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    消退素D1通過甲酰肽受體2調(diào)控小膠質(zhì)細胞極化改善大鼠腦缺血/再灌注損傷

    2021-06-17 14:06:30劉玉蓮巫芳華楊開令高宇容
    中國藥理學通報 2021年6期
    關鍵詞:膠質(zhì)抗炎極化

    劉玉蓮,巫芳華,楊開令,周 穎,高宇容,劉 微

    (廣州中醫(yī)藥大學基礎醫(yī)學院,廣東 廣州 510006)

    缺血性腦卒中作為嚴重威脅人類健康的常見病之一,其特點是具有較高的致殘率和致死率,一般臨床上治療采取早期溶栓,但其治療效果仍不理想[1]。炎癥是腦缺血主要的發(fā)病機理之一,主要涉及外周炎癥細胞的浸潤、小膠質(zhì)細胞的活化和炎癥介質(zhì)的過度產(chǎn)生[2]。探索炎癥的機制,尋找有效的治療新靶點,對防治缺血性腦卒中具有重要意義。

    炎性細胞,尤其是小膠質(zhì)細胞,是免疫防御系統(tǒng)抗腦缺血損傷的主要介質(zhì)。腦缺血后,迅速遷移到損傷部位的小膠質(zhì)細胞,會啟動效應分子的釋放和其他免疫細胞的募集[3]。被激活的小膠質(zhì)細胞主要分為M1和M2兩種表型并各自發(fā)揮不同的作用,M1型的小膠質(zhì)細胞通過釋放炎性因子,例如腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細胞介素-1β(interleukin-1β,IL-1β)、一氧化氮合酶(inducible nitric oxide synthase,iNOS),引發(fā)炎癥級聯(lián)反應,加重腦組織損傷[4]。而M2型的小膠質(zhì)細胞釋放抗炎因子轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor -β,TGF-β)、白細胞介素-10(interleukin-10,IL-10)以及精氨酸1(arginase-1,Arg-1)等,促進腦組織的修復[5]。因此,將被激活的小膠質(zhì)細胞從促炎性M1型向抗炎性M2型轉(zhuǎn)變是治療缺血性腦卒中的一個新思路。

    消退素D1(resolvin D1,RvD1)屬于一類新的特異性促分解脂質(zhì)介質(zhì),由二十二碳六烯酸衍生而來的代謝產(chǎn)物,并且能夠限制中性粒細胞的募集或浸潤,抑制炎性因子的產(chǎn)生[6]。甲酰肽受體2(formyl peptide receptor 2,F(xiàn)PR2)也稱為甲酰肽樣受體1或脂氧素A4受體,是一種G蛋白偶聯(lián)受體,在抗炎中起重要作用,其廣泛分布于大腦中,特別是在小膠質(zhì)細胞中表達[7]。研究表明,在局灶性腦損傷后RvD1表達減少,其受體FPR2的表達增加,給予RvD1后減少小膠質(zhì)細胞和星形膠質(zhì)細胞的激活,減輕炎癥損傷,促進功能恢復和神經(jīng)保護[8]。此外,在脂多糖誘導的大鼠內(nèi)毒素性葡萄膜炎模型中,RvD1通過調(diào)節(jié)M1/M2極化減輕炎癥反應[9]。然而,目前在腦缺血/再灌注模型中,RvD1調(diào)控小膠質(zhì)細胞M1/M2極化研究較少。因此,本研究探討RvD1通過FPR2調(diào)控小膠質(zhì)細胞M1/M2極化,從而減輕腦缺血/再灌注后炎癥損傷。

    1 材料與方法

    1.1 動物SPF級SD大鼠,♂,大鼠體質(zhì)量(250-300) g,廣州中醫(yī)藥大學(大學城)實驗動物中心購買,合格證號為SCXK(粵)2013-0034。定期給大鼠添加食物和水,保持動物飼養(yǎng)環(huán)境溫度在20℃-25 ℃,定期給實驗室消毒。本研究經(jīng)廣州中醫(yī)藥大學動物倫理委員會批準,符合中國倫理委員會有關動物研究原則。

    1.2 試劑FPR2抗體(Novus,NLS1878);抑制劑Boc-2(Absin,abs4512);RvD1(Cayman,10012554);2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)(Sigma,T8877);MPO抗體(Abcam,ab9535);Iba1兔抗(Wako,019-10741);Iba-1鼠抗(Santa cruz,sc-32725);CD206抗體(Santa cruz,sc-70585);CD16抗體(BD,553141);RNA快速提取試劑盒(蘇州英澤生物醫(yī)藥科技有限公司,B0004DP);預混型反轉(zhuǎn)錄和qPCR試劑盒(廣州瑞真生物技術有限公司,AG11706、AG11701)。

    1.3 儀器勻漿儀(上海凈信實業(yè)發(fā)展有限公司);低溫高速離心機(力康生物醫(yī)療科技控股有限公司);冰凍切片機(德國Leica公司);激光共聚焦顯微鏡(德國ZESS公司);熒光定量PCR儀(Bio-rad公司);

    1.4 MCAO模型制備根據(jù)文獻[10]參照改良線栓法,術前禁食12 h左右,麻醉后采用仰臥位去固定大鼠,從頸部的正中線切口,將大鼠右側(cè)頸總動脈,頸外動脈和頸內(nèi)動脈鈍性分離。在近心處的頸外動脈剪V型切口,插入頸內(nèi)動脈的線栓約為18-20 mm,會感受到稍微的阻力感,說明線栓已插入到中動脈起始處,缺血2 h后,將插入的線栓拔出并用縫合線縫合傷口,24 h后進行下一步操作。Sham組不進行插入線栓的操作。待大鼠清醒后進行神經(jīng)功能評分,分數(shù)在1-3分為造模成功,可納入實驗組,進行下一步實驗。

    1.5 分組與用藥將大鼠隨機分為Sham組、MCAO組、RvD1組和RvD1+Boc-2組,每組6只。在線栓阻塞大鼠大腦中動脈后立即腹腔注射RvD1(0.4 μg·kg-1)[8];在造模前30 min通過腹腔注射給藥FPR2拮抗劑Boc-2(0.4 mg·kg-1)[11]。給予術后Sham組和MCAO同等體積生理鹽水。

    1.6 大鼠腦梗死體積測定腦缺血后24 h,麻醉大鼠并斷其頸部取腦,將大腦表面的殘留血用PBS溶液洗凈,將大鼠大腦放入模具中,冠狀位切成厚度為2 mm腦片,共6片,迅速將腦片浸入濃度為2%的TTC溶液中,注意避光,將腦組織放在37 ℃孵育箱10 min,需要5 min翻面一次,白色區(qū)域代表梗死,紅色區(qū)域代表未梗死。并拍照保存,然后分析腦梗死體積使用Image-pro-plus 6.0軟件。

    1.7 免疫熒光染色腦缺血后24 h,將麻醉的大鼠剪開腹部,暴露心臟,然后用0.9%NaCl溶液進行灌注,最后再用4%多聚甲醛進行固定,取出腦組織進行脫水,按照厚度為10 μm進行切片。具體步驟:先將切片加入Tris緩沖液(TBS)室溫浸泡30 min,再分別加入TBS/Triton漂洗10 min×3次,山羊血清封閉2 h后,分別加入稀釋后的一抗(FPR2 1 ∶500,鼠抗Iba-1 1 ∶100),(MPO 1 ∶200),(CD16 1 ∶200,CD206 1 ∶100,兔抗Iba-1 1 ∶400);4 ℃孵育過夜,然后將玻片浸泡在TBS溶液10 min,TBS/Triton漂洗10 min×3次,室溫避光孵育二抗2 h;用TBS洗10 min×3次,封片,拍片。

    1.8 實時熒光定量PCR(RT-qPCR)按照RNA快速提取試劑盒提取腦組織的總RNA。采用預混型反轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。根據(jù)預混型qPCR試劑盒的說明書進行操作,加入相應的試劑。PCR反應結(jié)束后確認擴增曲線和熔解曲線,求同一樣本3個復孔的Ct平均值,以GAPDH的Ct值作為內(nèi)參,并采用2-ΔΔCt方法進行分析。引物均由上海生工生物工程有限公司合成,序列見Tab 1。

    Tab 1 Primers used for quantitative real time PCR

    2 結(jié)果

    2.1 腦缺血后24 h FPR2與Iba-1的共定位如Fig 1所示,結(jié)果表明:各組大鼠腦缺血后可見FPR2與不同程度激活的小膠質(zhì)細胞標記物Iba-1共定位表達。與Sham組比較,MCAO組可見被激活的小膠質(zhì)細胞上FPR2的熒光表達增強(P<0.01);與MCAO組比,RvD1干預后進一步增強被激活的小膠質(zhì)細胞上FPR2的熒光表達(P<0.01);但聯(lián)合使用Boc-2后被激活的小膠質(zhì)細胞上FPR2的熒光表達被抑制(P<0.01)。

    Fig 1 Localization of FPR2 and Iba-1 in brain at 24 h post

    2.2 RvD1對腦缺血后24 h腦梗死體積變化的影響結(jié)果表明:與Sham組比,MCAO組的大鼠腦梗死區(qū)域增加明顯(P<0.05);經(jīng)過RvD1干預后大鼠的腦梗死體積比MCAO組降低(P<0.05);與RvD1組比,RvD1與Boc-2聯(lián)用使大鼠腦梗死體積有增加趨勢(P<0.05),見Fig 2。

    Fig 2 Effect of RvD1 on volume change of cerebral infarction 24 h after

    2.3 RvD1對腦缺血后24 h MPO表達的影響如Fig 3所示,與Sham組比,MCAO組的MPO表達增加(P<0.05);與MCAO組比,給予RvD1后MPO表達下降(P<0.05);而聯(lián)合使用Boc-2后逆轉(zhuǎn)了這種效應,且差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

    Fig 3 Effect of RvD1 on MPO expression after

    2.4 RvD1對腦缺血后24 h小膠質(zhì)細胞從M1型向M2型轉(zhuǎn)變的影響如Fig 4所示,與Sham組比,MCAO組CD16+/Iba-1+和CD206+/Iba-1+細胞的數(shù)量增加明顯(P<0.01);與MCAO組比,RvD1組CD16+/Iba-1+細胞數(shù)量的表達明顯降低(P<0.01),而CD206+/Iba-1+細胞數(shù)量的表達增加(P<0.01);與RvD1組比,RvD1+Boc-2組CD16+/Iba-1+細胞數(shù)量的表達有所增加,而CD206+/Iba-1+細胞數(shù)量的表達受到抑制,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

    2.5 RvD1對腦缺血后24 h小膠質(zhì)細胞M1/M2相關因子mRNA表達的影響與Sham組比,MCAO組M1型TNF-α、iNOS、IL-1β和M2型TGF-β1、IL-10、Arg-1 mRNA的表達增加(P<0.05);與MCAO組比,RvD1組M1型TNF-α、iNOS、IL-1β mRNA的表達下降明顯,而M2型TGF-β1、IL-10、Arg-1mRNA表達增加更為明顯(P<0.05);與RvD1組相比,RvD1與Boc-2聯(lián)合使用后M1型TNF-α、iNOS、IL-1β mRNA的表達有所增加,而M2型TGF-β1、IL-10、Arg-1 mRNA的表達受到抑制(P<0.05),見Fig 5。

    Fig 5 Effect of RvD1 on expression of M1/M2

    3 討論

    腦缺血的發(fā)病機制非常復雜,其中炎癥在腦缺血/再灌注損傷中發(fā)揮著重要作用。FPR2在腦內(nèi)小膠質(zhì)細胞和星形膠質(zhì)細胞中高度表達[7, 12],RvD1是由ω-3脂肪酸衍生的內(nèi)源性脂質(zhì)分子,以高親和力激活FPR2并發(fā)出促分解反應的信號[13]。RvD1與FPR2結(jié)合后可以減輕炎癥損傷,但關于RvD1是否可減輕腦缺血后的炎癥損傷,目前并沒有報道。

    我們的實驗結(jié)果表明,腦缺血后腦組織損傷加重,MPO表達增多,表明大鼠腦缺血后出現(xiàn)炎癥反應。具有抗炎作用的FPR2蛋白表達增加有利于減輕炎癥反應,提示FPR2在缺血性腦損傷中具有內(nèi)源性保護作用。另外,本研究發(fā)現(xiàn)外源性RvD1進一步增加FPR2的表達,與之類似的是,有研究報道外源性抗炎脂質(zhì)介質(zhì)如脂氧素A4和RvD1可以增加FPR2表達,促使炎癥消退并恢復穩(wěn)態(tài)[7, 14],但具體機制還需日后進一步探討。我們的實驗結(jié)果顯示,腦缺血后使用RvD1可減少腦梗死體積和MPO表達,同時免疫熒光雙染表明FPR2在小膠質(zhì)細胞中表達,這提示RvD1很可能通過調(diào)控小膠質(zhì)細胞減輕炎癥損傷。

    小膠質(zhì)細胞靜息狀態(tài)下為分支狀,可有效監(jiān)測微環(huán)境并及時清除凋亡神經(jīng)元,讓大腦處于穩(wěn)定狀態(tài)[15]。腦缺血后小膠質(zhì)細胞迅速被激活,其特征是肥大的形態(tài)和增厚的突起,呈阿米巴樣,并遷移到損傷部位。其中M1型小膠質(zhì)細胞分泌大量炎性介質(zhì),加劇腦組織損傷,而M2型小膠質(zhì)細胞通過釋放具有修復性的抗炎因子,發(fā)揮腦保護作用[5]。肝缺血/再灌注模型中,RvD1已被證實通過FPR2促進小膠質(zhì)細胞向M2型轉(zhuǎn)化[16],提示RvD1很可能對缺血性腦卒中后小膠質(zhì)細胞的極性轉(zhuǎn)換發(fā)揮作用。在早期腦損傷模型中,Iba-1陽性細胞數(shù)明顯增多,M1型炎癥因子表達增多,而給予RvD1后M2型抗炎因子增多,炎癥因子表達受到抑制[6]。另外,RvD1可促進BV2細胞向M2型轉(zhuǎn)化[17]。本研究將Iba-1分別與M1型標志物CD16、M2型標志物CD206進行免疫熒光雙染,發(fā)現(xiàn)腦缺血后CD16+/Iba-1+細胞數(shù)比CD206+/Iba-1+細胞數(shù)增加更為顯著,提示腦缺血后小膠質(zhì)細胞激活向M1型轉(zhuǎn)化。而RvD1治療后CD16+/Iba-1+細胞數(shù)減少和CD206+/Iba-1+細胞數(shù)的增加,表明RvD1可促進小膠質(zhì)細胞向M2型方向極化。RT-qPCR結(jié)果進一步顯示,RvD1干預后抑制M1型小膠質(zhì)細胞的炎癥介質(zhì)TNF-α、iNOS、IL-1β mRNA的表達,促進M2型小膠質(zhì)細胞的抗炎介質(zhì)Arg-1、IL-10、TGF-β1 mRNA的表達。并且有研究表明,外源性RvD1減少小膠質(zhì)細胞炎癥因子表達,增加抗炎因子表達,且基因水平和蛋白水平表達一致[6]。上述結(jié)果提示RvD1干預后促進小膠質(zhì)細胞從M1表型向M2表型極化,從而減輕炎癥損傷。

    此外,在肝缺血模型中使用拮抗劑Boc-2會降低FPR2表達,進而抑制RvD1對小膠質(zhì)細胞M2極化的作用[16]。為了進一步探討FPR2在RvD1促進小膠質(zhì)細胞M1/M2極化中的作用,本研究采用FPR2拮抗劑Boc-2與RvD1聯(lián)合給藥進行干預,發(fā)現(xiàn)M1型標記物和炎性介質(zhì)表達有增加的趨勢,而M2型標記物和抗炎因子的表達都受到抑制,這說明Boc-2阻斷FPR2的作用,使RvD1對大鼠腦缺血損傷的保護作用受到抑制。這些結(jié)果表明RvD1促進小膠質(zhì)細胞M1/M2極化是通過激活FPR2實現(xiàn)的。

    綜上所述,RvD1通過激活FPR2促進小膠質(zhì)細胞從M1型向M2型轉(zhuǎn)化,減輕大鼠腦缺血/再灌注后的炎癥損傷,從而發(fā)揮腦的保護作用。

    ( 本實驗在廣州中醫(yī)藥大學中西醫(yī)結(jié)合基礎研究中心完成,感謝所有老師及同學們的支持與幫助! )

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