張嘉鈺,辛嘉英,, ,劉豐源,夏春谷,許錫凱,王廣交,崔添玉
(1.哈爾濱商業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程重點實驗室,黑龍江哈爾濱 150076;2.中國科學(xué)院蘭州化學(xué)物理研究所羰基合成與選擇氧化國家重點實驗室,甘肅蘭州 730000)
過氧化鈣(CaO2)又稱二氧化鈣,是一種白色或淡黃色粉末,難溶于水,不溶于乙醇、乙醚等有機溶劑,是一種新型的多功能無機精細(xì)化工產(chǎn)品,目前開發(fā)和應(yīng)用較為廣泛[1]。CaO2對紫外線有吸收作用,可脫色、增氧、殺菌、防腐,現(xiàn)已廣泛應(yīng)用在環(huán)境保護、冶金工業(yè)、水產(chǎn)養(yǎng)殖以及食品加工中。在食品加工中一般用作殺菌劑、漂白劑、防腐劑等[2-3]。CaO2作為面粉添加劑,可以改善面粉的色澤并且加快后熟,也可作為面粉增筋劑和面包改良劑等,能代替過氧化苯甲酰,曾被列入使用衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)[4]。但經(jīng)長期研究表明,使用過量的CaO2會對身體造成損害,如刺激腸道、誘發(fā)癌癥等,極性毒性LD50(大鼠經(jīng)口)大于5000 mg/kg[5]。在2011年3月1日,衛(wèi)生部等7部聯(lián)合發(fā)布全面禁止過氧化苯甲酰、過氧化鈣兩種面粉增白劑的使用[6]。但為了提高利益,仍有大量不良商家向面粉中非法添加CaO2,對人們的健康造成極大影響。目前,國內(nèi)外關(guān)于面粉中CaO2的檢測資料較少,開發(fā)新型的檢測方法意義重大。
目前,對于CaO2的檢測有熱分解法、乙二胺四乙酸滴定法(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)、間接碘量法、高錳酸鉀法等[7-10],但這些方法只適用于對CaO2純品的檢測,并且滴定的速度難以控制,準(zhǔn)確度過低,不能實現(xiàn)對CaO2的痕量檢測。過氧化物酶(Peroxidase,POD)可通過過氧化氫催化多種有機化合物的氧化,并且可以產(chǎn)生顏色變化,已經(jīng)廣泛的用于對過氧化氫的酶法測定[11-12]。張玉榮等[2]提出了酶催化法測定小麥粉中的過氧化鈣,所采用的過氧化物酶是辣根過氧化物酶(horseradish peroxidase, HRP),然后利用CaO2與酸反應(yīng)可生成過氧化氫(H2O2),再以碘化鉀(KI)為增敏劑,可使季胺(4,4’-二甲氨基-二苯基甲烷)氧化顯色,成功實現(xiàn)了對面粉中CaO2定性定量的分析。HRP已經(jīng)被廣泛的應(yīng)用于檢測H2O2[13-14],但HRP為天然酶,它存在一些嚴(yán)重的缺點,它的催化活性易受溫度和pH影響,并且它的制備和純化非常繁瑣耗時,價格昂貴,在實際應(yīng)用中難以推廣。為了克服這些局限性,學(xué)者們在探索模擬酶取代天然過氧化物酶的研究中做了大量的工作[15],甲烷氧化菌是一類利用甲烷作為唯一能源和碳源的細(xì)菌[16],甲烷氧化菌素(Mb)是甲烷氧化菌向周圍環(huán)境中釋放的一種銅捕獲小肽,與銅離子結(jié)合時具有高親和力和特異性[17-19]。目前文獻報導(dǎo)的Mb具有能與銅配位的五元雜環(huán)尾基和含有巰基或二硫鍵的頭基[20-21],且配位后具有POD的活性。此外,相較于其他模擬酶Mb具有可以忽略不計的毒性,具有良好實用價值[22]。Xin等[23]研究了Mb-Cu不同配位方式對催化速度的影響,結(jié)果表明該配合物符合生物催化劑的一般規(guī)律,且比天然酶催化劑穩(wěn)定性更高,Mb2-Cu配位形式具有最高的催化能力。
本研究建立和優(yōu)化小麥粉中過氧化鈣的酶-分光光度法,利用CaO2與酸反應(yīng)生成過氧化氫(H2O2),在模擬酶Mb-Cu存在的條件下,催化氧化對苯二酚(Hydroquinone,HQ)生成對苯二醌,從而用分光光度法進行檢測,以期實現(xiàn)定性定量的分析,具體反應(yīng)的方程式如下:
可用于對面粉中CaO2的痕量檢測,為食品監(jiān)督單位提供參考。
甲基彎菌OB3b 清華大學(xué)贈送;甲烷 99.99%,哈爾濱黎明氣體有限公司;甲醇 分析純,國藥集團化學(xué)試劑有限公司;無水乙醇 分析純,天津富宇精細(xì)化工有限公司;硝酸鹽培養(yǎng)基 參照文獻[24]制備;大孔樹脂 美國Supelco公司;五水合硫酸銅、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉 分析純,天津天力化學(xué)試劑有限公司;過氧化鈣 70%,美國Alfa Aesar公司;對苯二酚 分析純,Aladdin化學(xué)試劑公司;濃硫酸 分析純,北京化學(xué)試劑公司;市售面粉 購自當(dāng)?shù)爻?;實驗用?均為二級水。
UV-2550型紫外-可見分光光度計 日本島津公司;FDU-1200型冷凍干燥機 東京理化器械公司;2-16 K型高速冷凍離心機 美國Sigma公司;HL-2S型恒流泵 上海滬西分析儀器廠;組合式紫外檢測器 上海金達公司;5BG型生化發(fā)酵罐 上海保興生物設(shè)備公司;RV8V型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 德國IKA公司。
1.2.1 甲烷氧化菌素的分離與純化 參照文獻[23]的方法,使用甲基彎菌(Methylosinus trichosporium OB3b)為菌種,在NMS培養(yǎng)基中培養(yǎng)5~7 d,得到的發(fā)酵液用離心機(4 ℃,8000 r/min)離心20 min,得到的上清液經(jīng)活化后的Diaion HP-20大孔樹脂的吸附,再用甲醇洗脫,從而得到Mb,通過30 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)后,再經(jīng)過冷凍干燥得到粉末狀Mb粗品放入-30 ℃冰箱中備用。
1.2.2 Mb-Cu的制備 將上述粉末狀Mb配制成濃度為5×10-4mol/L的溶液放入比色皿中,在紫外分光光度計的監(jiān)測下,使用5 μL微量進樣器向比色皿中每隔10 min加入2 μL濃度為5 mmol/L的Cu(Ⅱ),觀察390 nm處的峰,直至峰值不再下降為止,得到Mb-Cu待用。
1.2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)液的配制:稱取一定量過氧化鈣,配制成0.1 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲備液,再加入10 mL濃度為1%的稀硫酸,渦旋混勻5 min,得到標(biāo)準(zhǔn)工作液,避光保存,現(xiàn)用現(xiàn)配。
擬酶溶液的配制:取一只100 mL容量瓶,依次加入Mb-Cu和對苯二酚,用磷酸緩沖溶液進行定容,使Mb-Cu的濃度為3.9×10-6mol/L,對苯二酚的濃度為5×10-4mol/L,上下?lián)u動,使其溶解,放入冰箱冷藏備用。
在標(biāo)準(zhǔn)工作液中分別取0.00、0.20、0.50、1.00、2.00、3.00、4.00 mL,放入50 mL比色管中,再分別加入10 mL擬酶溶液,加水至刻度線,60 ℃恒溫水浴3 min,以過氧化鈣濃度為X軸,以288 nm處的吸光度下降值為Y軸,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.2.4 樣品的測定 準(zhǔn)確稱取1 g面粉,加入10 mL 1%的稀硫酸,渦旋混勻后,加水定容至100 mL,搖勻后轉(zhuǎn)入離心管,以8000 r/min離心5 min,吸取上清液40 mL,再加10 mL擬酶溶液,測定288 nm處吸光度,再于60 ℃恒溫水浴3 min,288 nm處測定吸光度,計算前后差值,與標(biāo)準(zhǔn)曲線對比讀出過氧化鈣的含量。以無添加過氧化鈣的小麥粉作為空白樣品。
1.2.5 實驗條件的選擇 討論了Mb-Cu用量、溫度、pH、反應(yīng)時間對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響。
1.2.5.1 Mb-Cu用量對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響 取10 mL的玻璃小瓶五只,將粉末狀Mb-Cu配制成各種濃度,使其在擬酶試劑中的濃度 分 別 為0.0×10-6、1.3×10-6、2.6×10-6,3.9×10-6、5.2×10-6、6.5×10-6mol/L的溶液,再加入與擬酶試劑等量的過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液,觀察288 nm處吸光度的下降速度,檢驗Mb-Cu的濃度對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響。
1.2.5.2 溫度對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響 取五只離心管,每只加入等量過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液與擬酶試劑溶液,分別在30 、40、50、60、70 ℃的反應(yīng)溫度下反應(yīng)3 min后,測量288 nm處的吸光度的下降值,考察溫度在30~70 ℃之間對反應(yīng)速度的影響。
1.2.5.3 pH對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響 分別試驗pH在1~5時對實驗反應(yīng)速度的影響,采用氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH。取五只10 mL的玻璃小瓶,分別加入等量的過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液與擬酶試劑溶液,用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.1%的氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH,放入60 ℃水浴鍋中水浴3 min后,于288 nm測定吸光度,計算反應(yīng)速度。
1.2.5.4 反應(yīng)時間對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響 取12只離心管,分別加入2mL過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液與2 mL擬酶試劑溶液,采用最佳反應(yīng)溫度(60 ℃),在反應(yīng)時間分別為0、20、40、60、80、100、120、140、160、180、200、220 s時測量288 nm處的吸光度,探究反應(yīng)時間對反應(yīng)體系的影響。
1.2.6 對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的測定 反應(yīng)速度計算公式如下:
式中:v 為 過氧化氫和對苯二酚的反應(yīng)速度(mol/L·s);c1為對苯二酚初始濃度(mol/L);c2為對苯二酚剩余濃度(mol/L);t 為反應(yīng)時間(s)。
1.2.7 精密度和準(zhǔn)確度的測定 采用沒有添加過氧化鈣的面粉,稱取1 g并在其中分別加入不同量(200、400、600 μg/g)的過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)品,按照步驟
1.2.4進行實驗,每一個濃度水平做4組每組6次的平行實驗,計算得出精密度和準(zhǔn)確度。
實驗均重復(fù)4次,采用Origin 8.0和SPSS13.0對實驗數(shù)據(jù)進行處理。
Mb-Cu的結(jié)合過程如圖1,由曲線可以觀察查到,隨著Cu(Ⅱ)的不斷加入,通過紫外-可見分光光度計的監(jiān)測可以發(fā)現(xiàn),在340 nm和390 nm處的吸收峰逐漸下降,由文獻 [23] 可知這說明Cu(Ⅱ)分別與Mb中的4 -羥基- 5 -硫酰咪唑(HTI)和4-硫酰- 5 -羥基咪唑(THI)發(fā)生結(jié)合,390 nm處吸收峰的下降表明Cu(Ⅱ)與THI中的S發(fā)生配位;340 nm處吸收峰變化表明Cu(Ⅱ)與HTI基團中的S發(fā)生了配位。直到340 nm和390 nm處的吸收峰不再下降,配位結(jié)束,Mb與Cu結(jié)合為Mb-Cu。
圖1 Mb-Cu配位的紫外-可見吸收光譜圖Fig.1 UV-visible absorption spectrum of Mb-Cu complex
CaO2與酸反應(yīng)可生成H2O2,利用Mb-Cu模擬酶催化H2O2氧化對苯二酚生成對苯二醌并伴有輕微顏色變化,反應(yīng)機理如圖2所示。
圖2 Mb-Cu催化反應(yīng)機理Fig.2 Mb-Cu catalytic reaction mechanism
取3只50 mL比色管,分別加入0.0、1.0、2.0、3.0、4.0 mL的過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液,再加入10 mL的模擬酶試劑溶液,定容后于60 ℃水浴鍋水浴3 min后進行全光譜掃描,測定結(jié)果如圖3。由圖3可知,隨著過氧化鈣濃度的升高,245 nm處吸收峰逐漸升高,288 nm處吸收峰逐漸下降。由文獻[25]可知,245 nm處的吸收峰為產(chǎn)物對苯二醌的吸收峰,288 nm處為對苯二酚的吸收峰,可利用對苯二酚的消耗量得出過氧化鈣的含量,所以,將采用288 nm為測定波長。
圖3 不同CaO2含量下的紫外-可見吸收光譜圖Fig.3 Ultraviolet-visible absorption spectra at different CaO2 concentrations
2.3.1 Mb-Cu用量的影響 在Mb-Cu濃度在10-6mol/L的條件下[23],將粉末狀Mb-Cu配制成各種濃度,使其在擬酶試劑中的濃度分別為0.0×10-6、1.3×10-6、2.6×10-6、3.9×10-6、5.2×10-6、6.5×10-6mol/L的溶液,檢驗Mb-Cu的濃度對過氧化氫和對苯二酚反應(yīng)速度的影響,結(jié)果如圖4,當(dāng)Mb-Cu濃度在0~3.9×10-6mol/L時,由于模擬酶濃度增加,催化效果增強,所以反應(yīng)速度隨著Mb-Cu濃度的增加而增大,當(dāng)濃度超過3.9×10-6mol/L時,反應(yīng)速度增加緩慢,催化效果達到頂峰,所以采用Mb-Cu的濃度為3.9×10-6mol/L。
圖4 Mb-Cu濃度對反應(yīng)速度的影響Fig.4 Effect of Mb-Cu concentration on reaction rate
2.3.2 溫度對反應(yīng)速度的影響 一般所使用的過氧化物酶為辣根過氧化物酶,是天然酶,酶是一種蛋白質(zhì),強酸、強堿、高溫等外界條件會對催化速度產(chǎn)生巨大影響,一般的催化條件為常溫、常壓、pH在5.0~8.0之間[26]。而模擬酶可通過提高溫度來提高反應(yīng)速度。
取五只離心管,分別加入等量過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液與擬酶試劑溶液,反應(yīng)時間為5 min,考察溫度在30~70 ℃之間對反應(yīng)速度的影響,結(jié)果如圖5,圖5的曲線表明該反應(yīng)的反應(yīng)速度隨溫度的升高而上升,在60 ℃時,反應(yīng)速率增加最快,60 ℃后,反應(yīng)速度依然上升,但上升趨勢不明顯,且溫度過高Mb-Cu可能發(fā)生部分變性,最終導(dǎo)致失活,高溫也易發(fā)生副反應(yīng),所以,實驗選擇的反應(yīng)溫度為60 ℃。
圖5 溫度對反應(yīng)速度的影響Fig.5 Effect of temperature on reaction speed
2.3.3 pH對反應(yīng)速度的影響 pH會影響反應(yīng)物表面的離子狀態(tài)。通常情況下,天然過氧化物酶最佳反應(yīng)pH在5.0~8.0之間,過高或過低都會使其失活[26]。分別試驗pH在1~5時對實驗反應(yīng)速度的影響,采用氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH,在過氧化鈣濃度一定,反應(yīng)溫度為60 ℃時,反應(yīng)3 min,結(jié)果如圖6所示,由圖6可知,反應(yīng)速度隨著pH的升高略有下降,但從整體來看,pH對實驗反應(yīng)速度影響不大,證明甲烷氧化菌素模擬酶對pH環(huán)境要求不高,在pH在1~5時仍保持活性,可省略實驗中用氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH的步驟,相對于天然酶檢測來說,模擬酶的催化簡化了實驗過程。
圖6 pH對反應(yīng)速度的影響Fig.6 Effect of pH on reaction speed
2.3.4 反應(yīng)時間對反應(yīng)體系的影響 在過氧化鈣濃度和酶用量一定時,采用最佳反應(yīng)溫度(60 ℃),在0~220 s中選取12個時間點來探究反應(yīng)時間對對應(yīng)體系的影響,結(jié)果如圖7,可以看出,0~180 s時,288 nm處的吸光度下降較快,180 s后吸光度下降速度減慢,以后幾乎不變,說明已經(jīng)反應(yīng)完全,所以選擇180 s作為反應(yīng)時間。
圖7 反應(yīng)時間對反應(yīng)速度的影響Fig.7 Effect of reaction time on reaction speed
2.3.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 當(dāng)反應(yīng)條件為Mb-Cu濃度為3.9×10-6mol/L、反應(yīng)溫度為60 ℃、反應(yīng)時間為180 s時,按梯度吸取過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)工作液于比色管中,按照1.2.3的操作步驟進行,得到如圖8的標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果表明該體系在吸光度A288的值與過氧化鈣濃度在0.0~8.0 mg/L之間存在線性關(guān)系,決定系數(shù)R2為0.99281。對空白面粉做11組平行實驗,通過計算,可得出標(biāo)準(zhǔn)偏差S=6.49×10-4,從而根據(jù)三倍標(biāo)準(zhǔn)偏差與斜率之比,得出檢出限(LOD)為1.82×10-2mg/L。
圖8 CaO2的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.8 CaO2 standard curve
2.3.6 精密度和準(zhǔn)確度 采用沒有添加過氧化鈣的面粉,稱取1 g并在其中分別加入不同量(200、400、600 μg/g)的過氧化鈣標(biāo)準(zhǔn)品,按照步驟1.2.4進行實驗,每一個濃度水平做4組每組6次的平行實驗,結(jié)果如表1。其平均加標(biāo)回收率為98.2%~100.6%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為0.49%~1.32%,表明本方法用于檢測面粉中的過氧化鈣具有良好的精密度和準(zhǔn)確度。
表1 加標(biāo)回收結(jié)果(n=6)Table 1 Results of spike recovery (n=6)
本文利用CaO2與酸反應(yīng)生成過氧化氫的原理,采用Mb-Cu配合物模擬過氧化物酶催化過氧化氫氧化對苯二酚,建立了一種面粉中過氧化鈣的定量檢測方法。酸堿度調(diào)節(jié)的實驗結(jié)果表明,Mb-Cu模擬酶與天然過氧化物酶不同,pH在檢測中對反應(yīng)速度的影響可忽略不計,不易受環(huán)境酸堿度的影響,從而省去了傳統(tǒng)過氧化物酶法需要調(diào)節(jié)pH的操作步驟,由此降低了檢測時間,提高了檢測效率。此外對其他條件進行了優(yōu)化,成功實現(xiàn)了對面粉中CaO2快速、準(zhǔn)確的測量,此方法抗干擾能力強,操作步驟簡單,可用于對實際樣品的分析。