 6 Effect of geographical origin and pork cuts on contents of total volatile N-nitrosamine in 12 Chinese bacon samples

    3 結(jié) 論

    本研究基于QuEChERS前處理方法進行系統(tǒng)優(yōu)化。采用冷凍和PSA兩步凈化降低基質(zhì)效應(yīng)(0.86~0.98);通過氮吹濃縮至300 μL提高方法靈敏度(定量限0.15~0.47 μg/kg);利用乙腈結(jié)合超聲波輔助提取提高方法準(zhǔn)確度(回收率71.3%~94.1%)?;诟倪M的QuEChERS法和GC-MS法建立的檢測方法,操作簡便、成本低廉,適用于中式臘肉中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺的測定。而該法是否適用于其他原料種類的臘肉制品及動物性食品中N-亞硝胺的檢測,則需通過進一步的實驗驗證。該方法的建立有助于為中式臘肉中N-亞硝胺控制技術(shù)的研發(fā)提供方法支持。

    將該方法用于市售樣品中N-亞硝胺水平的評估,結(jié)果表明,目前中式臘肉中8 種揮發(fā)性N-亞硝胺和總揮發(fā)性N-亞硝胺的風(fēng)險水平均較低。但今后仍需對其風(fēng)險水平進一步全面評估,包括增大樣本量、擴大原料種類和產(chǎn)地的范圍等。目前國標(biāo)中僅規(guī)定了NDMA的限量要求,但市售樣品中還檢出了其他6 種揮發(fā)性N-亞硝胺,因此需增加標(biāo)準(zhǔn)中應(yīng)檢測的N-亞硝胺種類,尤其是補充總N-亞硝胺含量這一指標(biāo)。

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