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    豬流行性腹瀉病毒HB2018的分離鑒定及致病性

    2021-11-02 11:26:50陸泓宇周丹娜楊克禮袁芳艷劉澤文趙紅梅田永祥長江大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院湖北荊州43405湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院畜牧獸醫(yī)研究所農(nóng)業(yè)部畜禽細(xì)菌病防治制劑創(chuàng)制重點實驗室湖北武漢430064華中農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院湖北武漢430070
    中國獸醫(yī)學(xué)報 2021年9期
    關(guān)鍵詞:毒株亞群斷奶

    耿 超,陸泓宇,梁 婉,周丹娜,楊克禮,郭 銳,袁芳艷,劉 威,高 婷 ,劉澤文,趙紅梅,田永祥* (1.長江大學(xué) 動物科學(xué)學(xué)院,湖北 荊州 43405;.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院 畜牧獸醫(yī)研究所 農(nóng)業(yè)部畜禽細(xì)菌病防治制劑創(chuàng)制重點實驗室,湖北 武漢 430064;3.華中農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物醫(yī)學(xué)院,湖北 武漢 430070)

    豬流行性腹瀉病毒(PEDV)可引起一種以嘔吐、水樣腹瀉和脫水為主要特征的急性、高度接觸性傳染病。各年齡段豬對該病毒均易感,7日齡以內(nèi)的哺乳仔豬癥狀最為嚴(yán)重,感染致死率高達(dá)90%~100%,給養(yǎng)豬業(yè)造成了極大的經(jīng)濟損失[1-2]。

    2010年,世界范圍內(nèi)暴發(fā)大規(guī)模PEDV疫情,其中,PEDV的S基因變異是毒株毒力改變的主要原因[3]。病原學(xué)研究顯示,與疫苗毒株CV777相比,流行毒株發(fā)生了較大的變異,其S基因同源性為91%~94%[4]。隨著PEDV、豬傳染性胃腸炎病毒(TGEV)二聯(lián)滅活疫苗,PEDV、TGEV和豬輪狀病毒(PoRV)(G5型)三聯(lián)活疫苗以及抗病毒制劑等防控產(chǎn)品的商品化,PEDV疫情得到了控制[5-6],但是PEDV的變異依然十分活躍,需要密切關(guān)注其變異趨勢,為疫病的防控做好儲備。

    本試驗分離得到1株可以在Vero細(xì)胞上穩(wěn)定傳代的PEDV變異株,并擴增測定其S基因序列,通過遺傳進(jìn)化分析,可以得出近年來PEDV流行株的變異趨勢。測定分離株的病毒滴度以及設(shè)計動物回歸試驗,研究目前流行的PEDV變異株的特性,將為PEDV疫情的防控提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 病料、細(xì)胞及實驗動物17份病死仔豬的小腸病料采自湖北省發(fā)生腹瀉的豬場,PEDV檢測有7份為陽性,TGEV和偽狂犬病病毒(PRV)檢測均為陰性;Vero細(xì)胞由湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所獸醫(yī)室保存。10只26日齡健康仔豬購自湖北省某豬場,RT-PCR檢測實驗豬的PEDV、TGEV和PRV為陰性,PEDV-IgG酶聯(lián)檢測試劑盒(上海酶聯(lián))檢測仔豬的血清抗體為陰性。

    1.2 主要試劑DL2000 DNA Marker、2×Phanta Max Master Mix購自Vazyme公司;胎牛血清(FBS)、DMEM培養(yǎng)基、0.25%胰酶購自Gbico公司;中性紅購自國藥集團化學(xué)試劑有限公司;瓊脂糖購自碧云天生物技術(shù)有限公司;RNA提取試劑盒購自Axygen公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Thermo公司;產(chǎn)物純化試劑盒購自南京諾唯贊生物科技有限公司;pMD18-T購自寶生物工程(大連)有限公司;PEDV抗體IgG(PEDV-IgG)酶聯(lián)檢測試劑盒購自上海酶聯(lián)科技生物科技有限公司。

    1.3 樣品的處理和檢測將采集的病料剪取合適大小置于2 mL離心管底部,加入1 mL pH 7.4的PBS緩沖液。用組織破碎儀27次/s破碎10 min后,12 000 r/min離心5 min,取上清,根據(jù)AXYGEN公司的DNA/RNA小量提取試劑盒說明書提取基因組,運用多重RT-PCR的方法進(jìn)行鑒定[7]。將PEDV為陽性的上清液用0.22 μm微孔濾膜過濾除菌,分裝后,加入1%雙抗,-80℃?zhèn)溆谩?/p>

    1.4 病毒的分離與純化將1 mL處理好的病毒液接種單層Vero細(xì)胞,于CO2培養(yǎng)箱37℃孵育2 h,棄上清,加入含7.5 mg /L的胰酶DMEM培養(yǎng)基6 mL,待細(xì)胞出現(xiàn)70%~80%病變,收取病毒液,反復(fù)凍融3次分裝備用。參照文獻(xiàn)[8]的噬斑試驗和病毒滴度的測定方法,利用Vero細(xì)胞純化F20代的病毒液,運用Reed-Muench法計算病毒液的TCID50。

    1.5 S基因的克隆參考NCBI公布的CV777毒株的序列,將S基因分為S1和S2兩段,用Primer 5.0設(shè)計引物(表1)。提取PEDV分離株的總RNA,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書將RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA。以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴增。反應(yīng)體系(總體積為50 μL):2×Phanta Max Master Mix 25 μL,上、下游引物各2 μL,PEDV cDNA 3 μL,ddH2O 18 μL。反應(yīng)條件:95℃ 3 min;95℃ 15 s,60℃ 15 s,72℃ 150 s,35個循環(huán);72℃延伸5 min,4℃保存2 h。用1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定PCR擴增產(chǎn)物。按照產(chǎn)物純化試劑盒說明書,純化目的條帶,進(jìn)行T載體克隆,得到重組陽性質(zhì)粒,送擎科生物科技(武漢)有限公司測序。

    表1 PEDV S基因的PCR擴增引物

    1.6 S基因的遺傳進(jìn)化與分析參照GenBank登錄的PEDV的代表性毒株以及我國近幾年流行毒株的S基因序列(表2),運用Mega Ⅹ繪制遺傳進(jìn)化樹,將HB2018株的S基因與不同時間不同地域分離的PEDV毒株進(jìn)行對比分析。同時,將S基因的氨基酸序列與商品化疫苗株(CV777、DR13、AJ1102和LW/L)進(jìn)行比對。

    表2 PEDV參考毒株信息

    1.7 動物試驗10只26日齡斷奶仔豬用PEDV-IgG酶聯(lián)檢測試劑盒檢測仔豬的血清抗體為陰性。實驗豬隨機分成接毒組(n=5)和陰性組(n=5),每個試驗組的豬被飼喂在P2動物房。接毒組口服接種4 mL/只病毒液(TCID50為106.7/mL),對照組口服接種相同劑量的DMEM培養(yǎng)基。接種豬和陰性對照豬在接種后每天觀測腹瀉情況,并采集直腸拭子進(jìn)行病毒RNA的檢測。在接種PEDV 6 d后,實施安樂死進(jìn)行病理檢查。腹瀉通過糞便稠度評分來評估。糞便稠度評分標(biāo)準(zhǔn)如下:0=固體;1=糊狀;2=半液態(tài);3=液態(tài),評分為2分或2分以上為腹瀉。

    2 結(jié)果

    2.1 樣品的檢測結(jié)果通過多重RT-PCR檢測,17份腹瀉樣品中檢出PEDV陽性樣品7份,約占41.18%,TGEV和 PRV陽性樣品未檢出。結(jié)果表明,湖北地區(qū)的仔豬腹瀉病原主要為PEDV。

    2.2 病毒的分離鑒定將PEDV陽性病料接種至Vero細(xì)胞后,有1份陽性病料能夠在Vero細(xì)胞上出現(xiàn)明顯的細(xì)胞病變(圖1),主要表現(xiàn)為細(xì)胞輪廓消失、細(xì)胞融合拉網(wǎng)及細(xì)胞死亡脫落。經(jīng)過RT-PCR檢測,試驗成功分離得到1株P(guān)EDV,命名為HB2018株。運用Reed-Muench法計算HB2018分離株的病毒滴度為106.7TCID50/mL。

    A.對照組;B.接毒組圖1 Vero細(xì)胞接毒結(jié)果

    2.3 S基因的擴增使用分離株基因組反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板,進(jìn)行PCR擴增,得到S1和S2的目的條帶,長度分別為2 208,1 953 bp(圖2)。送擎科生物科技(武漢)有限公司測序得到S1和S2的序列,拼接得到全長為4 161 bp的S基因。

    M.DL5000 DNA Marker;1.S1基因;2.S2基因圖2 S基因的分段PCR擴增結(jié)果

    2.4 S基因的遺傳進(jìn)化與分析將分離株S基因與NCBI上公布的典型序列進(jìn)行比對(圖3)?;赟基因繪制遺傳進(jìn)化樹表明,PEDV毒株主要分為兩個大的分支,GⅠ分支主要包含早期和經(jīng)典PEDV毒株,而我國近幾年的PEDV流行株基本屬于GⅡ分支。HB2018株與我國近幾年流行的毒株處于同一分支,與經(jīng)典毒株CV777株等處于不同分支,同源性只有93.76%。HB2018株與我國近幾年的流行株一樣,均發(fā)生了明顯的變異。此外,HB2018株與YC2014株、CH/HNLH/2015株和AHCZ-2株同源性較近,同源性分別為99.25%,99.13%,99.23%。

    圖3 PEDV分離株S基因的遺傳進(jìn)化分析

    HB2018株與現(xiàn)有商品化疫苗株的S基因核苷酸和氨基酸進(jìn)行比對,同源性比對結(jié)果顯示,HB2018分離株與CV777和DR13(GⅠ亞群)的核苷酸同源性為93.76%和93.52%,與AJ1102和LW/L(GⅡ亞群)的核苷酸同源性為97.40%和97.00%(表3)。HB2018株與CV777和DR13(GⅠ亞群)的氨基酸同源性為93.44%和92.93%,與AJ1102和LW/L(GⅡ亞群)的氨基酸同源性為98.12%和96.90%(表3)。HB2018株與商品化疫苗株相比有11個氨基酸發(fā)生突變(表4),這11個位點的突變與GⅠ、GⅡ亞群皆不相同,且與同屬于GⅡ亞群的疫苗株在1 199位有1個氨基酸的插入。

    表3 HB2018分離株S基因核苷酸和氨基酸同源性分析 %

    表4 HB2018分離株與疫苗株S基因關(guān)鍵氨基酸的突變位點

    2.5 動物試驗接種PEDV的斷奶仔豬中,接種后1 d出現(xiàn)輕微腹瀉,此后腹瀉癥狀加劇,在接種3 d時,斷奶仔豬腹瀉癥狀嚴(yán)重(所有評分均≥2),隨后,仔豬癥狀逐漸好轉(zhuǎn)。在整個試驗過程中,沒有出現(xiàn)陰性對照的斷奶仔豬出現(xiàn)腹瀉或其他臨床癥狀。在接種1~6 d,斷奶仔豬的糞便稠度評分先上升后下降(每個時間點P<0.01)(圖4)。通過RT-PCR檢測斷奶仔豬的直腸拭子,接毒組的3頭仔豬在接種2 d檢測到病毒RNA,接種3~6 d,接毒組的斷奶仔豬均檢測到病毒RNA。整個試驗過程中,沒有陰性對照豬的糞便中可檢測到病毒RNA(表5)。在安樂死的接種斷奶仔豬中沒有明顯的大體損傷。斷奶仔豬的組織學(xué)檢查顯示,小腸的腸壁變得薄而透明,并且在小腸腔中積聚了大量的液體(圖5)。陰性對照組的小腸及大腸等其他器官未見明顯組織學(xué)損傷。

    腹瀉通過糞便稠度評分來評估。糞便稠度評分如下:0=固體;1=糊狀;2=半液態(tài);3=液態(tài),評分為2分或2分以上為腹瀉。每個數(shù)值為5頭斷奶仔豬的平均值圖4 斷奶仔豬糞便稠度評分

    表5 斷奶仔豬直腸拭子病毒RNA檢測

    3 討論

    本研究分離獲得1株命名為HB2018的PEDV毒株,擴增其S基因,并分析S基因核苷酸和氨基酸的同源性。根據(jù)GUO等[9]的分型依據(jù),HB2018株屬于GⅡa亞群,與CV777等經(jīng)典毒株的同源較低,僅為93.76%,處于不同的分支,與2011年以后我國分離報道的PEDV變異株(GⅡ亞群)處于同一分支,但與AJ1102、LW/L等GⅡ亞群的疫苗株相比,分離株HB2018依然處在不同分支,PEDV依然存在繼續(xù)變異的潛在風(fēng)險。氨基酸同源性分析顯示,PEDV與現(xiàn)有的商品化疫苗株有較大差異,PEDV正在出現(xiàn)新的變異。由此可見,近幾年我國的PEDV依舊處于不斷地變異中,需要與流行株相匹配的疫苗株,研究HB2018分離株的特性,將為PEDV疫情的控制提供技術(shù)儲備。

    通過動物試驗可知,分離株HB2018口服感染斷奶仔豬,仔豬均出現(xiàn)腹瀉癥狀,隨后好轉(zhuǎn),但直腸拭子中可以檢測到PEDV 的RNA,組織學(xué)檢測小腸出現(xiàn)病變,由此可知,PEDV引起哺乳仔豬死亡主要為小腸損傷,脫水致死,結(jié)果與JUNG等[1]的研究相一致。此外,有研究對不同日齡仔豬進(jìn)行動物回歸試驗,也證實了PEDV可引起仔豬小腸的組織學(xué)病變[10-11]。LIU等[12]測定直腸拭子PEDV RNA滴度的結(jié)果,與本研究中仔豬排毒的時間一致。

    全球范圍內(nèi)廣泛流行的PEDV流行株與經(jīng)典株及疫苗株的基因序列發(fā)生了很大程度的變異,其S基因核苷酸序列與報道的PEDV流行株與經(jīng)典株出現(xiàn)了較大的差異。原因是冠狀病毒基因組為單股正鏈的RNA病毒,穩(wěn)定性較差,易發(fā)生突變。2010年以來,我國暴發(fā)的大規(guī)模PEDV感染疫情是PEDV發(fā)生了較大變異所導(dǎo)致。王婧怡等[13]調(diào)查發(fā)現(xiàn),我國原種豬場的PEDV血清陽性值較高,PEDV的疫情依然嚴(yán)峻。此外,PEDV還在變異,這種變異可能對PEDV的防控提出新的挑戰(zhàn),需加強該病原的流行病學(xué)研究,密切關(guān)注病原的遺傳變異。因此,研究當(dāng)前PEDV主要流行株為防控PED的發(fā)生有重要的意義。

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