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      草菇自溶過(guò)程中果膠酶及纖維素酶的活力變化*

      2021-07-15 06:15:50劉靜華歐陽(yáng)鈺鐘舒雅馬鈺霖陳詩(shī)依
      中國(guó)食用菌 2021年5期
      關(guān)鍵詞:自溶草菇醛酸

      劉靜華,歐陽(yáng)鈺,鐘舒雅,馬鈺霖,陳詩(shī)依,吳 偲,劉 主

      (韶關(guān)學(xué)院英東生物與農(nóng)業(yè)學(xué)院,廣東 韶關(guān) 512005)

      草菇(Volvariella volvacea),擔(dān)子菌亞門(mén)(Basidiomycatina) 層菌綱 (Hyoenomycetes) 傘菌目(Agaricales) 光柄菇科 (Pluteaceae) 草菇屬(Volvariella)[1]。因在稻草上生長(zhǎng)得名,又名稈菇、蘭花菇、南華菇、中國(guó)蘑菇、美味包腳菇等。草菇具有較高的營(yíng)養(yǎng)成分與保健價(jià)值。草菇含8種人體必需氨基酸,占其氨基酸總量的38.2%。草菇含有多糖類物質(zhì),能抑制癌細(xì)胞生長(zhǎng)[2]。同時(shí)草菇屬于低升糖指數(shù)食物,是糖尿病患的理想食物。草菇屬于高溫型腐生真菌,在10℃~44℃、相對(duì)濕度80%~95%時(shí)生長(zhǎng)旺盛[3]。最適保存溫度為15℃,高于或低于15℃均容易發(fā)生軟化自溶[4]。草菇自溶可能是由于細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)改變、細(xì)胞壁成分降解所致。草菇的細(xì)胞壁含有果膠和纖維素等的物質(zhì),認(rèn)為與草菇自溶有關(guān)[5]。通過(guò)測(cè)定不同溫度下草菇自溶過(guò)程中果膠酶和纖維素酶的活性變化,以期探討草菇自溶與這兩種酶活性的變化關(guān)系,以期為草菇保鮮提供參考。

      1 草菇細(xì)胞壁成分影響酶

      1.1 果膠酶

      果膠主要是由D-半乳糖醛酸以α-1,4糖苷鍵連接而成的直鏈聚合物[6]。果膠酶(pectinase) 是指能夠催化果膠質(zhì)分解的多種酶的總稱[7]。果膠酶一般包含果膠酯酶 (pectinesterase)、聚半乳糖醛酸酶(polygalacturonase)、果膠裂解酶 (pectate lyase) 3種。酯酶水解果膠酯成為果膠酸和甲醇;解聚酶分為果膠水解酶和果膠裂解酶,可斷開(kāi)果膠中部分D-半乳糖醛酸的α-1,4糖苷鍵[8-10];真菌分解果膠類物質(zhì)的酶主要是果膠裂解酶。果膠酶瓦解細(xì)胞壁中的果膠成分,破壞細(xì)胞壁,導(dǎo)致果實(shí)軟化腐敗。故果膠酶與草菇自溶理論上存在一定的關(guān)系[11]。

      1.2 纖維素酶

      纖維素酶(cellulase)是一種多組分復(fù)合酶,包含C1酶、Cx酶和β-葡萄糖苷酶3種。其中C1酶可水解天然纖維素成為無(wú)定形纖維素,Cx酶可將其繼續(xù)水解為纖維寡糖,β-葡萄糖苷酶進(jìn)一步水解纖維寡糖成為葡萄糖。研究認(rèn)為,纖維素酶在某些水果如青梅[12]、桃[13]、甜櫻桃[14]果實(shí)的軟化中起主要作用。近年來(lái)對(duì)纖維素酶的研究顯示,纖維素酶與果實(shí)早期的成熟軟化有著密切聯(lián)系[15],薛炳燁等[16]發(fā)現(xiàn)纖維素酶活性的升高是肥城桃果實(shí)硬度下降的首因。Tonutti等[17]報(bào)道,桃的果實(shí)在呼吸躍變前只有pI6.5的纖維素酶同工酶表現(xiàn)活性,呼吸躍變后出現(xiàn)了pI6.5和pI9.5共2種纖維素酶同工酶。部分真菌的細(xì)胞壁含有纖維素[18],纖維素酶能分解細(xì)胞壁中的纖維素,從而使細(xì)胞壁遭到破壞。因此纖維素酶也可能與草菇的自溶有關(guān)。

      2 試驗(yàn)材料和方法

      2.1 試驗(yàn)材料

      草菇菌株V23,實(shí)驗(yàn)室保存;D-半乳糖醛酸,北京金泰宏達(dá)生物科技有限公司;葡萄糖,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;醋酸鈉緩沖液(0.2 mol·L-1,pH 4.8),西隴化工有限公司;0.25%果膠溶液,浙江一諾生物科技有限公司;二硝基水楊酸試劑(DNS試劑),天津福辰;羧甲基纖維素鈉溶液(CMC-Na溶液),天津市大茂化學(xué)試劑廠;Ultrospec 2000紫外分光光度計(jì),Pharmacia Biotech;HH-S28s恒溫水浴鍋,金壇市環(huán)保儀器廠;冰箱,華凌;恒溫培養(yǎng)箱,廣東省醫(yī)療器械廠。

      2.2 試驗(yàn)方法

      2.2.1 草菇粗酶液制備

      選取新鮮無(wú)損傷、無(wú)褐變的草菇子實(shí)體1 000 g,無(wú)菌水洗凈擦干,分為2組,每組各500 g,分別放置于4℃、30℃保存。4℃條件下,每隔2 d觀察草菇的自溶情況,加雙蒸水提取20 g草菇的液汁為粗酶液進(jìn)行各項(xiàng)檢測(cè),共觀察采樣8次;由于高溫條件下,草菇自溶較快,30℃保存的草菇每隔1 d觀察其自溶情況,加雙蒸水提取20 g草菇液汁作為粗酶液進(jìn)行各項(xiàng)檢測(cè),共觀察采樣8次。

      2.2.2 果膠酶的活力測(cè)定

      果膠酶酶活力測(cè)定常用方法包括還原法、粘度法、還原糖法(DNS法) 等[16-17]。選用更精確的DNS法測(cè)定草菇果膠酶酶活力。3,5-二硝基水楊酸(DNS)與醛糖共熱能夠產(chǎn)生棕紅色的氨基化合物,在一定范圍內(nèi)還原糖量與呈色物溶液顏色成正比,以標(biāo)準(zhǔn)半乳糖醛酸液作標(biāo)準(zhǔn)曲線,540 nm波長(zhǎng)下測(cè)定待測(cè)液吸光值可算出半乳糖醛酸含量,從而計(jì)算果膠酶酶活力。

      1)半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

      準(zhǔn)確稱取100 mg分析純半乳糖醛酸,用pH 4.8醋酸鈉緩沖液配制成濃度為l mg·mL-1的半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)溶液。取7支刻度具塞試管,分別加入0、0.1 mL、0.2 mL、0.3 mL、0.4 mL、0.5 mL、0.6 mL 半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)液,加入1.5 mL DNS液混合均勻,在沸水浴中加熱5 min,取出后立即用流水冷卻至室溫,每管加蒸餾水稀釋到12.5 mL,搖勻,于540 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光值。以半乳糖醛酸濃度為橫坐標(biāo),以光吸收值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      2)DNS法測(cè)定果膠酶酶活力

      取2支試管,各加入0.90 mL的0.25%果膠底物溶液(醋酸鈉緩沖液配置),置于恒溫水浴箱37℃保溫5 min。其中1號(hào)管(空白管) 加0.20 mL煮沸失活的粗酶液,2號(hào)管(樣品管) 加入粗酶液0.20 mL,將2支試管置于恒溫水浴箱37℃溫浴30 min;向各管加入DNS試劑1.50 mL混合均勻,終止反應(yīng);沸水浴5 min;流水冷卻試管;向試管分別加入雙蒸水7.40 mL,混勻;540 nm波長(zhǎng)下,以空白管調(diào)零,測(cè)樣品管吸光度,通過(guò)半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線或用線性回歸方程求出還原糖的含量,酶活力(X1,U·mL-1)的計(jì)算公式為:

      式中:G1為半乳糖醛酸含量(mg);30為保溫時(shí)間,即酶與底物作用時(shí)間(min);Ew為粗酶液的體積(mL)。

      一個(gè)酶活力單位指在37℃、pH 4.8的條件下,每分鐘催化果膠水解成1 μmoL半乳糖醛酸的酶量。

      2.2.3 纖維素酶酶活力測(cè)定

      1)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

      準(zhǔn)確稱取100 mg分析純無(wú)水葡萄糖(預(yù)先在105℃干燥至恒重),用蒸餾水,配制成濃度為 1 mg·mL-1的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液。取7支刻度具塞試管,分別加入0、0.1 mL、0.2 mL、0.3 mL、0.4 mL、0.5 mL、0.6 mL葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)液,加入1.5 mL DNS液(3,5-二硝基水楊酸試劑)混合均勻,在沸水浴中加熱5 min,取出后立即用流水冷卻至室溫,每管加蒸餾水稀釋到12.5 mL,搖勻,于520 nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光值。以葡萄糖濃度為橫坐標(biāo),以光吸收值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      2)濾紙法(FPA) 測(cè)定纖維素酶酶活力

      濾紙含有聚合度、結(jié)晶度適中的纖維素,可以定性濾紙為底物,經(jīng)纖維素酶水解后生成還原糖,以還原糖的量來(lái)對(duì)標(biāo)纖維素酶系總的糖化能力。即為濾紙酶活(FPA),此法應(yīng)用廣泛,且能夠反映3類酶組分的協(xié)同作用[19]。取2支刻度具塞試管,1號(hào)為空白管,2號(hào)為樣品管。分別向2支管中加入0.05 mol·L-1醋酸鈉緩沖溶液 (pH 4.8) 2.00 mL,空白管則加入煮沸失活后的纖維素粗酶液1.00 mL,樣品管中加入粗酶液1.00 mL,均使管內(nèi)溶液浸沒(méi)濾紙(3 cm×2 cm,揉成團(tuán)),蓋塞。將2支試管同時(shí)置于50℃水浴鍋中水浴60 min。取出后立即加入DNS試劑3.00 mL,搖勻。將2支管同時(shí)放入沸水浴中水浴10 min,取出迅速冷卻至室溫,每管內(nèi)容物用重蒸水稀釋到25.00 mL,搖勻。520 nm波長(zhǎng)下,以空白管調(diào)零,測(cè)樣品管吸光度,通過(guò)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線或用線性回歸方程求出還原糖的含量,酶活力(X2,U·mL-1)的計(jì)算公式為:

      式中:G2為葡萄糖含量(mg);60為保溫時(shí)間,即酶與底物作用時(shí)間(min);Ew為粗酶液的體積(mL)。

      一個(gè)酶活力單位指在50℃、pH 4.8的條件下,每分鐘催化纖維素水解成1 μmol葡萄糖的酶量。

      3) 羧甲基纖維素鈉(CMC-Na) 法測(cè)定纖維素酶酶活力

      纖維素酶能降解CMC-Na生成葡萄糖等還原糖,再用DNS法顯色,用標(biāo)準(zhǔn)葡糖糖液作標(biāo)準(zhǔn)曲線,520 nm處測(cè)其吸光度[20]。取2支刻度具塞試管,1號(hào)為空白管,2號(hào)為樣品管。分別向2管中加入CMC-Na溶液1.00 mL,空白管中加入煮沸失活后的纖維素粗酶液0.50 mL,樣品管中加入粗酶液0.50 mL,混勻,蓋塞。將2支試管同時(shí)置于50℃水浴鍋中水浴30 min。取出后迅速加入DNS試劑1.50 mL,搖勻。將試管同時(shí)放入沸水中水浴10 min,取出迅速冷卻至室溫,每管用重蒸水稀釋到12.50 mL,搖勻。520 nm波長(zhǎng)下,以空白管調(diào)零,測(cè)樣品管吸光度,通過(guò)葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線或用線性回歸方程求出還原糖的含量,酶活力(X3,U·mL-1)的計(jì)算公式為:

      式中:G3為葡萄糖含量(mg);30為保溫時(shí)間,即酶與底物作用時(shí)間(min);Ew為粗酶液的體積(mL)。

      一個(gè)酶活力單位指在50℃、pH 4.8的條件下,每分鐘催化纖維素水解成1 μmol葡萄糖的酶量。

      3 結(jié)果與分析

      3.1 草菇高溫自溶對(duì)比

      草菇自溶前后的對(duì)比見(jiàn)圖1。

      圖1 草菇自溶前后對(duì)比圖Fig.1 Volvariella volvacea before and after autolysis

      由圖1所示,草菇自溶的過(guò)程中,外觀色澤逐漸變褐色,氣味從鮮菇味變?yōu)橛写瘫钱愇?,菇體從硬實(shí)有彈性變?yōu)檐浰砻娉霈F(xiàn)粘液、出水,為草菇自溶過(guò)程發(fā)生軟化,液化現(xiàn)象。

      3.2 半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線

      半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線見(jiàn)圖2。

      由圖2可知,利用Excel 2010繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程及相關(guān)系數(shù);對(duì)測(cè)得的結(jié)果進(jìn)行F檢驗(yàn),F(xiàn)值為0.056 0,P值為0.009 1(P<0.01),差異極顯著。R接近于1,說(shuō)明其相關(guān)性較大。

      圖2 半乳糖醛酸標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 Standard curve of galacturonic acid

      3.3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

      葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線見(jiàn)圖3。

      圖3 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.3 Standard curve of glucose

      由圖3所示,利用Excel 2010繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到回歸方程及相關(guān)系數(shù);對(duì)測(cè)得的結(jié)果進(jìn)行F檢驗(yàn),F(xiàn)值為0.415 3,P值為0.006 9(P<0.01),差異極顯著。R接近于1,說(shuō)明其相關(guān)性較大。

      3.4 低溫自溶結(jié)果

      草菇4℃儲(chǔ)存條件下果膠酶活力變化曲線見(jiàn)圖4。

      圖4 4℃條件下果膠酶活力變化曲線Fig.4 Variation curve of pectinase activity at 4℃

      由圖4可知,隨著冷藏時(shí)間的增加,果膠酶活力在草菇自溶前期趨于不變,但在自溶第12天時(shí)突然上升之后又下降;說(shuō)明低溫條件下,果膠酶在草菇自溶后期會(huì)產(chǎn)生有一定的影響。不同方法測(cè)定4℃儲(chǔ)存條件下纖維酶的活力變化曲線見(jiàn)圖5、圖6。

      圖5 4℃條件下CMC-Na法測(cè)定纖維酶的活力變化曲線Fig.5 Variation curve of cellulase activity by CMC-Na at 4℃

      由圖5、圖6可知在草菇自溶前期,纖維素酶活性先上升后下降,后又趨于穩(wěn)定。說(shuō)明低溫條件下,纖維素酶影響草菇的自溶前期。由于FPA法能反映纖維素酶中3類酶組分的協(xié)同作用,而CMCNa法反映的是內(nèi)切葡聚糖酶的作用,所以從第6天、第8天、第10天的數(shù)據(jù)看,2種方法測(cè)得的酶活變化趨勢(shì)略有不同。

      圖6 4℃條件下FPA法測(cè)定纖維素酶的活力變化曲線Fig.6 Variation curve of cellulase activity by FPA at 4℃

      綜上,草菇在4℃低溫自溶過(guò)程中果膠酶與纖維素酶對(duì)草菇自溶都有一定的影響,但作用的時(shí)期不同。

      3.5 高溫自溶數(shù)據(jù)表

      草菇30℃儲(chǔ)存條件下果膠酶活力變化曲線見(jiàn)圖7。

      由圖7所示,30℃處理?xiàng)l件下果膠酶在自溶第1天時(shí),活力達(dá)到最大值,之后果膠酶活力隨著時(shí)間的增加,活力逐漸下降,后期變化趨于平穩(wěn)。不同方法測(cè)定4℃儲(chǔ)存條件下纖維酶的活力變化曲線見(jiàn)圖8、圖9。

      圖7 30℃條件下果膠酶活力變化曲線Fig.7 Variation curve of pectinase activity at 30℃

      由圖8、圖9可知,在草菇高溫自溶過(guò)程中纖維素酶活性均為先升高后降低,之后趨于穩(wěn)定,且在自溶第2天和自溶第3天時(shí),纖維素酶的活力相近,達(dá)到最大值,說(shuō)明纖維素酶在草菇自溶中期有重要影響。

      圖8 30℃條件下CMC-Na法測(cè)定纖維酶的活力變化曲線Fig.8 Variation curve of cellulase activity by CMC-Na at 30℃

      圖9 30℃條件下FPA法測(cè)定纖維素酶的活力變化曲線Fig.9 Variation curve of cellulase activity at 30℃by FPA

      4 結(jié)論

      對(duì)比2組試驗(yàn)結(jié)果,草菇中果膠酶活性在低溫自溶和高溫自溶中變化趨勢(shì)不同。而草菇纖維素酶在低溫及高溫自溶中的變化趨勢(shì)相近。

      草菇采后即切斷了外部環(huán)境營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的供應(yīng),只能通過(guò)消耗自身糖類物質(zhì)產(chǎn)能進(jìn)行代謝活動(dòng)[21]。此時(shí)菇體內(nèi)的水解酶如果膠酶、纖維素酶作用于細(xì)胞壁、細(xì)胞質(zhì)中的果膠和纖維素,使自身降解、軟化、液化,甚至腐爛。試驗(yàn)表明,不管是低溫自溶還是高溫自溶,草菇內(nèi)纖維素酶與果膠酶的活力變化對(duì)其自溶均有一定的影響;且作用的時(shí)期和機(jī)制不同。果膠酶在草菇低溫自溶后期起主要作用;在高溫自溶前期起主要作用。而纖維素酶在草菇低溫及高溫自溶的前中期起主要作用。表明草菇軟化和自溶可能與果膠酶和纖維素酶的活性變化有關(guān),且低溫自溶和高溫自溶的機(jī)制可能不同。對(duì)茶樹(shù)菇(Agrocybe aegerita)[22]、雙孢蘑菇 (Agaricus bisporus)[23]自溶機(jī)理與真空預(yù)冷技術(shù)的研究中,也提出在不同貯藏溫度下茶樹(shù)菇、雙孢菇內(nèi)果膠含量和果膠酶、纖維素含量和纖維素酶均有明顯差異。

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