馬萍蘋,鄢 莉,張佳蘭*
(1.長江大學 生命科學學院,湖北 荊州 434025;2.長江大學 動物科學學院,湖北 荊州 434025)
米曲霉(Aspergillus oryzae)屬于曲霉屬[1-2],主要存在于發(fā)酵食品、糧食、土壤以及腐敗的有機物中,是美國食品與藥品管理局和美國飼料公司協(xié)會發(fā)布的安全菌種之一[3-4]。米曲霉是一類可以產復合酶的菌種[5-7],菌絲一般由多細胞組成,能夠產生豐富的蛋白酶系,包括堿性蛋白酶,中性蛋白酶和酸性蛋白酶,中性蛋白酶能耐受較高的溫度[8]。由于液態(tài)深層發(fā)酵具有生長周期短、成本低、傳質傳熱性良好、各種生化反應更為均勻的特點[9-10],而且霉菌在液態(tài)培養(yǎng)基中一般長勢良好,產酶的效率較高[11-13],明顯高于固態(tài)發(fā)酵[14-16]。因此,霉菌生產蛋白酶主要采用液態(tài)深層發(fā)酵的方法[17-18]。
香菇(Lentinula edodes)既富含蛋白質、碳水化合物、脂肪酸、維生素、膳食纖維以及礦物質等營養(yǎng)成分又含有多糖等多種活性成分,屬于食藥兩用菌[19-21]。目前,我國由香菇資源開發(fā)的產品還不是很多,其中大部分被作為食材,在歐洲地區(qū)及日本等發(fā)達國家,香菇除作食材外,主要用于肽類藥物以及功能食品和食品添加劑[22]。香菇殘次品和加工中的下腳料作為發(fā)酵原料制作酒精[23]、葡萄酒[24]、飲料[25-26]和調味品[27]等,但是,其利用率還不高,產品的種類偏少且附加值高的產品不多[28]。對香菇殘次品進行液態(tài)發(fā)酵,提高蛋白酶酶活以提高其利用率[29-30],但蛋白酶活受菌種以及發(fā)酵條件的影響[30-32]。
本研究以香菇殘次品及其加工中的下腳料為主要原料,以米曲霉(Aspergillus oryzae)為菌種,采用液態(tài)發(fā)酵,以蛋白酶活為響應值,通過單因素試驗及響應面試驗優(yōu)化米曲霉產蛋白酶的發(fā)酵條件,以期利用香菇殘次品生產蛋白酶提供一定的理論依據(jù)。
1.1.1 材料與菌株
香菇殘次品及其加工中的下腳料:荊州市欣愷生物科技有限公司;米曲霉(Aspergillus oryzae):長江大學生命科學學院保藏。
1.1.2 試劑
葡萄糖、蔗糖、硝酸鉀、硫酸銨、氯化鈉、硫酸鎂、磷酸氫二鉀、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、鹽酸、干酪素、氫氧化鈉、茚三酮、醋酸、醋酸鈉、三氯乙酸(均為分析純):國藥集團化學試劑有限公司;L-酪氨酸、L-丙氨酸(純度均為99%):上海麥克林生化科技有限公司。
1.1.3 培養(yǎng)基
酪蛋白培養(yǎng)基[33]:干酪素4 g/L,MgSO4·7H2O 0.5 g/L,KH2PO40.3 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.001 g/L,NaCl 1 g,ZnCl20.015 g/L,CaCl2·2H2O 0.005 g/L,瓊脂20 g,蒸餾水溶解定容1 000 mL,pH 6.5~7.0。121 ℃滅菌25 min。
馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potatodextroseagar,PDA)培養(yǎng)基[34]:馬鈴薯200 g/L,葡萄糖20 g/L,瓊脂20 g/L,蒸餾水1 000 mL。121 ℃滅菌25 min。
香菇液體培養(yǎng)基:將香菇殘次品加入6~12倍的蒸餾水,用高速勻漿機打成漿。121 ℃滅菌25 min。
DL-5-C高速冷凍離心機:上海予皓科學儀器有限公司;ET-2010KA立式雙門回旋搖床:金壇市億通電子有限公司;UV-1800紫外分光光度計:日本島津(SHIMADIU)公司;HH-4恒溫水浴鍋:上海藍凱儀器儀表有限公司;BS-IE電熱恒溫振蕩培養(yǎng)箱:上海精宏實驗設備有限公司;HVE-50立體式高壓滅菌鍋:上海三申醫(yī)療器械有限公司;SPX-250B-Z生化恒溫培養(yǎng)箱:上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;FSH-2高速勻漿機:常州億通分析儀器制造有限公司。
1.3.1 菌種活化
將米曲霉接種到酪蛋白培養(yǎng)基中,30 ℃恒溫靜置培養(yǎng)72 h,觀察透明圈直徑大小,挑出直徑較大的菌落,接種到PDA斜面上,30 ℃恒溫靜置培養(yǎng)72 h。轉接3次,得到蛋白酶活力較高的菌株,4 ℃條件保藏,備用。
1.3.2 孢子懸液的制備
吸取20 mL無菌水加入到米曲霉斜面試管上,用接種環(huán)將試管斜面上的孢子輕輕刮下,倒入帶有4層擦鏡紙的滅菌漏斗中過濾,然后將過濾的米曲霉菌液倒入盛有小玻璃珠50 mL的滅菌三角瓶中,重復3次,于30 ℃,150 r/min條件下振蕩15 min,將孢子充分打散,得到米曲霉單孢子懸液。
1.3.3 米曲霉產蛋白酶發(fā)酵條件優(yōu)化
單因素試驗:將單孢子懸液按1%(V/V)接種于發(fā)酵培養(yǎng)基,30 ℃恒溫發(fā)酵,考察發(fā)酵時間(1 d、2 d、3 d、4 d、5 d)、料液比(1∶6、1∶8、1∶10、1∶12(g∶mL))、初始pH值(5.5、6.5、7.5、8.5、9.5)、轉速(135 r/min、155 r/min、175 r/min、195 r/min、215 r/min)對蛋白酶活力的影響。
響應面試驗:在單因素試驗的基礎上,固定發(fā)酵時間3 d,以米曲霉蛋白酶活力(Y)為響應值,選取對結果影響較大的初始pH值(A)、料液比(B)和轉速(C)作為影響因素,進行3因素3水平的響應面試驗,因素與水平見表1。
表1 發(fā)酵條件優(yōu)化Box-Behnken試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken experiments for fermentation conditions optimization
1.3.4 分析檢測
蛋白酶活力的測定采用商業(yè)行業(yè)標準SB/T 10317—1999《蛋白酶活力測定法》中的福林法[36];氨基酸含量測定采用茚三酮比色法[37]。蛋白酶活力定義:即每1 mL液體酶在40 ℃下,1 min水解酪蛋白產生1 μg酪氨酸所需酶量,定義為1個蛋白酶活力單位(U/mL)。
1.3.5 統(tǒng)計分析
采用Design-Expert 8.0.6.1軟件進行Plackett-Burman試驗和Box-Behnken響應面優(yōu)化試驗設計,運用該軟件的數(shù)據(jù)分析功能進行數(shù)據(jù)分析,建立回歸模型,并對建立的模型進行驗證,利用Origin 8.5和SPSS 20.0軟件對數(shù)據(jù)進行分析。
2.1.1 發(fā)酵時間對米曲霉產蛋白酶活力的影響
發(fā)酵時間對蛋白酶活力的影響見圖1。
圖1 發(fā)酵時間對蛋白酶活力的影響Fig.1 Effect of fermentation time on protease activity
由圖1可知,隨著發(fā)酵時間在1~3 d范圍內的延長,蛋白酶活力曲線呈上升趨勢;當發(fā)酵時間為3 d時,米曲霉蛋白酶活力最高,為541.9 U/mL;當發(fā)酵時間>3 d之后,蛋白酶活力有所下降。分析原因可能是,在發(fā)酵前期(發(fā)酵時間3 d前),隨發(fā)酵時間的延長,米曲霉處于生長旺盛期,產蛋白酶能力增強,因此米曲霉產蛋白酶活力提高。但發(fā)酵后期(發(fā)酵時間3 d后),米曲霉產生的蛋白酶用于降解香菇中蛋白質而消耗蛋白酶,因此發(fā)酵后期蛋白酶活力降低。因此,選擇最佳發(fā)酵時間為3 d。
2.1.2 料液比對蛋白酶活力的影響
料液比對蛋白酶活力的影響見圖2。
圖2 料液比對蛋白酶活力的影響Fig.2 Effect of solid and liquid ratio on protease activity
由圖2可知,料液比為1∶6、1∶8、1∶10(g∶mL)時,隨著液體占比的增加,發(fā)酵液中蛋白酶活力呈現(xiàn)增加的趨勢;料液比為1∶10(g∶mL)時,培養(yǎng)基質中蛋白酶活力值最高;當液體占比繼續(xù)增加,蛋白酶活力下降。水分是微生物生長和代謝很重要的影響因素,水分過低時,不能把香菇中的營養(yǎng)成分充分溶解,不利于米曲霉的生長和代謝產酶。水分過高時,溶液形成水層,不利于氧的傳遞,影響米曲霉的生長代謝,導致蛋白酶產量較少[38]。因此,選擇最佳料液比為1∶10(g∶mL)。
2.1.3 初始pH值對蛋白酶活力的影響
初始pH值對蛋白酶活力的影響見圖3。
圖3 初始pH值對蛋白酶活力的影響Fig.3 Effect of initial pH value on protease activity
由圖3可知,在不同的初始pH值下,米曲霉產蛋白酶的活力不同。隨著培養(yǎng)基初始pH值在5.0~6.5范圍內的增加,蛋白酶活力增加;初始pH值為6.5時蛋白酶活力最高,初始pH值為6.5~11.0時,隨著初始pH值增加,蛋白酶活力逐漸降低。這說明米曲霉在偏堿性環(huán)境中對米曲霉產蛋白酶有一定的抑制作用[39]。因此,選擇最佳初始pH值為6.5。
2.1.4 轉速對蛋白酶活力的影響
轉速對蛋白酶活力的影響見圖4。
由圖4可知,隨著轉速在135~175 r/min范圍內的增加,蛋白酶活力呈快速增加的趨勢;當轉速為175 r/min時,蛋白酶活力值達到最大,為405.16 U/mL;當轉速為175~215 r/min時,蛋白酶活力下降??赡苁且驗檗D速在135~175 r/min,發(fā)酵液溶氧量增加,有利于米曲霉的生長[40],導致米曲霉產蛋白酶酶活增加;而培養(yǎng)轉速過高,發(fā)酵液流動剪切力不斷增強,導致菌絲體結構結實緊密,不利于米曲霉的生長和代謝[41],導致米曲霉產蛋白酶酶活力降低。因此,選擇最佳轉速175 r/min。
圖4 轉速對蛋白酶活力的影響Fig.4 Effect of rotating speed on protease activity
在單因素試驗基礎上,以初始pH值(A)、料液比(B)、轉速(C)為響應因子,以蛋白酶活(Y)為響應值進行評價,采用3因素3水平響應面試驗優(yōu)化米曲霉產蛋白酶發(fā)酵條件,Box-Behnken試驗設計及結果見表2,二次回歸模型方差分析見表3。
表2 發(fā)酵條件優(yōu)化Box-Behnken試驗設計與結果Table 2 Design and results of Box-Behnken experiments for fermentation conditions optimization
表3 回歸模型方差分析Table 3 Variance analysis of regression model
通過Design Expert 8.0.6軟件對表2中的數(shù)據(jù)進行二次多項回歸擬合,獲得蛋白酶酶活力與初始pH值、料液比和轉速的二次多項式回歸方程:
Y=1 183.03+5.31A+56.21B-14.14C-22.55AB+31.87AC-109.80BC-123.36A2-172.55B2-190.36C2
由表3可知,模型P<0.000 1,表明該模型高度顯著;失擬項P=0.454 6>0.05,表明失擬項不顯著,該模型的擬合度良好。除一次項A對米曲霉產蛋白酶活力的影響不顯著(P>0.05)外,一次項C和交互項AB對米曲霉產蛋白酶活力的影響顯著(P<0.05),一次項B、交互項AC、BC以及二次項A2、B2、C2對米曲霉產蛋白酶活力影響極顯著(P<0.01)?;貧w方程決定系數(shù)R2=0.965 6,調整決定系數(shù)=0.990 2,表明此回歸模型能夠解釋96.56%的響應變化。說明該模型擬合程度良好,試驗誤差小,可信度較高,可用此模型對米曲霉產蛋白酶活發(fā)酵條件進行預測。同時,確定影響米曲霉產蛋白酶活3因素順序為B>C>A,即料液比>轉速>初始pH值。
各因素交互作用對米曲霉產蛋白酶活影響的響應面及等高線見圖5。
圖5 各因素交互作用對米曲霉產蛋白酶酶活影響的響應面及等高線Fig.5 Response surface plots and contour lines of effects of interaction between each factor on activity of protease produced by Aspergillus oryzae
若響應面較陡峭,說明該因素對蛋白酶酶活的影響較大;若響應面相對平緩,說明該因素對蛋白酶酶活的影響較小。由圖5可知,料液比與初始pH值之間交互作用的響應面陡峭,對響應值影響顯著;轉速與初始pH值之間交互作用的響應面陡峭,對響應值影響極顯著;料液比與轉速之間交互作用的響應面最陡峭,對響應值影響極顯著。這與回歸模型方差分析結果一致。
采用Design Expert 8.0.6.1軟件對回歸方程進行求解,最終確定米曲霉產蛋白酶活的最優(yōu)發(fā)酵條件為初始pH值6.5,料液比1∶10(g∶mL),轉速175 r/min,該條件下蛋白酶酶活力預測值為1 183.04 U/mL。為了驗證模擬模型的準確性,采用優(yōu)化后的最佳發(fā)酵條件進行3次驗證試驗,檢測的蛋白酶活力的實際平均值為1 182.48 U/mL,與預測值相近,說明該工藝可行。
本研究以米曲霉(Aspergillus oryzae)為菌種,對香菇殘次品進行液態(tài)發(fā)酵,在單因素試驗基礎上,采用Box-Behnken試驗方法優(yōu)化米曲霉產蛋白酶活發(fā)酵條件。結果表明,米曲霉液態(tài)發(fā)酵香菇殘次品產蛋白酶活最優(yōu)條件為發(fā)酵時間3 d,發(fā)酵初始pH值6.5,料液比1∶10(g∶mL),轉速175 r/min。在此優(yōu)化條件下,蛋白酶活力實際值為1 182.48 U/mL。采用該方法優(yōu)化米曲霉產蛋白酶活的發(fā)酵條件,能夠提高其產蛋白酶的酶活力,為香菇殘次品的綜合利用提供了一定的理論依據(jù)。