蔡春波,劉 敏,楊 陽,張萬鋒,高鵬飛,曹果清,李步高,郭曉紅
(山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,太谷 030801)
肌內(nèi)脂肪含量是評價豬肉品質(zhì)的一個重要指標(biāo),而豬的背脂厚度與肌內(nèi)脂肪含量呈明顯的正相關(guān),兩者都與脂肪酸的合成相關(guān)[1]。此外,脂肪組織還能分泌多種蛋白類激素,例如瘦素和脂聯(lián)素,通過組織液滲透和血液循環(huán)等方式運輸?shù)狡渌M織中,調(diào)控機體的新陳代謝[2]。脂肪組織的生成過程主要包括脂肪細胞數(shù)量的增多和甘油三酯的積累而導(dǎo)致的脂肪細胞的體積增大。篩選調(diào)控脂肪細胞增殖和成脂分化的關(guān)鍵因子對提高肌內(nèi)脂肪含量和改良豬肉品質(zhì)具有重要的意義。
microRNA(miRNA)是一類長約22 nt,具有調(diào)控基因表達功能的單鏈內(nèi)源性非編碼RNA。miRNA基因常以單拷貝、多拷貝或基因簇的形式存在于生物基因組中,廣泛存在真核和原核生物體內(nèi)。miRNA可以通過與互補的mRNA序列特異性地結(jié)合,從而降解mRNA或者抑制mRNA的翻譯,進而參與機體相關(guān)生物學(xué)過程的調(diào)節(jié)。miRNA可通過調(diào)控靶基因的表達從而調(diào)控細胞的增殖、遷移[3-7]和分化[8-13]。miRNA對哺乳動物卵泡發(fā)育、卵母細胞成熟[14]和奶牛乳腺發(fā)育、乳脂合成[15]都具有重要的調(diào)控作用。miRNA對脂肪組織形成過程也具有重要的調(diào)控作用。研究表明,miR-331-3p能夠抑制前體脂肪細胞的增殖,而且可以通過靶向二氫硫辛酰胺琥珀酰轉(zhuǎn)移酶(dihydrolipoamide succinyltransferase,DLST)促進萊蕪豬原代前體脂肪細胞成脂分化[16];miR-125b-5p能夠抑制3T3-L1細胞的增殖,促進其成脂分化[17];miR-204-5p可以通過調(diào)節(jié)B淋巴細胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,BCL-2)的表達,抑制前體脂肪細胞的增殖并誘導(dǎo)其凋亡,同時也可以通過靶向和抑制Kruppel樣轉(zhuǎn)錄因子3(Kruppel-like factor 3,KLF3)的表達,促進前體脂肪細胞的分化[18]。
miR-186-5p最先在小鼠中被發(fā)現(xiàn),其種子序列在各物種間高度保守,它的主要功能是抑制癌細胞的增殖,如骨肉瘤[19]、大腸癌[20]、膽管癌[21]、神經(jīng)母細胞瘤[22]、肺腺癌[23]。另外,miR-186-5p能夠抑制骨橋蛋白(osteopontin,OPN)的表達,進而抑制骨髓間充質(zhì)干細胞成骨分化[24];miR-186-5p能夠抑制myogenin基因的表達,從而抑制C2C12細胞的成肌分化[25-26];在3T3-L1細胞中,miR-186-5p可抑制細胞增殖,而且還可以直接靶向結(jié)合無翅型MMTV整合位點家族成員5A(wingless type MMTV integration site family member 5A,WNT5A)和促分裂原活化蛋白激酶1(mitogen-activated protein kinase 1,Mapk1),促進細胞成脂分化[27]。目前,關(guān)于miR-186-5p對豬前體脂肪細胞的調(diào)控作用還未見報道。本研究以馬身豬原代前體脂肪細胞為細胞模型,探究miR-186-5p對豬前體脂肪細胞增殖、遷移和成脂分化的調(diào)控作用和機制,進一步完善miRNA調(diào)控豬脂肪細胞分化的分子網(wǎng)絡(luò),為改良豬肉品質(zhì)提供新的分子靶標(biāo)。
DMEM培養(yǎng)基(Hyclone,美國),胎牛血清FBS(Gibco,美國),油紅O、地塞米松(DEX)、3-異丁基-1-甲基黃嘌呤(IBMX)和羅格列酮(RSG)(中國,索萊寶),TRIZOL?Reagent(Life Technologies,美國),PrimeScript?RT Master Mix(TaKaRa,日本),miRNA 1 st Strand cDNA Synthesis Kit (by stem-loop)、AceQ?Universal SYBR qPCR Master Mix和miRNA Universal SYBR qPCR Master Mix(諾唯贊,中國),miR-186-5p mimics、inhibitor、mimics NC和inhibitor NC委托上海吉瑪公司合成,CCK8試劑盒(博士德生物,中國),psiCHECK-2載體和Dual-Luciferase?Reporter Assay System(Promega,美國)。
核酸蛋白測定儀(ND-1000,美國)、實時熒光定量PCR儀(7500 Real Time,美國)、全功能微孔板檢測儀(SynerGyH1,美國)、細胞成像系統(tǒng)(EVOS FL Auto,美國)等。
1.3.1 豬原代前體脂肪細胞的分離培養(yǎng) 采集7日齡健康馬身豬公豬的頸部皮下脂肪組織,PBS清洗3次,剪碎后轉(zhuǎn)移至Ⅰ型膠原酶溶液(1 g·L-1)中,37 ℃振蕩消化60 min,加入完全培養(yǎng)基(DMEM+10% FBS+1%雙抗)終止消化;混合液經(jīng)過400目細胞篩過濾,濾液離心后棄上清液,然后加入紅細胞裂解液重懸細胞,室溫下靜置5 min,再次離心棄上清液,最后加入完全培養(yǎng)基重懸細胞,置入培養(yǎng)箱中培養(yǎng);24 h后加入PBS緩沖液清洗細胞,然后加入完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng),每2 d換新鮮的完全培養(yǎng)基。
1.3.2 豬原代前體脂肪細胞轉(zhuǎn)染 豬原代前體脂肪細胞的匯合度達到60%時,進行轉(zhuǎn)染試驗。首先將miR-186-5p的mimics (mimics NC、inhibitor和inhibitor NC的轉(zhuǎn)染方法與mimics一致)稀釋成終濃度為100 nmol·μL-1的工作液;20 μL mimics工作液中加入500 μL的DMEM培養(yǎng)基,混勻后靜置5 min;10 μL的LipofectamineTM2000轉(zhuǎn)染試劑中加入500 μL的DMEM培養(yǎng)基,混勻后靜置5 min;將上述兩種溶液混合后,室溫靜置20 min,加入3 mL的DMEM培養(yǎng)基,混勻后加入到鋪有豬原代前體脂肪細胞的6孔板中,然后放置在培養(yǎng)箱中孵育,6 h后更換為完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
1.3.3 CCK8試驗 將轉(zhuǎn)染后的豬原代前體脂肪細胞接種至96孔細胞板中培養(yǎng),分別培養(yǎng)0、24、48和72 h后加入10 μL的CCK8試劑,輕輕搖晃混勻,37 ℃靜置孵育1 h,酶標(biāo)儀檢測450 nm波長下的OD值。
1.3.4 劃痕試驗 將轉(zhuǎn)染后的豬原代前體脂肪細胞接種至96孔細胞板中,當(dāng)細胞的匯合度達到100%后,在培養(yǎng)孔中輕輕劃出痕跡,再將細胞置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng),0、24、36和72 h后觀察劃痕處細胞的生長狀態(tài)。
1.3.5 RNA提取及cDNA合成 按RNA提取試劑盒的步驟提取豬原代前體脂肪細胞的總RNA。cDNA的合成分為兩步:第一步,總RNA中加入DNA去除劑,再加入雙蒸水至10 μL,42 ℃條件下反應(yīng)2 min;第二步,混合液中加入反轉(zhuǎn)錄酶,通用引物和緩沖液,終體積為20 μL,37 ℃反應(yīng)15 min,85 ℃反應(yīng)5 s,保存于-20 ℃冰箱。
1.3.6 miRNA的反轉(zhuǎn)錄 按照miRNA 1 st Strand cDNA Synthesis Kit (by stem-loop)試劑盒的步驟對miRNA進行反轉(zhuǎn)錄。RNA溶液中加入DNA去除劑,加雙蒸水至10 μL,42 ℃反應(yīng)2 min;向混合液中加入反轉(zhuǎn)錄酶、緩沖液、miRNA 和U6的反轉(zhuǎn)錄引物,終體積為20 μL,25 ℃ 反應(yīng)5 min,55 ℃反應(yīng)15 min,85 ℃反應(yīng)5 min,產(chǎn)物保存于-20 ℃ 冰箱。
1.3.7 豬原代前體脂肪細胞成脂分化和油紅O染色 當(dāng)豬原代前體脂肪細胞的匯合度達到90%時,更換為成脂誘導(dǎo)分化培養(yǎng)基(完全培養(yǎng)基+5 μmol·L-1INS + 1 μmol·L-1DEX+0.5 mmol·L-1IBMX + 1 μmol·L-1RSG),每2 d 換液;誘導(dǎo)分化4 d后,更換維持成脂分化培養(yǎng)基(完全培養(yǎng)基 + 5 μmol·L-1INS),每2 d換液;維持成脂分化4 d后,進行油紅O染色。細胞首先經(jīng)過4%多聚甲醛固定45 min,PBS清洗3次,油紅O工作液(飽和油紅O∶蒸餾水=3∶2)染色30 min,蒸餾水沖洗干凈,在顯微鏡下觀察并拍照。然后加入異丙醇萃取細胞中的甘油三酯(triglyceride,TG),酶標(biāo)儀測量波長為510 nm處的OD值。
1.3.8 SYBR熒光定量qPCR qPCR的反應(yīng)體系為10 μL:包括2×SYBR Mixture 5 μL,上游引物和下游引物各0.3 μL,模板 cDNA 1 μL,RNase-free H2O 3.4 μL。qPCR反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃變性10 s,60 ℃退火及延伸30 s,40個循環(huán)。引物序列見表1,18S和U6為內(nèi)參基因。
表1 引物序列Table 1 Primer sequences
1.3.9 雙熒光素酶報告試驗 首先構(gòu)建2種雙熒光素酶報告載體:SIRT2 3′UTR野生型載體(SIRT2-Wt-psiCHECK-2)和SIRT2 3′UTR突變型載體(SIRT2-Mut-psiCHECK-2)。然后分為4組進行293T細胞共轉(zhuǎn)染試驗:SIRT2-Wt-psiCHECK-2 + mimics、SIRT2-Wt-psiCHECK-2 + mimics NC、SIRT2-Wt-psiCHECK-2 + inhibitor、SIRT2-Mut-psiCHECK-2+mimics。4組共轉(zhuǎn)染293T細胞的方法一樣,以SIRT2-Wt-psiCHECK-2 + mimics為例,簡述轉(zhuǎn)染方法。293T細胞的匯合度達到70%時進行轉(zhuǎn)染試驗;50 μL DMEM中加入2 μL mimics(100 nmol·μL-1)和1 μL SIRT2-Wt-psiCHECK-2(500 ng·μL-1)重組質(zhì)粒,混勻后靜置5 min;另取50 μL DMEM中加入1.5 μL LipofectamineTM2000溶液,混勻后靜置5 min;將上述兩種溶液混合,混勻后靜置20 min;293T細胞的培養(yǎng)基更換為DMEM,然后加入上述混合溶液,混勻后置于培養(yǎng)箱中孵育6 h,然后更換為完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng);每組設(shè)3個重復(fù),24 h后檢測熒光素酶的活性。首先吸出293T細胞中培養(yǎng)基,PBS洗滌3次,加入100 μL細胞裂解緩沖液,吹打細胞至完全裂解,收集樣品;然后將熒光素酶底物與緩沖液混合制成熒光素酶試劑,stop&Glo緩沖液與stop&Glo底物混合制成stop&Glo試劑;最后96孔 板中加入20 μL樣品和100 μL熒光素酶試劑,混勻后測量熒光值,再加入100 μL stop&Glo試劑,混勻后再次測量熒光值。
1.3.10 數(shù)據(jù)分析 試驗均設(shè)置3個重復(fù),試驗數(shù)據(jù)均以“Mean ± SD”表示。數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism7軟件進行作圖分析,兩組比較采用獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析(One-way ANOVA),并進行Duncan’s多重比較,以P<0.05作為差異顯著性的界值,P<0.01作為差異極顯著性的界值。
豬原代前體脂肪細胞分為4組,分別轉(zhuǎn)染miR-186-5p的mimics、mimics NC、inhibitor和inhibitor NC,通過CCK8試驗檢測各組細胞的增殖效果,qPCR檢測細胞增殖相關(guān)基因的表達。與轉(zhuǎn)染mimics NC組相比,轉(zhuǎn)染miR-186-5p mimics組細胞中miR-186-5p的表達量極顯著升高(P<0.01,圖1A),24、48和72 h的細胞數(shù)量都極顯著降低(P<0.01,圖1B),細胞增殖相關(guān)基因PCNA和CDK4的表達量也極顯著降低(P<0.01,圖1C)。與inhibitor NC組相比,轉(zhuǎn)染miR-186-5p inhibitor組細胞中miR-186-5p的表達量極顯著降低(P<0.01,圖1D),24、48和72 h的細胞數(shù)量都顯著增加(P<0.05,圖1B),細胞增殖相關(guān)基因PCNA和CDK4的表達量也極顯著升高(P<0.01,圖1C)。結(jié)果說明,miR-186-5p可以抑制豬原代前體脂肪細胞增殖。
對轉(zhuǎn)染后的4組豬原代前體脂肪細胞進行劃痕試驗,通過觀察劃痕中長滿細胞所需要的時間,檢測每組細胞的增殖效果。轉(zhuǎn)染miR-186-5p mimics組細胞培養(yǎng)72 h后,劃痕處仍然具有明顯的空隙(圖2A);而轉(zhuǎn)染mimics NC組細胞培養(yǎng)36 h后,細胞基本鋪滿整個劃痕(圖2B)。轉(zhuǎn)染miR-186-5p inhibitor組細胞培養(yǎng)36 h后,細胞基本鋪滿整個劃痕(圖2C);而轉(zhuǎn)染inhibitor NC組細胞培養(yǎng)72 h后,劃痕處仍然具有明顯的空隙(圖2D)。結(jié)果說明,miR-186-5p可以抑制豬原代前體脂肪細胞的增殖。
對轉(zhuǎn)染后的4組豬原代前體脂肪細胞進行成脂誘導(dǎo)分化,然后通過油紅O染色和qPCR試驗檢測各組細胞的成脂分化狀態(tài)。與轉(zhuǎn)染mimics NC組相比,轉(zhuǎn)染miR-186-5p mimics組細胞中miR-186-5p的表達量極顯著升高(P<0.01,圖3A),成脂分化相關(guān)基因PPARγ、SREBF1、C/EBPβ、FABP4和LPL的表達量都極顯著升高(P<0.01,圖3B),脂滴數(shù)量明顯增加(圖3C),甘油三酯含量也極顯著增加(P<0.01,圖4D)。結(jié)果說明,miR-186-5p mimics可以促進豬原代前體脂肪細胞成脂分化。
與轉(zhuǎn)染inhibitor NC組細胞相比較,轉(zhuǎn)染miR-186-5p inhibitor組細胞的miR-186-5p的表達量極顯著降低(P<0.01,圖4A),成脂分化相關(guān)基因PPARγ、SREBF1、C/EBPβ、FABP4和LPL的表達量都極顯著降低(P<0.01,圖4B),脂滴數(shù)量明顯減少(圖4C),甘油三酯含量也顯著降低(P<0.05,圖4D)。結(jié)果說明,miR-186-5p inhibitor可以抑制豬原代前體脂肪細胞成脂分化。
通過軟件預(yù)測發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以與SIRT2基因的3′UTR序列反向互補結(jié)合(圖5A),且miR-186-5p和SIRT2基因在豬原代前體脂肪細胞誘導(dǎo)成脂分化過程中表達趨勢相反(圖5B和5C)。豬原代前體脂肪細胞中過表達miR-186-5p后,SIRT2的表達量極顯著降低(P<0.01,圖5D);抑制miR-186-5p后,SIRT2的表達量極顯著的升高(P<0.01,圖5E)。為進一步驗證SIRT2與miR-186-5p的靶向關(guān)系,進行了雙熒光素酶報告試驗。檢測結(jié)果顯示(圖5F),與共轉(zhuǎn)染mimics NC + SIRT2-Wt-psiCHECK-2野生型載體組和共轉(zhuǎn)染inhibitor + SIRT2-Wt-psiCHECK-2野生型載體組細胞相比,共轉(zhuǎn)染mimics + SIRT2-Wt-psiCHECK-2野生型載體組的293T細胞中熒光素酶的活性極顯著降低(P<0.01),說明miR-186-5p可以靶向結(jié)合SIRT2 3′UTR序列,抑制SIRT2基因的表達;而且與共轉(zhuǎn)染mimics NC + SIRT2-Wt-psiCHECK-2野生型載體組細胞相比,共轉(zhuǎn)染mimics + SIRT2-Mut-psiCHECK-2野生型載體組的293T細胞中熒光素酶的活性沒有明顯變化,說明SIRT2 3′UTR序列的突變消除了miR-186-5p對SIRT2基因表達的抑制作用,進一步說明miR-186-5p可以靶向結(jié)合SIRT2 3′UTR序列,抑制SIRT2基因的表達。
A.mimics轉(zhuǎn)染效率;B.轉(zhuǎn)染mimics后CCK8結(jié)果;C.轉(zhuǎn)染mimics后PCNA、CDK4基因的表達量;D.inhibitor轉(zhuǎn)染效率;E.轉(zhuǎn)染inhibitor后CCK8結(jié)果;F.轉(zhuǎn)染inhibitor后PCNA、CDK4基因的表達量。*.P<0.05,**.P<0.01,下同A.Mimics transfection efficiency;B.CCK8 results after mimics transfection;C.The expression of PCNA and CDK4 genes after mimics transfection;D.Inhibitor transfection efficiency;E.CCK8 results after inhibitor transfection;F.The expression of PCNA and CDK4 genes after inhibitor transfection;*.P<0.05,**.P<0.01,the same as below圖1 miR-186-5p對豬原代前體脂肪細胞增殖的影響Fig.1 Effects of miR-186-5p on proliferation of porcine primary preadipocytes
A.轉(zhuǎn)染mimics;B.轉(zhuǎn)染mimics NC;C.轉(zhuǎn)染inhibitor;D.轉(zhuǎn)染inhibitor NCA.Transfected mimics;B.Transfected mimics NC;C.Transfected inhibitor;D.Transfected inhibitor NC圖2 劃痕試驗的結(jié)果(50×)Fig.2 The results of scratch test (50×)
A.mimics轉(zhuǎn)染效率;B.成脂相關(guān)基因的表達量;C.油紅O染色結(jié)果(50 ×);D.異丙醇萃取結(jié)果A.Mimics transfection efficiency;B.The expression of genes related to adipogenesis;C.Oil red O staining results (50 ×);D.Isopropanol extraction results圖3 miR-186-5p mimics促進豬原代前體脂肪細胞成脂分化Fig.3 miR-186-5p mimics promote adipogenic differentiation of porcine primary preadipocytes
A.inhibitor轉(zhuǎn)染效率;B.成脂相關(guān)基因的表達量;C.油紅O染色結(jié)果(50 ×);D.異丙醇萃取結(jié)果A.Inhibitor transfection efficiency;B.The expression of genes related to adipogenesis;C.Oil red O staining results (50 ×);D.Isopropanol extraction results圖4 miR-186-5p inhibitor抑制豬原代前體脂肪細胞成脂分化Fig.4 miR-186-5p inhibitor inhibit adipogenic differentiation of porcine primary preadipocytes
A.SIRT2 3′UTR的結(jié)合位點及突變位點;B、C.豬原代前體脂肪細胞成脂分化過程中miR-186-5p與SIRT2的表達量;D、E.過表達和抑制miR-186-5p時SIRT2的表達量;F.雙熒光素酶報告試驗結(jié)果。標(biāo)注不同大寫字母表示差異極顯著(P<0.01),標(biāo)注不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)A.The binding site and mutation site of SIRT2 3′UTR;B,C.The expression of miR-186-5p and SIRT2 during adipogenic differentiation of porcine primary preadipocytes;D,E.The expression of SIRT2 after miR-186-5p overexpression and inhibition;F.The result of dual-luciferase reporter assay.Different capital letters indicate very significant difference (P<0.01) and different lowercase letters indicate significant difference (P<0.05)圖5 miR-186-5p靶基因的檢測Fig.5 Detection of miR-186-5p target gene
miRNA的長度約22 nt,屬于單鏈內(nèi)源性非編碼RNA。miRNA序列較短,很容易通過化學(xué)合成的方式獲得。構(gòu)建特異性的miRNA載體和化學(xué)合成miRNA序列,然后轉(zhuǎn)染到細胞中,都可以特異性增強或抑制內(nèi)源性miRNA的表達。由于miRNA的序列較短,化學(xué)合成miRNA的成本較低,而且短序列的轉(zhuǎn)染效率更高,操作也更加簡單,減少了構(gòu)建載體的步驟,因此,通過轉(zhuǎn)染化學(xué)合成的miRNA,增強或抑制內(nèi)源miRNA的表達,成為miRNA功能研究的主要方法。目前,化學(xué)合成的miRNA主要分為4種,分別是mimics、inhibitor、agomir和antagomir。mimics是化學(xué)合成的成熟雙鏈miRNA,是miRNA的模擬物,能夠增強內(nèi)源miRNA的調(diào)控作用。agomir是經(jīng)過特殊標(biāo)記和化學(xué)修飾的雙鏈小RNA,屬于miRNA激動劑,通過模擬內(nèi)源性miRNA來調(diào)節(jié)靶基因的生物學(xué)功能,作用效果持續(xù)時間長。inhibitor是化學(xué)修飾的成熟miRNA互補單鏈,屬于miRNA抑制物,通過特異地靶向miRNA分子削弱內(nèi)源miRNA的調(diào)控作用。antagomir是經(jīng)過特殊標(biāo)記和化學(xué)修飾的miRNA拮抗劑,特異性削弱內(nèi)源miRNA的調(diào)控作用,具有更高的穩(wěn)定性,作用效果持續(xù)時間長。agomir和antagomir都經(jīng)過特殊化學(xué)修飾,雖然其作用效果更強,持續(xù)時間更久,但是其價格也較為昂貴,主要用于活體動物試驗。本研究探討miR-186-5p對豬原代脂肪前體細胞的調(diào)控作用,并沒有在活體水平上研究其功能,所以采用miR-186-5p mimics和inhibitor。
miR-186-5p的主要功能是抑制癌細胞的增殖、遷移和侵襲。Zhu等[22]研究發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以通過靶向抑制神經(jīng)母細胞瘤中驅(qū)動蛋白5(kinesin-5,EG5)的表達,抑制腫瘤細胞的增殖。Feng等[23]發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以通過靶向抑制磷脂酶和張力蛋白同源物(phosphatase and tensin homolog,PTEN)的表達促進肺腺癌細胞的增殖、遷移和侵襲。Cao等[28]發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以抑制轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白β樣1X 連鎖受體1(transducin β like 1X-linked receptor 1,TBL1XR1)的表達,抑制骨肉瘤細胞的遷移和侵襲。這些研究說明,在不同的癌細胞中,miR-186-5p對癌細胞的調(diào)控作用并不一致。miR-186-5p也可以抑制綿羊黑色素細胞的增殖和遷移,減少黑色素的沉積[29]。豬屬于脂肪沉積型動物,脂肪含量非常高。豬脂肪組織形成過程中,細胞增殖發(fā)揮著重要的作用,決定著成熟脂肪細胞的數(shù)量;而miR-186-5p對癌細胞的增殖和遷移過程具有重要的調(diào)控作用;因此,猜測miR-186-5p可能會通過調(diào)節(jié)豬前體脂肪細胞的增殖過程來調(diào)控成熟脂肪細胞的數(shù)量,進而最終影響豬的脂肪沉積。目前,關(guān)于miR-186-5p對豬脂肪沉積調(diào)控作用的研究還未見報道。因此,本研究以馬身豬原代前體脂肪細胞為細胞模型,探討miR-186-5p對豬前體脂肪細胞增殖和成脂分化的調(diào)控作用。本研究發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以抑制馬身豬原代前體脂肪細胞的增殖,促進其成脂分化。
miRNAs的主要作用方式是通過調(diào)控靶基因的表達,實現(xiàn)其對機體的調(diào)控。本研究通過軟件預(yù)測SIRT2為miR-186-5p的靶基因。SIRT2是與酵母的沉默信息調(diào)節(jié)因子2(silent information regulator 2,SIR2)同源的去乙?;福瑢儆趕irtuin蛋白家族成員,在脂肪細胞中大量表達[30]。SIRT2主要定位于細胞質(zhì),但在有絲分裂過程中可以從細胞質(zhì)中轉(zhuǎn)移到細胞核[31]。SIRT2能參與調(diào)節(jié)多種生物過程,包括細胞周期、卵泡發(fā)育、卵母細胞成熟、DNA修復(fù)、自噬等過程[32-34]。Jing等[35]發(fā)現(xiàn),3T3-L1細胞中敲除SIRT2基因,叉頭框轉(zhuǎn)錄因子O1 (forkhead box O1,F(xiàn)oxO1)的乙?;土姿峄蕉硷@著升高,導(dǎo)致細胞核中的FoxO1轉(zhuǎn)移到細胞質(zhì)中,減弱了FoxO1對PPARγ的抑制作用,從而促進細胞成脂分化。Wang和Tong[36]也發(fā)現(xiàn),SIRT2可以通過抑制FoxO1的乙?;?,增強FoxO1對PPARγ的抑制作用,從而抑制3T3-L1細胞的成脂分化。劉炳婷等[37]發(fā)現(xiàn),在豬原代前體脂肪細胞中過表達SIRT2可以抑制其成脂分化。本研究也發(fā)現(xiàn),miR-186-5p可以靶向結(jié)合SIRT2的3′UTR序列,抑制SIRT2的表達,促進馬身豬原代前體脂肪細胞的成脂分化。因此,miR-186-5p可以通過靶向抑制SIRT2的表達,增強FoxO1的乙酰化水平,促進PPARγ的表達,促進馬身豬原代前體脂肪細胞成脂分化。
本研究結(jié)果顯示,miR-186-5p可以靶向結(jié)合SIRT2的3′UTR序列,降低SIRT2的表達,抑制馬身豬原代前體脂肪細胞的增殖,促進其成脂分化。