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      海參多肽微丸制備工藝

      2021-06-28 14:20:56胡越繆怡燁喻樊戚嘉怡鄭嘉瑤劉岐
      食品工業(yè) 2021年6期
      關鍵詞:微丸海參去離子水

      胡越,繆怡燁, ,喻樊, *,戚嘉怡,鄭嘉瑤,劉岐

      1.鹽城師范學院藥學院(鹽城 224051);2.江蘇省灘涂生物資源與環(huán)境保護重點建設實驗室(鹽城 224002);3.南京工業(yè)大學(南京 210000);4.揚州大學醫(yī)學院(揚州 225001)

      海參,屬海參綱動物,其主要的功效成分是海參多肽、海參多糖等[1]。海參多肽是一種生物活性多肽,具有抗氧化、延緩衰老等功能[2-3]。近年來,海參多肽的抗氧化性得到越來越多的關注。

      微丸是一種直徑為0.5~2.5 mm的球形或是類球形的多單元新型口服制劑,單次給藥量可高達幾十甚至幾百顆,優(yōu)于片劑、丸劑等固體制劑。由于擠出滾圓法制備的微丸顆粒直徑一致,活性成分的含量均勻,可用于大生產(chǎn),是常用的制備微丸的方法之一[4]。市面上銷售的保健品多是海參肽營養(yǎng)粉和海參干粉等,未見海參多肽微丸。該文評價了海參多肽的抗氧化性,并對擠出滾圓法制備海參多肽微丸的工藝進行了探討。

      1 材料

      1.1 設備與儀器

      E-50擠出制粒機,R-250離心滾圓機(重慶英格制藥設備制造有限公司),冷凍干燥機(北京博醫(yī)康實驗儀器有限公司,F(xiàn)D-1D-80),紅外光譜儀(德國布魯克BRUKER TENSOR II傅里葉紅外光譜儀),掃描電子顯微鏡(FEI,QUANTA200)。

      1.2 試劑

      淡干海參(煙臺瑞參堂水產(chǎn)有限公司),微晶纖維素(國藥集團化學試劑有限公司,批號:20160802),木瓜蛋白酶(上海藍季生物,≥1 000 U/mg),1, 1-二苯基-2-苦基肼自由基(DPPH,上海藍季生物),焦性沒食子酸(鄰苯三酚,上海展云化工有限公司,批號:161010),三羥甲基氨基甲烷(Tris,上海藍季生物),其他試劑為分析純。

      2 試驗方法

      2.1 空白微丸制備

      采用擠出滾圓法制備微丸。利用單因素試驗方法[5],以圓整度為主要指標,研究最佳微丸制備工藝。

      空白微丸處方:50 g碳酸鈣,12.5 g微晶纖維素,適量10%淀粉漿。

      2.2 海參多肽的制備

      2.2.1 海參的處理

      將海參用純水浸泡,于4 ℃回軟。將海參開膛去除沙嘴和內(nèi)臟。放入沸水中煮70~90 min。海參4 ℃冰箱中純水浸泡3 d,每12 h換水。處理好后的海參剪成約2 cm的薄片,冷凍干燥。

      2.2.2 海參多肽水解時間

      稱取0.2 g海參粉,加入150 mL純水,調(diào)節(jié)pH為8.0,稱取12%木瓜蛋白酶[6],即0.024 g,于55 ℃水浴加熱,以5 000 r/min離心10 min,取上清液在280 nm處測量水解液的吸光度,計算得率并記錄。

      2.2.3 紫外吸收標準曲線

      精密稱取牛血清白蛋白,制備2 mg/mL的儲備液。精密量取0,0.2,0.4,0.6,0.8和1.0 mL的儲備液于試管中,去離子水補足至1 mL,再精密量取4 mL的雙縮脲試劑,充分搖勻,于25 ℃水浴30 min,取出,在540 nm下測定吸光度。其標準曲線方程為y=0.044 2x+0.000 9(R2=0.999 3)。

      2.2.4 水解度

      用移液管移取5 mL水解液,再加入5 mL 10% TCA溶液,振蕩混合均勻,靜置10 min,以4 000 r/min離心20 min,在540 nm處測定吸光度A1。再加入5 mL去離子水,于55 ℃水浴加熱若干小時,重復上述步驟,得吸光度A2??偟鞍譔0用微量凱氏定氮法,N1和N2采用標準曲線法[7]。

      式中:N0為海參粉中的總蛋白濃度;N1為酶解前水解液中的可溶性蛋白濃度;N2為酶解后水解液中的可溶性蛋白濃度。

      2.2.5 收率

      水解液在100 ℃沸水中鈍化酶活性10 min[8],以4 000 r/min離心15 min收集上清,凍干燥,計算收率。

      式中:m0為海參粉的總質(zhì)量;m1為冷凍干燥好的海參多肽的總質(zhì)量。

      2.2.6 海參多肽的性質(zhì)

      2.2.6.1 DPPH·清除率[9]

      避光精密稱取0.009 8 g DPPH·,用無水乙醇定容于250 mL棕色容量瓶中。稱取0.050 0 g海參多肽定容于10 mL的容量瓶中,作為樣品溶液。分別移取不同體積的樣品溶液,用去離子水補足至2 mL,再加入2 mL的DPPH溶液,充分搖勻后,避光反應30 min,以去離子水作為參比溶液,在517 nm處測定溶液的吸光度,為Aj。同時樣品溶液加入2 mL的無水乙醇,作為空白對照Ai,2 mL的去離子水和2 mL的DPPH溶液的吸光度為A0。清除率按式(3)計算:

      2.2.6.2 OH·清除率[10]

      稱取0.050 0 g海參多肽定容于10 mL容量瓶中,作為樣品溶液。依次加入1 mL 9 mmol/L的硫酸亞鐵,1 mL 9 mmol/L的乙醇-水楊酸,12 mL去離子水,最后加入1 mL 8.8 mmol/L的過氧化氫,充分搖勻,于37 ℃水浴15 min,離心取上清液,在510 nm處測其吸光度A0,以不加過氧化氫的體系為參比溶液測定Ax0,去離子水為參比溶液測定吸光度Ax。清除率按式(4)計算:

      2.2.6.3 O2-·清除率[11]

      稱取0.050 0 g海參多肽定容于10 mL容量瓶中,作為樣品溶液。取4.2 mL蒸餾水,4.5 mL的0.1 mol/L Tris-HCl(pH 8.2),混合均勻,在37 ℃下水浴20 min。取3 mL于比色皿中,再移取0.105 mL 3 mmol/L的鄰苯三酚溶液(以10 mmol/L的HCl為空白),混勻,在325 nm下每30 s測定吸光度A0,4 min后停止。樣品液步驟同上,測定吸光度Aj。清除率按式(5)計算:

      2.3 海參多肽微丸的制備

      處方:10 g碳酸鈣,7.5 g微晶纖維素,0.9 g海參多肽,適量10%淀粉漿。

      按處方量制作軟材。將軟材放入擠出滾圓機中,設定擠出頻率30 Hz、滾圓頻率50 Hz、滾圓時間4 min。將微丸放入65 ℃烘箱進行干燥,稱質(zhì)量。

      2.4 海參多肽微丸的表征

      2.4.1 掃描電子顯微鏡

      將海參多肽、空白微丸、海參多肽微丸和在人工胃液中溶蝕0.5,1,2和4 h的海參多肽微丸在掃描電子顯微鏡下進行檢測。

      2.4.2 紅外光譜

      3 結(jié)果與分析

      3.1 制備空白微丸參數(shù)的選擇

      固定滾圓頻率50 Hz、滾圓時間4 min,考察擠出頻率對圓整度的影響。由圖1可知,擠出頻率的增加,會導致微丸圓整度下降[12]。因此,最佳擠出頻率是30 Hz。離心滾圓機的滾圓頻率越小,轉(zhuǎn)盤提供的離心力和剪切力越小,條狀軟材不易斷,呈長條狀或者是短圓柱狀,圓整度下降。因此,最佳的滾圓頻率是50 Hz。

      圖1 擠出頻率和滾圓頻率對微丸圓整度的影響

      由圖2可知,隨著滾圓時間的延長,微丸表面較為濕潤,會粘連環(huán)境中的細粉,微丸的直徑增大,導致圓整度下降。因此,最佳滾圓時間是4 min。

      圖2 滾圓時間對微丸圓整度的影響

      綜上所述,最佳工藝參數(shù)是擠出頻率30 Hz,滾圓頻率50 Hz,滾圓時間4 min。

      3.2 海參多肽水解時間

      由圖3可知,在前5 h水解過程中,280 nm處的吸光度顯著提高,5 h后吸光度曲線變得平緩,水解時間確定為9 h。

      圖3 不同水解時間海參多肽的吸光度

      3.3 水解度

      水解時間為9 h,A1=0.005,A2=0.026,N0=185.130 g,N1=170.362 g,N2=27.828 g,算得水解度為90.16%。

      3.4 收率

      根據(jù)公式(2),算得平均收率為69.50%。

      3.5 清除率的測定

      圖4和圖5分別為不同濃度的海參多肽對DPPH,OH·和O2-·的清除率,結(jié)果顯示海參多肽具有一定的抗氧化能力。

      圖4 海參多肽對OH·和DPPH自由基清除率

      圖5 海參多肽對O2-·清除率

      3.6 海參多肽微丸的表征

      3.6.1 電子掃描顯微鏡

      圖6中,A是海參多肽,成片狀卷曲。圖B和圖C分別是通過擠出滾圓法制備的空白微丸和海參多肽微丸。在微觀形態(tài)上,海參多肽微丸形態(tài)較圓整。

      圖6 掃描電鏡圖

      圖7是海參多肽微丸在人工胃液中分別溶蝕0.5,1,2,4 h的圖片,微丸的表面有明顯溶蝕痕跡,而且程度隨時間加劇,這可能是胃酸與輔料中的碳酸鈣反應的結(jié)果。

      圖7 不同時間的微丸溶蝕電鏡圖

      3.6.2 紅外光譜

      如圖8所示,海參多肽在3 415.64 cm-1處有寬且強的O—H峰。碳酸鈣在1 795.46 cm-1處有C—O伸縮振動峰;1 403.73 cm-1是C—O反對稱伸縮振動峰。微晶纖維素在1 058.10 cm-1是C—O—C吡喃環(huán)骨架振動[13]??瞻孜⑼柙? 430 cm-1吸收峰是C—O反對稱伸縮振動,顯示空白微丸中含有碳酸鈣;1 060 cm-1左右的吸收峰是C—O—C的吡喃環(huán)骨架振動,顯示空白微丸中含有微晶纖維素。物理混合在1 795.88,873.15和710.84 cm-1各有一個吸收峰,表明物理混合中含碳酸鈣;在1 058.92和2 904.39 cm-1處的峰表明有微晶纖維素;3 419.13 cm-1的寬峰是O—H的振動峰。1 430 cm-1的強吸收峰可能是海參多肽中肽鍵與微晶纖維素中C—O反對稱伸縮振動和O—H的彎曲振動的重疊峰。海參多肽微丸的紅外圖譜與物理混合的圖譜相近,表明海參多肽在輔料中分散均勻。

      圖8 紅外光譜

      4 結(jié)論

      近年來,對于海參多肽的抗氧化性的研究逐漸增加。試驗主要從DPPH·、OH·和O2-·三種自由基的清除率對海參多肽的抗氧化性進行評價。結(jié)果顯示,海參多肽對三種自由基均有清除率,對OH·的清除率較高,海參多肽對DPPH·也有明顯的清除作用。試驗還采用擠出滾圓法制備了海參多肽微丸,采用單因素試驗方法,以圓整度為主要指標,獲得了微丸的最佳工藝參數(shù)。通過掃描電子顯微鏡和紅外光譜對海參多肽微丸進行了表征。采用擠出滾圓法制備的海參多肽微丸,使用碳酸鈣作為主要稀釋劑,降低了成本,可以提高海參多肽的穩(wěn)定性,具有一定的應用價值,在市場上有廣闊的前景。

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