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    裝載α-生育酚的乳木果油固體脂質(zhì)納米顆粒的制備與表征

    2021-09-28 03:27:04慕鴻雁孫慶杰
    食品科學(xué) 2021年18期
    關(guān)鍵詞:果油硬脂酸乳液

    楊 振,李 曼,慕鴻雁,熊 柳,孫慶杰*

    (青島農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東 青島 266000)

    在過(guò)去的20 a不同類型的脂質(zhì)納米顆粒逐漸成為研究熱點(diǎn),包括固體脂質(zhì)納米顆粒(solid lipid nanoparticle,SLN)、納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體、脂質(zhì)藥物結(jié)合物、脂質(zhì)納米膠囊[1]。重要的是,SLN已被引入脂溶性活性物質(zhì)的載體,并發(fā)展作為乳液、脂質(zhì)體和聚合物納米顆粒的替代載體[2]。SLN的粒徑范圍通常為50~1 000 nm。SLN是由乳化劑穩(wěn)定的固體脂質(zhì)組成的納米顆粒[3]。與其他的載體相比,SLN展示了靶向藥物遞送[4]、藥物的控釋和緩釋[5]、增強(qiáng)藥物的穩(wěn)定性[6]和改善藥物溶解度的潛力[7]。與以前的油基乳液相比,SLN的脂質(zhì)狀態(tài)在室溫條件下呈現(xiàn)固態(tài)[8],SLN的脂質(zhì)成分可以是高純化的脂肪酸、甘油三酸酯或脂肪酸和甘油三酸酯的混合物[9]。前期研究表明,SLN通常用于包埋生物活性物質(zhì)[10]。在SLN中生物活性物質(zhì)的包封有利于保護(hù)生物活性物質(zhì)免受由外部因素(如熱、酸和氧)引起的降解損失[11]。此外,SLN的制備是基于通過(guò)高剪切均質(zhì)或超聲處理得到的固化納米乳液技術(shù),因此,通常認(rèn)為SLN安全[12]。而且,SLN比脂質(zhì)體具有更高的穩(wěn)定性,并且能夠與親脂性的藥物相結(jié)合。另外,SLN的制備能夠進(jìn)行大規(guī)模生產(chǎn)[13]。

    目前制備SLN的方法較多,如溶劑乳化或蒸發(fā)、超聲或高速均質(zhì)以及乳液的超臨界萃取,其中最重要的是高速均質(zhì)化的制備方法。用于制備SLN的脂質(zhì)包括蠟、類固醇、甘油單酸酯、甘油二酸酯、甘油三酸酯和脂肪酸。Hashem等[14]使用硬脂酸和甘油單硬脂酸酯復(fù)合作為脂質(zhì)基質(zhì)成功制備用于裝載脂溶性藥物的SLN。Botto等[15]利用雙硬脂酸甘油酯(Precirol ATO 5)作為脂質(zhì)基質(zhì)制備了用作基因治療的非病毒載體的SLN。Baek等[16]使用硬脂酸制備了用于裝載漢黃芩素的SLN。而且,研究報(bào)道了2 種或多種不同種類的脂質(zhì)組分已用于制備SLN。Dantas等[17]利用硬脂酸與蠟質(zhì)作為脂質(zhì)成分制備了SLN。另外,Xie Shuyu等[18]利用3 種脂肪酸(棕櫚酸、十四酸和硬脂酸)作為一種脂質(zhì)基質(zhì)成功制備了用于包埋活性物質(zhì)的SLN??傊?,當(dāng)前大多數(shù)研究通過(guò)使用一種或多種脂質(zhì)成分制備SLN。然而,這些脂質(zhì)通常用于非食品領(lǐng)域中,并且具備不可食用的缺點(diǎn)。植物油脂由于其固有的生物降解性和低毒性通常認(rèn)為是綠色安全的。但是植物油脂在室溫下呈液態(tài),因此很難用于制備SLN。鑒于先前研究中制備的SLN并非食品級(jí),所以利用植物油制備SLN在食品領(lǐng)域非常重要。

    從酪酯樹(shù)的種子中提取的乳木果油被廣泛用于西非和中非的食品、化妝品以及制藥業(yè)中[19]。乳木果油是純天然的綠色植物脂肪固體資源,由于乳木果油組分中存在酚類化合物,使其具有促進(jìn)表皮細(xì)胞再生、抗氧化和抗炎癥的功效[20-21]。由于乳木果油在室溫條件下表現(xiàn)出固態(tài)相性質(zhì),所以在本研究中使用乳木果油作為固體脂質(zhì)基質(zhì)原料開(kāi)發(fā)食品級(jí)SLN。

    本研究以乳木果油為原料,通過(guò)采用高速剪切均質(zhì)的方法制備不同油水比例的SLN。本實(shí)驗(yàn)中該制備方法的優(yōu)點(diǎn)是過(guò)程簡(jiǎn)單、制備時(shí)間短(均質(zhì)時(shí)間)以及基于較少的時(shí)間和材料具備大規(guī)模生產(chǎn)制備的潛力。該方法不同于在其他研究中報(bào)道的復(fù)雜制備方法[22-23]。在許多研究中SLN的制備是通過(guò)熱剪切均質(zhì)技術(shù)結(jié)合超聲處理方法,通常需要較長(zhǎng)的時(shí)間,包括均質(zhì)時(shí)間、超聲時(shí)間和緩慢冷卻時(shí)間。這些新開(kāi)發(fā)的食品級(jí)SLN將在食品、制藥和生物醫(yī)學(xué)行業(yè)中找到潛在的應(yīng)用。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    乳木果油 上海千峰化工有限公司;α-生育酚上海賢鼎生物科技有限公司;吐溫20、吐溫80 德國(guó)默克試劑公司;十三酸甲酯(純度>99%)和52混合標(biāo)準(zhǔn)品(C4~C22) 西格瑪奧德里奇化學(xué)公司;其余所用試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    8890GC氣相色譜儀 美國(guó)安捷倫科技公司;D8-ADVANCE X射線衍射儀 德國(guó)布魯克AXS有限公司;LXJ-IIB離心機(jī) 上海安亭儀器公司;DSC1差示掃描量熱儀 美國(guó)梅特勒-托利多公司;FJ-200高速均質(zhì)機(jī)紹興上虞艾科儀器設(shè)備有限公司;ZSP動(dòng)態(tài)光散射儀馬爾文儀器有限公司;7650透射電子顯微鏡 日本日立公司;TU-1810紫外分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 乳木果油的氣相色譜分析

    甲基化步驟:采用兩步甲基化方法,并進(jìn)行修改[24]。首先,將乳木果油加熱至40 ℃融化,之后將3 滴樣品加入15 mL試管中,然后在40 ℃恒溫條件下保持靜置。向試管中添加4 mL的異辛烷,將其充分搖勻,然后靜置2 min。之后將0.2 mL含有氫氧化鉀的甲醇溶液加入上述混合物中,混勻保持靜置2 min。從試管中取出1 mL上清液用于測(cè)定。

    氣相色譜條件:色譜柱:聚二氰丙基硅氧烷強(qiáng)極性固定相(100 m×0.25 mm,0.2 μm);程序升溫:初始溫度150 ℃,保持1 min,以1.5 ℃/min升溫至220 ℃,之后保持1 min;檢測(cè)器溫度250 ℃;以氫作為燃料氣體,流速100 mL/min;氮?dú)庥米鬏d氣,流速15 mL/min;尾氣流速15 mL/min。脂肪酸測(cè)定分析基于制造商提供的等效鏈長(zhǎng)值以及不同標(biāo)準(zhǔn)品所獲得保留時(shí)間。通過(guò)高純度標(biāo)準(zhǔn)品分離出不同脂肪酸。

    1.3.2 X射線衍射

    乳木果油的結(jié)晶結(jié)構(gòu)通過(guò)X射線衍射儀測(cè)定。掃描速率1°/min,掃描范圍0°~60°。乳木果油的相對(duì)結(jié)晶度是通過(guò)在衍射圖上繪制峰的基線并通過(guò)使用JADE 5.0計(jì)算面積確定。相對(duì)結(jié)晶度按式(1)計(jì)算[25]:

    式中:A1為X衍射曲線特征峰面積;A2為X衍射曲線上峰的總面積。

    1.3.3 SLN的制備

    乳木果油SLN通過(guò)高速熱均質(zhì)的方法制備[26]。乳木果油在高于其熔點(diǎn)溫度(36.20 ℃)的60 ℃條件下融化。在相同溫度下,吐溫80或吐溫20加入去離子水中溶解作為水相。然后,將水相加入脂相中,使用高速均質(zhì)機(jī)以10 000 r/min均質(zhì)3 min形成O/W的乳液。將獲得的SLN在4 ℃進(jìn)行固化貯存。另外,α-生育酚添加到脂質(zhì)相中,包埋α-生育酚的SLN通過(guò)相同制備過(guò)程得到。制備不同SLN方案如表1所示。

    表1 SLN和包埋α-生育酚SLN的制備配方Table 1 Formulations of SLNs and α-tocopherol-loaded SLNs%

    1.3.4 顆粒粒徑的測(cè)定

    參照吳紅艷等[27]的方法,使用動(dòng)態(tài)光散射儀測(cè)定分析乳木果油SLN的平均顆粒粒徑、聚合物分散指數(shù)(polymer dispersity index,PDI)和粒徑分布。使用去離子水將SLN懸浮液稀釋20 倍,以避免多重散射效應(yīng)影響測(cè)定結(jié)果。在室溫25 ℃條件下進(jìn)行測(cè)定分析。

    1.3.5 透射電子顯微鏡

    參照Ge Shengju等[28]的方法,使用超純水將制備得到的SLN懸浮液稀釋20 倍,之后取一滴稀釋后的SLN懸浮液沉積在300 目的碳涂層銅網(wǎng)上。濾紙除去多余的液體,然后通過(guò)真空凍干以獲得樣品。透射電鏡的加速度電壓為80 kV。

    1.3.6 差示量熱掃描儀測(cè)定

    參照馮艷等[29]的方法,使用差示量熱掃描儀測(cè)定乳木果油的融化參數(shù)(如融化溫度和融化焓值)。差示量熱掃描儀在30 mL/min的氮?dú)庀逻\(yùn)行,并使用空的小鋁鍋?zhàn)鳛榭瞻讓?duì)照。差示量熱掃描的校準(zhǔn)方法是通過(guò)手動(dòng)校準(zhǔn),包括基線優(yōu)化、熔爐的校準(zhǔn)、樣品溫度的校正、自動(dòng)掃描和熱流校準(zhǔn)[29]。乳木果油和固化后的SLN懸浮液加入到鋁鍋中,然后密封。掃描的溫度范圍和速率分別為0~100 ℃和10 ℃/min。通過(guò)軟件STARe分析記錄差示量熱掃描圖中的起始溫度(To)、峰值溫度(Tp)和終值溫度(Tc)。SLN的融化焓值(ΔH)是通過(guò)峰下基線與熱譜圖之間的面積積分進(jìn)行計(jì)算,單位為J/g。

    1.3.7 包封率和載藥量的測(cè)定

    參照Ali等[30]的方法,測(cè)定α-生育酚在乳木果油的SLN中的包埋率和載藥量。將3 gα-生育酚添加到30 g融化的液態(tài)脂質(zhì)中,接著按照上述制備步驟形成SLN后將SLN懸浮液離心(3 500×g,10 min),離心后收集上清液,并取1 mL稀釋10 倍進(jìn)行分析。分光光度計(jì)的波長(zhǎng)設(shè)置為285 nm。按式(2)、(3)計(jì)算α-生育酚的包埋率和載藥量[30]:

    式中:C1為總α-生育酚質(zhì)量/g;C2為未包埋的α-生育酚質(zhì)量/g;M1為α-生育酚包埋量/g;M2為SLN中的α-生育酚質(zhì)量/g。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    2 結(jié)果與分析

    2.1 乳木果油的脂肪酸組成

    如表2所示,乳木果油是由多不飽和脂肪酸、單不飽和脂肪酸和飽和脂肪酸組成。乳木果油中的飽和脂肪酸主要由棕櫚酸(C16:0)、硬脂酸(C18:0)和花生酸(C20:0)組成。其中,硬脂酸的含量占全部脂肪酸的40.61%。不飽和脂肪酸主要由高含量的油酸(C18:1,45.47%)和少量的亞油酸(C18:2,7.33%)組成。乳木果油中高濃度的硬脂酸賦予乳木果油在室溫呈現(xiàn)固態(tài)的物理特性,這有利于SLN的制備。而且,各種脂肪酸的存在有利于SLN中疏水活性成分的裝載。實(shí)驗(yàn)結(jié)果與相關(guān)研究報(bào)道一致[31],硬脂酸和油酸是主要的組成成分。

    表2 氣相色譜測(cè)定的乳木果油脂肪酸組成Table 2 Fatty acid composition of shea butter measured by gas chromatography

    如圖1所示,乳木果油的X射線衍射圖譜表現(xiàn)出主要的衍射峰和結(jié)晶相,符合不同脂肪酸的特征。其中,在2θ為21°處的衍射峰屬于硬脂酸[32]。此外,乳木果油的X射線衍射圖譜有較短的晶間距(4.2 ?和3.8 ?),這種β’多態(tài)性的特征表明脂質(zhì)中存在大量的棕櫚酸[32]。乳木果油圖譜中存在的寬峰范圍(12°~22°)是因多種脂肪酸結(jié)合導(dǎo)致,這也與脂肪酸的組成測(cè)定結(jié)果一致(表2)。乳木果油含有多種脂肪酸,具備穩(wěn)定的結(jié)晶多態(tài)性形態(tài)。而且,SLN的X射線衍射圖譜在21°處出現(xiàn)強(qiáng)峰,這可能是由于SLN存在硬脂酸的原因。圖譜中在23.7°處弱峰的存在是因?yàn)樵赟LN表面有吐溫系列的乳化劑[33]。

    圖1 乳木果油(A)和SLN(B)的X衍射圖Fig.1 X-ray diffraction patterns of shea butter (A) and SLNs (B)

    如圖2所示,乳木果油在36.20 ℃出現(xiàn)吸熱峰。差示量熱掃描儀的吸熱峰表示乳木果油結(jié)晶的熔化。與硬脂酸(69 ℃)和棕櫚酸(63 ℃)等固體脂肪酸相比,乳木果油的熔融溫度更低[33]。乳木果油的熔點(diǎn)與結(jié)晶度一致(圖1),而且乳木果油的低融化溫度是由于組分中含有多種脂肪酸的混合物(表2)。

    圖2 乳木果油的差示掃描量熱圖Fig.2 Differential scanning calorimetric thermogram of shea butter

    2.2 SLN的粒徑與形貌

    根據(jù)不同的油水比(1∶9~1∶1),選擇吐溫80或吐溫20作為乳化劑,制備5 種O/W的乳液。將得到的脂質(zhì)納米顆粒乳液在4 ℃固化以獲得SLN懸浮液。因?yàn)槊糠N乳液都包含不同量的固體脂質(zhì),所以從液滴形成SLN所需的固化時(shí)間也不同。長(zhǎng)期的低溫固化過(guò)程將使顆粒趨于聚集并且粒徑略有增大。乳化劑的負(fù)電荷能夠抑制顆粒的聚集。F1、F2、F3、F4和F5所需的最佳固化時(shí)間分別為240、60、30、30 min和40 min。固化時(shí)間的選擇取決于在相同的顆粒制備過(guò)程中不同固化時(shí)間獲得的最小SLN粒徑。如圖3所示,F(xiàn)1中乳液固化后,SLN懸浮液的粒度分布大于乳液的液滴分布。相反,具有更高脂質(zhì)含量的F2和F3呈現(xiàn)出相反的趨勢(shì)。隨著乳木果油含量的不斷增加,乳液的液滴分布與F4和F5中SLN懸浮液的粒徑分布趨于一致。

    圖3 固化前乳液的液滴分布和固化后懸浮液的顆粒分布Fig.3 Droplet size distribution of emulsions before curing and particle size distribution of suspensions after solidification

    從表3可以看出,SLN的平均粒徑隨乳木果油的含量增加而逐漸減小。其中,F(xiàn)5中的SLN具有最小的粒徑(30.43 nm),而F1中的SLN具有最大的粒徑(278.17 nm)。選擇合適的乳化劑會(huì)影響所形成的SLN粒徑大小。吐溫80的親水親油平衡值(hydrophile lipophile balance,HLB)為15.0,這低于吐溫20的HLB(16.7)。更低的HLB代表乳化劑有更強(qiáng)的油脂親和力。因此,吐溫80被加入到油相含量更高的乳液中[34-35]。所有制備得到的SLN都顯示出相似的PDI,這表明SLN的分散性良好。而且,SLN的Zeta電位顯示為負(fù)值,SLN的負(fù)Zeta電位有助于防止納米顆粒的聚集,從而通過(guò)靜電排斥增強(qiáng)了分散液的穩(wěn)定性。相對(duì)低的PDI也表明了這一點(diǎn)。F7中的SLN粒徑小于F3配方的顆粒粒徑,主要是由于脂溶性活性物質(zhì)α-生育酚裝載在SLN中,其可能與SLN中的脂質(zhì)發(fā)生協(xié)同效應(yīng),這會(huì)進(jìn)一步降低顆粒的粒徑和提高顆粒的穩(wěn)定性[36]。另外,本研究中所制備的乳木果油SLN粒徑小于之前研究報(bào)道的SLN粒徑[22-23]。在Ali等[22]的研究中,SLN的粒徑范圍為141~152 nm。Hassan等[23]所制備的SLN粒徑范圍為84~1 624 nm。本研究中SLN的粒徑范圍為30.43~278.17 nm,可以通過(guò)調(diào)整制備條件獲得不同粒徑的SLN。

    表3 SLNs和包埋α-生育酚SLNs的粒徑、PDI和Zeta電位Table 3 Particle sizes, PDI, and zeta potentials of SLNs and α-tocopherol-loaded SLNs

    為了更清晰地了解SLN的形貌,使用透射電子顯微鏡分析乳木果油SLN的形態(tài)。如圖4所示,SLN近似球形并且形狀均勻。SLN的形狀與Penumarthi等[37]的研究中使用膽甾醇油酸酯、甘油三油酸酯和其他脂質(zhì)制備的SLN一致。SLN的粒徑隨油相比重的增加而不斷減?。ū?)。高含量的油相在油水界面與乳化劑相互作用,能夠穩(wěn)定更多的界面面積,從而降低界面張力和乳液液滴的粒徑[38]。另外,透射電子顯微鏡還顯示出SLN具有良好的分散性,這與表3中SLN的PDI(0.10~0.24)一致。

    圖4 以不同油相比例制備的乳木果油SLNs的透射電子顯微鏡圖Fig.4 TEM images of shea butter SLNs prepared with oil phase fractions of 0.1 (A), 0.2 (B), 0.3 (C), 0.4 (D) and 0.5 (E)

    2.3 SLN的熱特性

    如表4所示,不同SLN的熱峰值溫度分別為24.43(F6)、19.05(F7)、19.23(F8)、28.96(F1)、27.08(F2)、22.5(F3)、22.42 ℃(F4)和22.75 ℃(F5),明顯低于乳木果油的熱峰值溫度(35.84 ℃)。天然乳木果油的差示量熱掃描儀結(jié)果與之前的實(shí)驗(yàn)報(bào)道一致[30]。而且,與乳木果油的Tc-To范圍(14.0 ℃)相比,所有的SLN樣品都明顯降低(4.23~7.79 ℃)。此外,所有SLN的ΔH值(-0.68~-9.71 J/g)顯著低于乳木果油(-36.58 J/g)。同時(shí)隨著油相比例的增加,熱焓值顯著降低,這可能是更多脂質(zhì)基質(zhì)延遲了在冷卻過(guò)程中的重結(jié)晶行為。從F1到F3,峰值溫度趨于更低的溫度,這可能是由于粒度效應(yīng)引起的。相關(guān)研究表明,隨著顆粒粒徑的減小,熔融轉(zhuǎn)變變寬并移向更低的溫度[38-39]。納米顆粒的熔融變化很大程度依賴于粒度的大小變化。顆粒的粒徑減小,熔點(diǎn)發(fā)生降低。另外,顆粒的比表面積越大,其熔融溫度峰值隨之降低[40]。圖5中吸熱峰能夠表明SLN的形成,說(shuō)明在低溫固化的過(guò)程中發(fā)生了相態(tài)轉(zhuǎn)變和結(jié)晶結(jié)構(gòu)的變化。熔點(diǎn)的略微下降表明脂質(zhì)基質(zhì)在形成SLN后無(wú)定形程度增加。

    表4 乳木果油SLNs的熱特性Table 4 Thermal properties of shea butter SLNs

    圖5 未包埋α-生育酚(F1~F5)及裝載α-生育酚(F8)的乳木果油SLNs的差示量熱掃描圖Fig.5 Differential scanning calorimetric thermograms of shea butter SLNs without (F1, F2, F3, F4 and F5) and with α-tocopherol (F8)

    2.4 包埋率和載藥量結(jié)果

    為了將α-生育酚完全裝載到SLN中,將占比10%的α-生育酚加入到脂質(zhì)相中,并按照之前步驟測(cè)量離心后上清液中的游離α-生育酚,根據(jù)方程(2)和(3)計(jì)算SLN中α-生育酚的包埋率和載藥量。如表5所示,在F8中的α-生育酚的包埋率和載藥量分別為95.11%和9.6%。F8的結(jié)果高于F6和F7,這表明活性物質(zhì)的包埋與裝載隨著乳木果油占比的增加而提高。相比較于之前的研究報(bào)道[41],本實(shí)驗(yàn)中α-生育酚的包埋率和載藥量數(shù)值更高。從表6也能夠看出,相比之前不同組分的SLNs,本實(shí)驗(yàn)中對(duì)于活性物質(zhì)的包埋率和載藥量數(shù)值更高。而且,α-生育酚在SLN中的包埋率為95.11%,高于文獻(xiàn)[40]結(jié)果。推測(cè)SLN中α-生育酚的高包埋率可能是由于SLN中的脂質(zhì)相與脂溶性活性物質(zhì)之間存在疏水相互作用。其中,脂質(zhì)成分、固體性質(zhì)以及納米顆粒等因素都會(huì)導(dǎo)致SLN中的α-生育酚包埋率較高。另外,乳木果油的脂質(zhì)基質(zhì)具有低結(jié)晶度,使部分無(wú)定形區(qū)域包埋脂溶性的物質(zhì)。在SLN中,脂溶性活性物質(zhì)α-生育酚包埋在油相中,油相由固態(tài)脂質(zhì)包圍,對(duì)活性物質(zhì)的泄露起到一定保護(hù)作用,從而提高了包埋率[36]。

    表5 包埋率和載藥量Table 5 Encapsulation efficiency and loading content of α-tocopherol

    表6 具備不同活性成分和脂質(zhì)組成的SLN包埋率和載藥量Table 6 Encapsulation efficiency and loading content of different bioactive components in SLNs with different lipid compositions

    3 結(jié) 論

    在本研究中,第一次通過(guò)高速均質(zhì)方法成功制備乳木果油SLN。油水比為5∶5的SLN粒徑和PDI分別為30.43 nm和0.21。從透射電子顯微鏡來(lái)看,SLN的形態(tài)呈現(xiàn)近似球形。差示量熱掃描的熱特性測(cè)定顯示出乳木果油SLN的形成,并且SLN的峰值溫度隨著粒徑減小而趨向更低的溫度。另外,脂溶性活性物質(zhì)α-生育酚成功裝載到SLN中,并且包埋率達(dá)到95.11%。這項(xiàng)研究將為乳木果油在食品、化妝品以及生物醫(yī)學(xué)行業(yè)中的更廣泛應(yīng)用提供理論依據(jù)。乳木果油SLN不僅可以裝載脂溶性活性物質(zhì)或藥物,還能夠用作營(yíng)養(yǎng)輸送的有益載體。

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