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      基于BiOI納米片雙識別型毒死蜱光電化學(xué)傳感器的構(gòu)建及應(yīng)用研究

      2021-08-06 09:37:48金黨琴龔愛琴王元有雍達(dá)明朱文軍孫艷艷
      分析測試學(xué)報(bào) 2021年7期
      關(guān)鍵詞:光電流毒死印跡

      金黨琴,龔愛琴,王元有,雍達(dá)明,孫 強(qiáng),朱文軍,孫艷艷

      (揚(yáng)州工業(yè)職業(yè)技術(shù)學(xué)院 化學(xué)工程學(xué)院,江蘇 揚(yáng)州 225127)

      毒死蜱(CPF)是一種高效中毒有機(jī)磷農(nóng)藥,可破壞害蟲體內(nèi)乙酰膽堿酯酶(AChE)活性[1],對植食性害蟲,如飛虱、稻縱卷葉螟、菜青蟲等具有很好的毒殺效果[2],在蔬菜、水果、糧食作物中應(yīng)用十分廣泛。但因過量使用,導(dǎo)致農(nóng)藥殘留嚴(yán)重影響了生態(tài)環(huán)境安全,對人與動物的生命安全構(gòu)成威脅[3-4]。聯(lián)合國環(huán)境規(guī)劃署(UNEP)和糧農(nóng)組織(FAO)禁用或嚴(yán)格限制一些高毒有機(jī)磷農(nóng)藥(如甲基對硫磷和對硫磷)在農(nóng)業(yè)上使用[4]。泰國政府規(guī)定針對百草枯和毒死蜱從2020年6月1日起實(shí)施禁令[5]。日本肯定列表制度中明確毒死蜱在蔬菜中的最高殘留限量為0.01~0.5 mg/kg,我國規(guī)定無公害蔬菜中的毒死蜱最高殘留限量為1 mg/kg[6-7]。

      毒死蜱殘留檢測的方法有氣相色譜(GC)[8]和氣相色譜-質(zhì)譜(GC-MS)[9]、液相色譜(LC)[10]和液相色譜-質(zhì)譜法(LC-MS)[11]、表面增強(qiáng)拉曼光譜法(SERS)[12]等,但這些方法常要求復(fù)雜的前處理、成本昂貴,且不適合現(xiàn)場檢測。光電化學(xué)(PEC)技術(shù)因其具有成本低、靈敏度高、儀器簡單、易于小型化等特點(diǎn)而得到快速發(fā)展[13-16]。在光照射下,PEC傳感器產(chǎn)生的光電流強(qiáng)度與分析物的濃度成正比,可用于定量分析。光敏材料和選擇性是決定PEC傳感器敏感性的兩個(gè)關(guān)鍵因素。

      作為一種新型三元氧化物半導(dǎo)體,碘氧化鉍(BiOI)因具有獨(dú)特的分層結(jié)構(gòu),內(nèi)部靜電場垂直于每一層,可以引起光生電子和空穴有效分離,被認(rèn)為是光捕獲材料[17]。其中,由于最小帶隙(~1.8 eV)和強(qiáng)吸收可見光特性(吸收邊緣為~680 nm),Bi OI在太陽光照射下表現(xiàn)出優(yōu)異的光吸收性能,已成為研究熱點(diǎn)[18],可作為光電化學(xué)傳感器的電極修飾材料。生物酶分子印跡光電化學(xué)傳感器因具有高選擇性優(yōu)點(diǎn),對其研究可進(jìn)一步提高光電化學(xué)傳感器的選擇性[19]。本研究利用分子印跡聚合物對目標(biāo)分子毒死蜱的選擇性識別能力降低樣品基質(zhì)干擾,并利用毒死蜱對AChE活性的抑制原理,構(gòu)建了分子印跡AChE/Bi OINFs/ITO雙識別型光電化學(xué)傳感器,為水樣中毒死蜱的痕量檢測提供了一種新方法。

      1 實(shí)驗(yàn)部分

      1.1 儀器與試劑

      CHI660D電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司),氘鹵鎢燈光源裝置(250 W,λ=504~624 nm,北京紐比特科技有限公司),光源對著電解池中導(dǎo)電玻璃修飾面進(jìn)行光照射;Hitachi S-4800掃描電子顯微鏡(SEM,日本日立公司),加速電壓15 kV進(jìn)行掃描;所有實(shí)驗(yàn)均在室溫下采用傳統(tǒng)的三電極體系,參比電極是飽和甘汞電極(SCE),輔助電極是鉑絲(φ=1.0 mm),工作電極是氧化銦錫(ITO)導(dǎo)電玻璃(深圳市力科光電玻璃有限公司)。

      氯化乙酰硫代膽堿(ATCl,99%)、AChE(C3389,500 U/mg)購自Sigma-Aldrich公司;毒死蜱標(biāo)準(zhǔn)溶液(100μg/mL,乙腈溶解)、Bi(NO3)3·5H2O、KI、2-氨基對苯二甲酸(H2BDC-NH2)、二甲基甲酰胺(DMF)、對巰基苯胺(ATP)、戊二醛、KCl、甲醇(分析純,中國醫(yī)藥集團(tuán)有限公司)。0.1 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS)用NaH2PO4和Na2HPO4配制。實(shí)驗(yàn)用水均為超純水。

      1.2 MIP/BiOINFs/ITO與MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極的制備

      用玻璃刀將氧化銦錫(ITO)導(dǎo)電玻璃切成長×寬為5 cm×0.6 cm長方形小片,置于2 mol/L KOH的異丙醇溶液煮沸保持30 min,取出,超聲清洗10 min,放入100℃烘箱中烘干,備用。

      BiOINFs/ITO電極的制備[20]:通過連續(xù)的離子層吸附和反應(yīng)(SILAR)法制得BiOI納米片組(BiOINFs),取2個(gè)燒杯用水分別配制5 mmol/L Bi(NO3)3·5H2O和5 mmol/L KI溶液。處理后的ITO浸入Bi(NO3)3溶液中,取出用水沖洗,然后再浸入KI溶液,每一個(gè)浸入過程持續(xù)10 s,經(jīng)過一定的SILAR循環(huán)后,制得BiOINFs/ITO在室溫下自然晾干。

      MIP/BiOINFs/ITO電極的制備:將上述BiOINFs/ITO電極放入含有5 mmol/L對巰基苯胺和0.1 mmol/L毒死蜱的pH 7.0 PBS中,電位值為-1.5 V,恒電位沉積聚合5 min,毒死蜱被聚合到電極表面,取出電極,用適量0.1%戊二醛滴涂至電極表面,自然晾干,用水沖洗過量的戊二醛,再晾干,制得修飾電極。將修飾電極浸入0.1 mol/L KCl溶液中,循環(huán)伏安掃描30圈洗脫掉模板分子,電位范圍為-1.2~0.5 V,取出電極,自然晾干,制得毒死蜱分子印跡傳感器(MIP/BiOINFs/ITO),其表面留有許多毒死蜱分子識別位點(diǎn)。

      MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極的制備:將制得的MIP/BiOINFs/ITO浸入含6 mU/mL AChE的5 mmol/LPBS(pH 7.0)溶液中6 h。取出,用PBS沖洗MIP/BiOINFs/ITO電極表面未固定的AChE,沖洗時(shí)間持續(xù)15 min,制得MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極。

      1.3 毒死蜱的分子印跡光電化學(xué)測定

      取5 mL 0.1 mol/L PBS(pH 7.0),向緩沖溶液中加入一定濃度的毒死蜱,將制得的MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極浸入其中,保持10 min,取出后,再將此電極插入含1.0 mmol/L ATCl的0.1 mol/L PBS(pH 7.0)中,測試光電化學(xué)反應(yīng)。采用I-t法,20 s進(jìn)行光照,持續(xù)10 s,30 s時(shí)關(guān)閉光源。偏置電壓:0 V。毒死蜱的抑制率計(jì)算公式為:抑制率(%)=( )I0-I/I0×100,式中,I0和I分別表示不存在和存在毒死蜱時(shí),MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極對ATCl的光電流值。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 BiOINFs/AChE的表征

      采用掃描電子顯微鏡對制備的BiOINFs納米材料形貌進(jìn)行表征(如圖1)。從圖1A中可以看出,通過SILAR法制得的BiOINFs納米片均勻地分布在ITO基體上。圖1B顯示BiOINFs/ITO電極表面被毒死蜱分子印跡后,BiOINFs納米片的多孔結(jié)構(gòu)無變化。通常,多孔納米結(jié)構(gòu)基底利于蛋白質(zhì)的固定,直接影響生物傳感器的最終性能。因此,BiOINFs的這種交錯網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)更有利于生物酶分子的固定。隨著AChE的固定化,發(fā)現(xiàn)AChE-BiOINFs的形態(tài)(圖1C)與BiOINFs相似,表明BiOI的結(jié)構(gòu)形態(tài)固定后保持不變。

      圖1 BiOINFs/ITO(A)、MIP/BiOINFs/ITO(B)及MIP/AChE/BiOINFs/ITO(C)的SEM圖Fig.1 SEM images of BiOINFs/ITO(A),MIP/BiOINFs/ITO(B)and MIP/AChE/BiOINFs/ITO(C)

      在含有2.0×10–3mol/L[Fe(CN)6]3-/4-的0.1 mol/L KCl溶液中,進(jìn)一步通過電化學(xué)阻抗譜法(EIS)研究分子印跡光電化學(xué)傳感器的逐步組裝過程(如圖2)。結(jié)果顯示,BiOINFs/ITO的交流阻抗最小(圖2a),通過電聚合法制備分子印跡聚合膜后,交流阻抗顯著增加(圖2b),這可能是因?yàn)榉肿佑≯E聚合膜增加了傳質(zhì)阻力的緣故。當(dāng)AChE修飾到MIP/BiOINFs/ITO電極表面后,交流阻抗進(jìn)一步增加(圖2c),表明AChE的不導(dǎo)電特性會阻礙電子傳遞和電化學(xué)探針的大量傳輸,導(dǎo)致阻抗增強(qiáng)。上述研究結(jié)果表明基于AChE分子印跡電極修飾的每一步過程都是成功的。

      圖2 不同電極在2.0×10–3 mol/L[Fe(CN)6]3?/4?溶液中的交流阻抗圖Fig.2 Electrochemical impedance spectroscopy of differ?ent electrodes in 2.0×10-3 mol/L[Fe(CN)6]3-/4-a:BiOINFs/ITO;b:MIP/BiOINFs/ITO;c:MIP/AChE/BiO?INFs/ITO;0.1 mol/L KCl

      2.2 不同修飾電極的光電流實(shí)驗(yàn)

      為了研究可見光誘導(dǎo)產(chǎn)生光電流響應(yīng)情況,對3種修飾電極(Bi OINFs/ITO、MIP/BiOINFs/ITO、MIP/AChE/BiOINFs/ITO)在0.1 mol/L PBS(pH 7.0)中的光電流響應(yīng)情況進(jìn)行考察(見圖3A)。結(jié)果表明,在可見光照射下,BiOINFs/ITO產(chǎn)生明顯的光電流(曲線a);由于分子印跡產(chǎn)生的印跡空穴利于電子傳遞,MIP/BiOINFs/ITO的光電流(曲線b)大于Bi OINFs/ITO;MIP/AChE/BiOINFs/ITO(曲線c)的光電流略高于MIP/BiOINFs/ITO。在PBS溶液中加入酶底物ATCl后,MIP/AChE/BiOINFs/ITO(曲線e)的光電流為42.6 nA,為不含ATCl情況下MIP/AChE/BiOINFs/ITO光電流(11.8 nA)的3.6倍。表明酶底物的加入導(dǎo)致光電流顯著提升,可以解釋為:當(dāng)PBS溶液中加入酶底物ATCl,固定的AChE可以催化ATCl水解為乙酸鹽和硫代膽堿,在可見光照射下,硫代膽堿易捕獲光生空穴,發(fā)生氧化反應(yīng),促進(jìn)光生電子和光生空穴分離,導(dǎo)致光電流強(qiáng)度增強(qiáng)。同樣實(shí)驗(yàn)條件下,未修飾AChE的MIP/BiOINFs/ITO的光電流未見明顯增強(qiáng)。進(jìn)一步說明BiOINFs提供了良好的固定AChE的基質(zhì),且AChE保留了其生物活性。

      MIP/AChE/BiOINFs/ITO在不同濃度毒死蜱溶液中浸入10 min后,再放入含有酶底物ATCl的PBS中,考察其光電流響應(yīng)情況(見圖3B)。結(jié)果表明,MIP/AChE/BiOINFs/ITO的光電流隨著毒死蜱濃度的增加(0~20.0 nmol/L)而降低(曲線a~d),且光電流的降低量與毒死蜱濃度成正比。因此,該分子印跡生物傳感器可用于毒死蜱的檢測。

      圖3 A:BiOINFs/ITO(a),MIP/Bi OINFs/ITO(b),MIP/AChE/BiOINFs/ITO(c)在0.1 mol/L pH 7.0 PBS中,以及MIP/BiO?INFs/ITO(d),MIP/AChE/Bi OINFs/ITO(e)在含1.0 mmol/L ATCl的0.1 mol/L pH 7.0 PBS中的光電流響應(yīng);B:MIP/AChE/BiOINFs/ITO在不同濃度毒死蜱溶液中浸入10 min后,在含1.0 mmol/L ATCl溶液的0.1 mol/L pH 7.0 PBS中的光電流響應(yīng)Fig.3(A)Photocurrent responses of BiOINFs/ITO(a),MIP/BiOINFs/ITO(b)and MIP/AChE/Bi OINFs/ITO(c)in 0.1 mol/LpH 7.0 PBS,and MIP/Bi OINFs/ITO(d),MIP/AChE/Bi OINFs/ITO(e)in 0.1 mol/L pH 7.0 PBS containing 1.0 mmol/LATCl;(B)photocurrent responses of MIP/AChE/BiOINFs/ITO in PBS containing 1.0 mmol/LATCl after immersion in different concentrations chlorpyrifos solution for 10 minB:concentration of chlorpyrifos(a-d):0,0.5,1.0,20.0 nmol/L

      2.3 ATCl濃度的優(yōu)化

      ATCl濃度是毒死蜱分析的重要參數(shù)之一,當(dāng)其濃度過低時(shí),MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極產(chǎn)生的光電流很小,很難檢出毒死蜱含量。然而,ATCl濃度過高時(shí)會導(dǎo)致AChE的活性中心被底物占據(jù),不利于抑制劑的抑制。實(shí)驗(yàn)考察了6種不同ATCl濃度(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2 mmol/L)對電極光電流的影響。結(jié)果顯示,隨著ATCl濃度的增大,體系的光電流強(qiáng)度增強(qiáng),且在1.0 mmol/L ATCl時(shí)達(dá)到最高。繼續(xù)增大ATCl濃度,則光電流強(qiáng)度降低(見圖4A)。因此,實(shí)驗(yàn)選擇1.0 mmol/L的ATCl為最佳濃度。

      2.4 p H值的優(yōu)化

      溶液pH值影響AChE的生物活性,為此考察了不同pH值對MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極光電流的影響。為了保持BiOINFs的穩(wěn)定性[17],溶液pH從6.0~10.0進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明,當(dāng)溶液pH值為7.0時(shí),電極的光電流最大(見圖4B)。因此,實(shí)驗(yàn)選擇最佳pH值為7.0。

      圖4 不同濃度ATCl(A)及溶液pH值(B)對MIP/AChE/Bi OINFs/ITO光電流的影響Fig.4 Influences of different ATCl concentrations(A)and pH values(B)on photocurrents of MIP/AChE/BiOINFs/ITO

      2.5 MIP/AChE/BiOINFs/ITO光電化學(xué)檢測毒死蜱

      在PBS溶液中,將MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極分別浸入不同濃度(0、0.02、0.05、0.1、0.2、0.5、1.0、20.0、50.0、100.0、200.0 nmol/L)毒死蜱中10 min后,進(jìn)行檢測。結(jié)果表明,電極的光電流值隨著毒死蜱濃度的增加而降低,且光電流抑制率和毒死蜱濃度(CCPF)在0.02~1.0 nmol/L和20.0~200.0 nmol/L范圍內(nèi)呈良好的線性關(guān)系,線性方程分別為:抑制率(%)=49.253CCPF+9.433(r2=0.998 6)和抑制率(%)=0.193CCPF+57.599(r2=0.999 1),信噪比(S/N)為3時(shí),檢出限為0.005 nmol/L。相比于GC[6]、GC-MS[7]、HPLC[9]、HPLC-MS[10]、SERS[11]和分子印跡光電化學(xué)傳感器[1]等方法,本方法的靈敏度更高(見表1),且本方法的檢出限低于我國規(guī)定的毒死蜱最高殘留限量。因此,該方法適用于實(shí)際樣品中毒死蜱的檢測。

      表1 對毒死蜱不同分析方法的比較Table 1 Comparison of the analytical performance of different methods for chlorpyrifos detection

      2.6 方法的重現(xiàn)性、再現(xiàn)性與穩(wěn)定性

      在優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件下,用相同MIP/AChE/BiOINFs/ITO修飾電極重復(fù)測量0.5 nmol/L毒死蜱9次,測得相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為4.2%,表明所制備的電極具有較好的重現(xiàn)性。用相同批次9個(gè)MIP/AChE/BiOINFs/ITO修飾電極分別測定0.5 nmol/L毒死蜱,測定結(jié)果的RSD為3.9%,表明修飾電極具有良好的再現(xiàn)性。進(jìn)一步對MIP/AChE/BiOINFs/ITO電極的穩(wěn)定性進(jìn)行驗(yàn)證。將該分子印跡電極在4℃下儲存7 d后,通過測定,其光電流保留了原光電流響應(yīng)值的93.9%,說明該雙識別型傳感器的穩(wěn)定性較好。

      2.7 方法的選擇性及其在實(shí)際樣品中的應(yīng)用

      在優(yōu)化條件下,選擇一些和毒死蜱結(jié)構(gòu)相似的物質(zhì),如:三唑磷(TRI)、氯苯(CHL)、殺螟硫磷(FEN)和甲基對硫磷(MP)作為干擾物,考察了分子印跡傳感器對毒死蜱的選擇性。通過在0.2 nmol/L毒死蜱中加入2.0 nmol/L TRI、CHL、FEN、MP,共存條件下測量光電流信號的強(qiáng)度。結(jié)果表明,當(dāng)毒死蜱中添加上述干擾物時(shí),其光電流信號分別為34.7、34.9、35.1、34.8 nA,相比較僅含毒死蜱(35.0 nA)時(shí)無明顯變化,表明該分子印跡傳感器的選擇性較好,具有一定的抗干擾能力。

      在優(yōu)化條件下,采用制備的MIP/AChE/BiOINFs/ITO測定地表水樣品中的毒死蜱含量,結(jié)果未檢出毒死蜱,進(jìn)一步對樣品進(jìn)行不同濃度(0.05、0.1、0.5、1.0、20.0 nmol/L)毒死蜱的加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明水樣中毒死蜱的回收率為96.1%~108%,RSD為2.8%~4.2%。表明傳感器在復(fù)雜樣品中具有良好的準(zhǔn)確度和回收率。

      3 結(jié) 論

      鑒于分子印跡技術(shù)和酶的良好選擇性以及BiOINFs在太陽光照射下優(yōu)異的光吸收性能,本文構(gòu)建了一種基于BiOINFs納米材料制備雙識別型光電化學(xué)傳感器,光電子在毒死蜱、BiOINFs和ITO之間的快速傳遞,使得光電流顯著增強(qiáng)。分子印跡技術(shù)和生物酶AChE的固定進(jìn)一步增強(qiáng)了該傳感器的選擇性。該傳感器靈敏度高、制作簡便、便于攜帶,為水樣中毒死蜱的檢測提供了一種簡便的方法。

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