王文霞,張慧敏,張慧君,宮春宇,李瑞琪,徐婷婷
(齊齊哈爾大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,黑龍江省果蔬雜糧飲品工程技術(shù)研究中心,黑龍江省普通高校農(nóng)產(chǎn)品加工重點實驗室,黑龍江 齊齊哈爾,161006)
玉米纖維是玉米干法和濕法碾磨后的殘渣。玉米纖維含有40%半纖維素、20%的纖維素、4%的酚酸和2%的蛋白質(zhì),其中半纖維素是其主要組分[1]。目前,我國玉米纖維主要用于作為低蛋白動物飼料,沒有對其進(jìn)一步加工利用,造成了資源的浪費。禾本科植物的半纖維素主要是阿拉伯糖木聚糖,玉米阿拉伯木聚糖(corn arabinoxylan,CAX)存在于谷類作物胚乳周圍的麩皮和糊粉層細(xì)胞壁以及胚乳細(xì)胞壁中[2]。阿拉伯木聚糖以(1→4)-β-D-吡喃木糖殘基聚合為線型主鏈,α-L-呋喃阿拉伯糖基(arabinoxylan,Ara)為側(cè)鏈[3],此外,還含有少量的半乳糖、葡萄糖醛酸和甘露糖[1]。同時,阿拉伯木聚糖含有一定量的阿魏酸基團(tuán),以酯鍵的形式連接于Ara側(cè)鏈的C(O)-5位上[4]。阿拉伯木聚糖作為一種高相對分子質(zhì)量的結(jié)構(gòu)性多糖,具有氧化交聯(lián)性質(zhì)[5]、乳化及乳化穩(wěn)定性[6]、成膜性等性質(zhì)[7],具有廣泛的應(yīng)用前景。殼聚糖(chitosan,CH)是自然界中一種大量存在的聚陽離子多糖[8]。由于CH具有良好的成膜性、抑菌作用,以及無毒、生物相容性和可生物降解等優(yōu)點,可廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、化妝品、農(nóng)業(yè)、環(huán)保和紡織等領(lǐng)域[9]。
水凝膠是由三維網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的親水聚合物構(gòu)成。水凝膠根據(jù)交聯(lián)方式可分為化學(xué)交聯(lián)水凝膠和物理交聯(lián)水凝膠兩大類?;瘜W(xué)交聯(lián)水凝膠因制備過程中需要加入引發(fā)劑、交聯(lián)劑等,而大多試劑具有一定的細(xì)胞毒性,不適于在生物細(xì)胞或組織中應(yīng)用。物理交聯(lián)水凝膠主要由氫鍵、靜電作用、配位鍵、疏水結(jié)合、范德華力、物理纏繞等分子間可逆的非共價作用力形成交聯(lián),通常形成微晶、螺旋、離子配位、膠束等交聯(lián)區(qū)域,可避免由于化學(xué)試劑使用帶來的不利影響[10]。用于制備水凝膠的天然生物高分子包括明膠、透明質(zhì)酸、海藻酸鹽、半纖維素、CH、黃原膠等[11]?;谔烊桓叻肿佣嗵撬z以其良好的吸水能力、刺激響應(yīng)能力和良好的生物相容性、天然可降解性以及豐富的來源等特點,在生物和生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域應(yīng)用引起了廣泛的關(guān)注,拓寬了多糖的應(yīng)用領(lǐng)域[12]。
CH分子中含有大量游離的氨基、羥基,可通過氫鍵或靜電力與海藻酸鈉、果膠、纖維素,以及半纖維素的相互作用形成具有一定機械強度、彈性和通透性能的聚電解質(zhì)復(fù)合材料。半纖維素和CH能通過非共價作用力合成水凝膠。GABRIELII等[13]首先以樺木得到具有葡萄糖醛酸功能的木聚糖為原料,在酸性條件下與CH共溶,形成水凝膠。紅外光譜法研究表明,CH的氨基與木聚糖的葡萄糖醛酸官能團(tuán)的絡(luò)合作用是形成網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的主要原因。研究發(fā)現(xiàn)水凝膠溶脹行為對pH值和鹽溶液的刺激的反應(yīng)是可逆的。之后GABRIELII等[14]對楊木木聚糖與CH共混成凝膠膜進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn)當(dāng)CH含量達(dá)到5%~20%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))時,即得到完整的薄膜,且薄膜在水中浸泡后可得到水凝膠。將楊木木聚糖與CH混合,通過木聚糖的酸性基團(tuán)和CH的氨基之間的靜電,以及木聚糖間氫鍵相互結(jié)合作用交聯(lián)形成微晶,CH與之形成共結(jié)晶網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),制得半纖維素與CH復(fù)合水凝膠。而谷物阿拉伯木聚糖與CH物理交聯(lián)制備的水凝膠方面的研究卻未見報道。
本文以脫淀粉玉米纖維為原料,采用堿性過氧化氫提取工藝制備CAX,對CAX的組成、酸性基團(tuán)的數(shù)量和摩爾質(zhì)量進(jìn)行了表征。將CAX和CH在酸性條件下溶解,制成薄膜;然后將薄膜在水中浸泡、溶脹,得到水凝膠;研究了CAX與CH配比(CAX/CH)、不同pH下的成膜性和溶脹性能及凝膠的形成機理。
玉米纖維,黑龍江省鏡泊湖農(nóng)業(yè)開發(fā)股份有限公司;耐高溫α-淀粉酶(酶活力50 000 U/g)、堿性蛋白酶(102 511 U/g),中國丹麥諾維信公司;CH(黏度<50 Pa·s),山東奧康生物科技有限公司;阿拉伯糖、木糖、葡萄糖、鼠李糖、半乳糖、甘露糖、葡萄糖醛酸、半乳糖醛酸,生工生物工程(上海)有限公司;葡聚糖標(biāo)樣,美國AMRESCO公司;乙腈、甲醇,均為色譜純,天津市科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。
DZF-6050型冷真空干燥箱,上海博訊實業(yè)有限公司;TDL-5-A型低速臺式離心機,上海安亭科學(xué)儀器廠;HGZF-101-2型電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司;ME1002E/02分析天平,梅特勒-托利多儀器;SHZ-DIII循環(huán)水式真空泵,鄭州瑞涵儀器有限公司;PB-10型pH計,北京賽多利斯科學(xué)儀器有限公司;FW100型高速萬能粉碎機,北京市光明醫(yī)療器械有限公司;RJX-3-9馬弗爐,天津?qū)嶒炿姞t廠;PRIMAIDE高效液相色譜儀,日本日立公司;Spectrum One傅里葉變換紅外光譜儀(Fourier transform infrared spectrometer,F(xiàn)TIR),美國PE公司;D8型X-射線衍射儀,德國BRUKER-AXS。
1.3.1 CAX的制備
采用堿性過氧化氫提取工藝和超濾相結(jié)合方法,從玉米纖維中提取分離得到CAX,在DONER等[15]方法的基礎(chǔ)上略有修正。
CAX制備流程:
玉米纖維→粉碎(過60目篩)→水煮脫淀粉→玉米纖維Ⅰ→酶法脫淀粉→自然干燥→玉米纖維Ⅱ→堿性過氧化氫提取→過濾(300目濾布)→濾液離心(300 r/min,15 min)→上清液→調(diào)pH至4.0→沉淀過夜→離心(3 000 r/min,15 min)→上清液超濾→濃縮液→醇沉→過濾(300目濾布)→析出物真空干燥→CAX制品
操作要點:
(1)水煮脫淀粉
將500 g玉米纖維加入3 500 mL水,煮沸30 min,趁熱過濾(300目濾布),用5 000 mL沸水洗滌,趁熱過濾,得到濾渣。重復(fù)上述操作,將得到濾渣,自然晾干得到玉米纖維Ⅰ。
(2)酶法脫淀粉
取200 g玉米纖維Ⅰ加入4 L水(料液比1∶20),然后調(diào)pH至6.0,沸水浴攪拌10 min,將其冷卻至95 ℃ 后加入耐高溫淀粉酶4%(質(zhì)量分?jǐn)?shù),對原料玉米麩皮),恒溫水浴92 ℃,攪拌3 h,過濾棄去濾液,將濾渣自然干燥。得到脫淀粉的玉米纖維Ⅱ。
(3)堿性過氧化氫提取
取200 g玉米纖維Ⅱ加入4 L純凈水,加入質(zhì)量分?jǐn)?shù)為30% H2O2溶液調(diào)提取液的H2O2濃度達(dá)到10 g/L,邊加邊快速攪拌。用NaOH溶液將提取液的pH值調(diào)整為11.5,料液比1∶25(g∶mL),在60 ℃恒溫水浴中攪拌,并維持2 h。
(4)上清液超濾
采用6 000 Da中空纖維膜超濾上清液,使之脫鹽、濃縮。工作壓力0.10 MPa,濃縮倍數(shù)5倍。濃縮液用蒸餾水洗滌超濾2次。
(5)濃縮液醇沉、過濾
按V(濃縮液)∶V(無水乙醇)=1∶4加入無水乙醇,攪拌,室溫過夜,過濾。
(6)析出物真空干燥
析出物在40 ℃下進(jìn)行真空干燥。阿拉伯木聚糖得率計算如公式(1)所示:
(1)
1.3.2 CAX成分分析
采用硫酸-苯酚方法[16]測定總糖含量。采用杜馬斯燃燒法[17]測定蛋白質(zhì)含量。采用熱失重分析方法[18]測定灰分含量。采用索氏提取方法[19]測定脂肪含量。采用高效液相色譜法方法[20]測定阿魏酸含量。采用高效液相色譜法[21]測定CAX單糖組成。
采用高效凝膠滲透色譜法方法測定CAX分子質(zhì)量分布。以Dextran T-2 000、Dextran T-1 000、Dextran T-200、Dextran T-100、Dextran T-50和Dextran T-20作為分子質(zhì)量測量的標(biāo)準(zhǔn)品。Ultrahydrogel TM Linear,300 mm×7.8 mm id凝膠柱;示差折光檢測器。色譜條件為:樣品濃度為2 mg/mL,進(jìn)樣量20 μL,0.02 mol/L pH 7.4磷酸鹽緩沖液為洗脫液,洗脫液的流速為1.0 mL/min,柱溫:40 ℃;檢測器溫度:40 ℃。以保留時間為橫坐標(biāo),lgMw為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,建立線性方程,y=-0.763 4x+17.779,R2=0.983 4。樣品分子質(zhì)量的測定:配制2 mg/mL CAX溶液,過0.45 μm濾膜,進(jìn)樣。根據(jù)圖譜中所得保留時間,通過上述回歸方程計算CAX分子質(zhì)量。
1.3.3 CAX基復(fù)合膜的制備
以CAX為原料,加入不同數(shù)量的CH,經(jīng)干法混合,攪拌至鹽酸酸化水中(pH 1.3~1.95)制成溶液,攪拌均勻。CAX/CH為100/0~0/100,干物質(zhì)含量為1.5%按重量計。然后加熱至95 ℃,維持20 min。溶液被冷卻到室溫,然后倒在聚苯乙烯盤上。40 ℃、12 h鼓風(fēng)干燥,得到的薄膜厚度一般為50 μm。
1.3.4 CAX/CH對復(fù)合膜特性的影響
按CAX/CH為100/0、95/5、90/10、85/15、80/20、75/25、70/30、60/40、50/50、40/60、0/100,干法混合CAX和CH;然后,分別加入到pH 1.30~1.95酸化水中,攪拌均勻,制成溶液。然后加熱至95 ℃,維持20 min。溶液被冷卻到室溫,然后倒在聚苯乙烯盤上。置于40 ℃、12 h鼓風(fēng)干燥箱烘干成薄膜,監(jiān)測成膜性。將薄膜在水中浸泡、溶脹,得到水凝膠,并測定膜的溶脹率。
1.3.5 溶劑酸化水pH對復(fù)合膜特性的影響
按CAX/CH為70/30,干法混合CAX和CH;然后,分別加入到pH 1.30、1.40、1.50、1.60、1.65、1.70、1.75、1.80、1.85、1.95的酸化水中,攪拌均勻,制成溶液。以下同1.3.4。
1.3.6 溶脹性能測試
小片(約1.5 cm×1.5 cm)的薄膜被放置在一個已知重量的玻璃表面皿里。加入25 mL去離子水,靜置30 min,然后小心取出,將樣品留在玻璃表面皿中。玻璃表面皿用濾紙擦干并稱重。溶脹率也可以采用不同pH值的溶液進(jìn)行測量。溶脹率計算如公式(2)所示:
(2)
1.3.7 復(fù)合膜的表征
1.3.7.1 FTIR分析
取干燥膜,用刀片刮取膜表面得到粉末,將粉末與KBr混合,壓片,將其置于樣品架上在500~4 000 cm-1進(jìn)行FTIR掃描。
1.3.7.2 X-射線衍射(X-ray diffraction,XRD)光譜分析
利用X-射線衍射儀測定復(fù)合膜的結(jié)晶特性,測試衍射角2θ范圍為5°~50°,管壓40 kV,管流40 mA。
1.3.7.3 掃描電鏡(scanning electron microscope,SEM)分析
將CAX/CH復(fù)合膜在水中浸泡、溶脹,真空冷凍干燥。取2 mm×2 mm樣品固定,噴金,SEM下觀察樣品截面形態(tài)并拍照,加速電壓10 kV。
1.3.8 統(tǒng)計分析
所有實驗均重復(fù)3次,實驗數(shù)據(jù)采用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,用SPSS v17.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行方差分析,用鄧肯法進(jìn)行均值比較,以P<0.05為顯著性檢驗標(biāo)準(zhǔn)。
堿性過氧化法提取,CAX收率為35.80%,總糖含量為90.44%,蛋白質(zhì)含量為2.09%,灰分含量為2.13%,脂肪含量為0.46%,摩爾質(zhì)量為790 358 Da。CAX收率略低于文獻(xiàn)報道[22],這可能與玉米原料不同和前處理條件不同有關(guān)系。CAX中蛋白質(zhì)、灰分、脂肪含量較低,說明本研究所采用二次水煮與酶解的方法預(yù)處理玉米纖維,去除淀粉、脫脂肪、蛋白質(zhì)的效果顯著。CAX沒有檢出阿魏酸,這是因為堿可將結(jié)合于細(xì)胞壁上的阿魏酸游離出來[23]。CAX單糖組成:木糖44.69%,阿拉伯糖40.94%,半乳糖6.29%,酸性糖4.47%,鼠李糖0.80%,葡萄糖1.59%,甘露糖1.23%。說明玉米纖維半纖維素是CAX,主要含有木糖、阿拉伯糖,還含有少量的半乳糖、葡萄糖醛酸和甘露糖,與文獻(xiàn)報道[1-2,22]基本一致。
2.2.1 CAX/CH對復(fù)合膜成膜性的影響
CAX/CH對成膜性的影響的實驗結(jié)果如表1所示。CAX/CH對復(fù)合膜成膜性影響很大。CAX/CH為100/0時,可以得到表面光滑的碎片;在95/5時,可以得到表面光滑的不完整的復(fù)合薄膜;CAX/CH為90/10~0/100時均可以得到連續(xù)的自支撐薄膜,而CAX/CH為90/10~85/15時制備的復(fù)合薄膜完整、表面光滑、柔韌性差、易碎。CAX/CH為80/20~70/30時制備的復(fù)合薄膜完整、表面光滑、柔韌性好、不碎。CAX/CH為60/40~0/100時制備的復(fù)合薄膜完整、表面多顆粒、柔韌性好、不碎。CAX/CH為95/5~85/15時制備的薄膜柔韌性性差的原因可能是CAX低摩爾質(zhì)量的緣故。
表1 CAX/CH對成膜性的影響Table 1 Effects of CAX/CH on film formation
2.2.2 CAX/CH對復(fù)合膜溶脹率的影響
復(fù)合膜溶脹性能測定發(fā)現(xiàn),CAX/CH=100/0的純CAX碎片不吸收水分;CAX/CH在95/5~70/30時,復(fù)合膜吸收水分,溶脹形成水凝膠;CAX/CH在40/60及以上時,復(fù)合膜吸收水分,溶脹現(xiàn)象呈各向異性,測定溶脹率時觸碰易破碎,且發(fā)生膜基質(zhì)的散落,沒有形成穩(wěn)定的凝膠。由于膜中CH是處于離子形式,純CH薄膜易在水中溶解,因此,CH含量30%及以上的薄膜溶脹發(fā)生基質(zhì)散落是因為CH部分溶解所致。
對吸收水分,溶脹形成水凝膠的膜進(jìn)行CAX/CH對復(fù)合膜溶脹率影響的實驗結(jié)果如圖1所示。CAX/CH在95/5~70/30時的復(fù)合膜,吸收水分溶脹形成水凝膠,溶脹率由8.10升高至180.10。CAX/CH為95/5和90/10的復(fù)合膜,溶脹率為8.10和8.60,CAX/CH對膜的溶脹率沒有顯著影響;而復(fù)合膜的CAX/CH在90/10~70/30時,溶脹率由8.60逐漸升高至180.10,CAX/CH對膜的溶脹率有顯著影響。
圖1 CAX/CH對復(fù)合膜溶脹率的影響Fig.1 Effect of arabinoxylan/chitosan on swelling ratio of composite film注:圖中不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)(下同)
水凝膠暴露在外部變化刺激環(huán)境中,如堿-水溶液、不同pH值溶液。CAX/CH=70/30的復(fù)合膜在水和0.1 mol/L NaOH溶液中循環(huán)溶脹的效果如圖2所示。當(dāng)溶脹介質(zhì)為NaOH時,復(fù)合膜的溶脹率較低,而溶脹介質(zhì)更換為水時,水凝膠的溶脹率明顯增大。水凝膠膜對環(huán)境循環(huán)刺激的變化具有可逆的反應(yīng)。值得注意的是,水凝膠經(jīng)過0.1 mol/L NaOH溶液浸泡后,再進(jìn)行水中浸泡,其溶脹率明顯低于初次水浸泡的溶脹率。
圖2 水和0.1 mol/L NaOH溶液循環(huán)溶脹對復(fù)合膜溶脹行為的影響Fig.2 Effect of cyclic water and 0.1 mol/L sodium hydroxide solution on swelling behavior of composite film
CAX/CH=70/30復(fù)合膜在pH 4~10的緩沖液的溶脹情況如圖3所示。復(fù)合膜在pH 4、5、6、7的緩沖液的溶脹程度均明顯高于pH 8、9、10的緩沖液。在高pH值下,溶脹率迅速減少。在中性pH值緩沖液中,復(fù)合膜的溶脹率為8.10,明顯低于去離子水中該復(fù)合膜的溶脹率。這是因為凝膠中含有固定在網(wǎng)絡(luò)聚合物上的可電離基團(tuán),在高pH值范圍內(nèi)形成羧酸鹽離子的羧基,以及在低pH值范圍內(nèi)形成銨離子的氨基。這些離子被限制在凝膠中,使含有可移動離子的凝膠滲透壓高于周圍溶液的滲透壓。凝膠高滲透壓使較小的離子和水在凝膠和溶液之間自由流動,使凝膠溶脹,直到受到網(wǎng)絡(luò)黏結(jié)力的限制。
圖3 復(fù)合膜在不同pH的緩沖溶液中的溶脹情況Fig.3 Swelling of composite films in different pH buffer solutions
2.3.1 溶劑酸化水pH對復(fù)合膜成膜性的影響
按照CAX/CH=70/30,干法混合CAX和CH,分別加入到pH 1.30、1.40、1.50、1.60、1.65、1.70、1.75、1.80、1.85、1.90、1.95酸化水中,復(fù)合膜成膜結(jié)果如表2所示。酸化pH對復(fù)合膜成膜性、溶脹率影響很大。溶劑酸化水pH在1.30~1.95 時均可以得到連續(xù)的自支撐薄膜,而加入pH 1.30、1.40、1.50酸化水制備的復(fù)合薄膜表面光滑,但柔韌性較差、易碎;加入到pH 1.60、1.65、1.70酸化水制備的復(fù)合薄膜表面光滑、柔韌性好、不碎。加入到酸化水pH 1.75、1.80、1.85制備的薄膜表面有微小顆粒、柔韌性好、不碎。加入到酸化水pH 1.90、1.95制備的薄膜表面有顆粒、柔韌性好、不碎。
表2 酸化水pH對成膜性的影響Table 2 Effects of acidified water pH on film formation
2.3.2 溶劑酸化水pH對復(fù)合膜溶脹率的影響
不同pH 1.30、1.40、1.50、1.60、1.65、1.70、1.75、1.80、1.85、1.90、1.95酸化水制得CAX/CH=70/30薄膜的溶脹率測定結(jié)果如圖4所示。酸化水pH對復(fù)合膜的溶脹率有顯著影響。采用pH 1.30、1.40、1.50、1.60的酸化水制備CAX/CH=70/30復(fù)合膜,溶于水后不能溶脹形成凝膠。而當(dāng)酸化水pH為1.65~1.95時,CAX/CH=70/30復(fù)合膜溶于水后能溶脹,形成凝膠。酸化水pH 1.65、1.70制備復(fù)合膜溶脹率明顯高于其他酸化水pH制備復(fù)合膜的溶脹率,酸化水pH 1.70制備復(fù)合膜溶脹率最高,為180.10;隨著酸化水pH由1.75升高到1.95,復(fù)合膜溶脹率呈下降趨勢,當(dāng)酸化水pH 1.95時復(fù)合膜溶脹率降為94.60。這是由于在溶劑酸化水pH值較低時,復(fù)合物上氨基部分質(zhì)子化,水分子除與CH上親水基團(tuán)結(jié)合,還可與網(wǎng)絡(luò)上的離子基團(tuán)強烈締合形成水合層[24],故凝膠中水含量較大,復(fù)合物結(jié)構(gòu)溶脹,微觀平均孔徑較大。隨著緩沖溶液pH值的增大,復(fù)合物表面弱堿性的氨基質(zhì)子化趨勢減弱,導(dǎo)致凝膠網(wǎng)絡(luò)構(gòu)造內(nèi)水量的減少,結(jié)構(gòu)收縮,因此復(fù)合物平衡溶脹度呈下降趨勢;當(dāng)酸化水中pH值達(dá)到1.95左右,出現(xiàn)了凝膠網(wǎng)絡(luò)的快速收縮,導(dǎo)致復(fù)合物平衡溶脹度明顯下降趨勢。
圖4 酸化水pH對復(fù)合膜溶脹率的影響Fig.4 Effect of acidified water pH on swelling ratio of composite film
2.3.3 CAX和CH復(fù)合膜的FTIR分析
a-CH;b-CAX;c-CAX和CH物理混合;d-復(fù)合膜(CAX/CH=70/30)圖5 FTIR譜圖Fig.5 FTIR spectra
2.3.4 CAX和CH復(fù)合膜的XRD光譜分析
CH、純CAX膜碎片和CAX/CH=70/30(酸化水pH 1.30、1.60、1.65、1.95)復(fù)合膜的XRD譜圖如圖6所示。由圖6可知,純CH粉末在2θ=10.66°和20.56°出現(xiàn)了2個衍射峰,其中20.56°為一個較大且尖銳的衍射峰,與文獻(xiàn)資料[28]較一致。CAX膜碎片在2θ=17.12°、22.9°出現(xiàn)了2個衍射峰。如果CAX、CH之間沒有相互作用,或相互作用很微弱,那么各組分在復(fù)合膜中會出現(xiàn)各自的結(jié)晶區(qū),共混膜的衍射譜圖會按各組分衍射峰強度簡單疊加。而相容的共聚物體系,各組分間有較強的相互作用,衍射圖譜則表現(xiàn)為某些聚合物組分特征衍射峰的消失,并使結(jié)晶發(fā)生變化。
a-CH粉末;b-純CAX膜碎片;c-CAX/CH=70/30復(fù)合膜(酸化水pH 1.30);d-CAX/CH=70/30復(fù)合膜(酸化水pH 1.60);e-CAX/CH=70/30復(fù)合膜(酸化水pH 1.65);f-CAX/CH=70/30復(fù)合膜(酸化水pH 1.95)圖6 不同pH酸化水制備CAX/CH=70/30復(fù)合膜的XRD譜圖Fig.6 XRD spectra of CAX/CH=70/30 composite film prepared from different acidified water
2.3.5 CAX和CH復(fù)合膜的SEM分析
將CAX/CH=80/20和CAX/CH=40/60的CAX/CH復(fù)合膜在水中浸泡、溶脹,真空冷凍干燥,樣品分別切片,噴金后進(jìn)行電鏡掃描,得到SEM圖如圖7所示。CAX/CH=80/20復(fù)合膜溶脹凍干樣品斷面呈現(xiàn)出類似蜂窩狀多孔的結(jié)構(gòu)。CAX/CH=40/60復(fù)合膜溶脹凍干樣品斷面呈現(xiàn)出較為疏松的大孔性結(jié)構(gòu),其孔徑大于CAX/CH=80/20復(fù)合膜溶脹凍干樣品。SEM照片證實了CAX/CH=80/20復(fù)合膜溶脹后具有穩(wěn)定的三維網(wǎng)狀凝膠結(jié)構(gòu)的存在,而CAX/CH=40/60 復(fù)合膜溶脹后不具有結(jié)實的三維網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),不能形成穩(wěn)定的凝膠。這一結(jié)果與CAX/CH對復(fù)合膜溶脹性能影響的實驗結(jié)論一致。
a-CAX和CH=80/20復(fù)合膜;b-CAX/CH=40/60復(fù)合膜(×150)圖7 CAX和CH復(fù)合膜溶脹凍干結(jié)構(gòu)斷面SEM圖Fig.7 SEM picture of cross-section of structure formed upon freeze drying of the hydrogel after swelling of the composite film
以玉米纖維為原料,采用堿提取和超濾相結(jié)合的方法,提取出富含木糖和阿拉伯糖,還含有少量葡萄糖醛酸的CAX,分子質(zhì)量為790 358 Da,收率為35.80%。CAX溶液不具良好的成膜性能;CAX與CH共混時,在酸性條件下,CAX/CH為90/10~0/100時均可以得到連續(xù)的自支撐薄膜。CAX/CH為95/5~70/30時的復(fù)合膜浸入水中,溶脹形成水凝膠。水凝膠在堿液和水及不同pH值溶液的溶脹行為,表現(xiàn)為對各種刺激的反應(yīng)是可逆的。酸化水pH對復(fù)合膜溶脹率有顯著影響。酸化水pH>1.65制備的CAX/CH=70/30復(fù)合膜能溶脹形成凝膠,酸化水pH 1.70制備復(fù)合膜溶脹率最高。
采用FTIR法研究了凝膠的形成機理表明,CAX的葡萄糖醛酸羧基與CH的氨基之間的靜電相互作用有關(guān)。XRD對薄膜形貌分析發(fā)現(xiàn),純CAX薄膜呈晶體狀;酸化水pH影響CAX/CH=70/30復(fù)合膜中原有的晶體結(jié)構(gòu)。當(dāng)酸化水pH≥1.65時,CAX/CH=70/30復(fù)合膜中CAX結(jié)晶消失,復(fù)合膜具有凝膠性;當(dāng)pH<1.65,復(fù)合膜中CAX結(jié)晶結(jié)構(gòu)存在,復(fù)合膜不具有凝膠性。這進(jìn)一步證明CAX與CH之間的靜電相互作用,使原有的結(jié)晶消失,形成具有凝膠性且結(jié)構(gòu)較復(fù)雜、均勻的復(fù)合物。用SEM掃描成像顯示復(fù)合膜溶脹后的水凝膠具有類似蜂窩狀多孔的結(jié)構(gòu)。