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    外源施加生長素吲哚-3乙酸對丹參根系形態(tài)和有效成分積累的影響

    2021-05-27 11:57:44鄒海燕劉麗芬楊春洪昝雄云王幼平張順倉
    中草藥 2021年10期
    關(guān)鍵詞:側(cè)根丹參酮酚酸

    鄒海燕,劉麗芬,楊春洪,昝雄云,王幼平,張順倉

    揚州大學生物科學與技術(shù)學院,江蘇 揚州 225009

    丹參Salvia miltiorrhizaBge.是唇形科鼠尾草屬植物,為我國傳統(tǒng)中藥材之一,其有效成分包括水溶性的酚酸類成分和脂溶性的丹參酮類成分,主要用于治療心血管系統(tǒng)疾病[1-2],具有抑菌、抗炎、保護肝臟[3-4]、抗腫瘤[5-6]等作用。丹參是以根莖入藥的中藥材,根系形態(tài)和有效成分含量是影響藥材產(chǎn)量和品質(zhì)的重要因素。目前丹參次生代謝調(diào)控方面的研究已取得許多突破性的進展[7],但其根系發(fā)育和次生代謝有無關(guān)聯(lián)性,2個生理過程對同一外源誘導因子的不同響應目前鮮有報道。

    生長素是最早被發(fā)現(xiàn)的植物內(nèi)源激素,主要的活性形式是吲哚-3乙酸(indole-3-acetic acid,IAA),在植物種子休眠、細胞的伸長、植物向性及生長發(fā)育等多個生理過程中發(fā)揮作用[8-9]。近年來的研究表明,生長素是影響植物側(cè)根發(fā)育的主要植物激素之一,參與了從植物側(cè)根建成細胞的選擇到側(cè)根露出的整個側(cè)根發(fā)育過程[10]。另外,生長素對植物次生代謝產(chǎn)物的合成積累同樣具有調(diào)控作用,能顯著提高揮發(fā)油[11]、花青素[12]、類黃酮[13]等在植物中的含量。目前有關(guān)生長素對丹參根系發(fā)育和有效成分積累的調(diào)控作用及機制知之甚少。本研究設(shè)置不同的IAA質(zhì)量濃度,分別采用葉面噴施和根部澆灌的方式處理丹參植株,初步探究IAA對丹參根系形態(tài)、酚酸類成分含量及丹參酮類成分含量的綜合性調(diào)控作用。

    1 材料與儀器

    1.1 材料與試劑

    丹參種子于2018年8月取自陜西天士力植物藥業(yè)有限責任公司商洛藥材基地,經(jīng)揚州大學生物科學與技術(shù)學院吳曉霞副教授鑒定為唇形科鼠尾草屬植物丹參Salvia miltiorrhizaBge.。IAA購自生工生物工程(上海)股份有限公司,色譜級甲醇和乙腈購自美國TEDIA公司,對照品丹酚酸A(批號96574-01-5)、迷迭香酸(批號20283-92-5)、丹酚酸B(批號115939-25-8)購自上海源葉生物科技有限公司,質(zhì)量分數(shù)大于98%;隱丹參酮(110852200305)、丹參酮ⅡA(批號110766-200417)、丹參酮I(批號0867-200104)購自中國食品藥品檢定研究院。

    1.2 儀器

    Agilent 1260型高效液相色譜儀(美國Agilent公司),5804R型高速冷凍離心機(德國Eppendorf公司),SK5210HP型超聲清洗機(上海人和科學儀器有限公司),SHB-III循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司),?20 ℃低溫冰箱(青島海爾集團),可調(diào)式微量移液器(德國Eppendorf公司),101A-3型干燥箱(上海市儀器總廠),BS223S電子天平(德國Sartorius公司)。

    2 方法

    2.1 丹參幼苗的培養(yǎng)和IAA處理

    將丹參種子直播于營養(yǎng)缽中(缽口直徑21 cm,缽高21 cm),放入植物培養(yǎng)室內(nèi)進行培養(yǎng),出苗60 d后選取長勢一致的幼苗,20株/組共10組用于IAA處理。處理分為葉面噴施和根部澆灌2種,均設(shè)置5個IAA質(zhì)量濃度(0、5、10、20、30 mg/L)。各組處理均在同一植物培養(yǎng)室中進行,植物培養(yǎng)室光暗周期設(shè)定為16/8 h,溫度設(shè)定為25℃/20℃晝夜變溫。IAA處理每周1次,處理4次后于正常培養(yǎng)條件下繼續(xù)培養(yǎng)2周,收集樣品后進行各個指標的測定。

    2.2 地上部分和根系形態(tài)指標測定

    用直尺測量株高、冠幅、根長,用游標卡尺測定蘆頭、一級側(cè)根和二級側(cè)根的直徑,用電子天平測定植株地上部分和根鮮質(zhì)量,并記錄各處理組植株的葉片數(shù)、一級側(cè)根數(shù)和二級側(cè)根數(shù)。

    2.3 丹參酚酸類和丹參酮類成分的HPLC測定[14]

    2.3.1 供試品溶液的制備 將樣品于45 ℃烘至恒定質(zhì)量,研缽中磨碎,過0.45 mm篩,精確稱取粉末0.05 g,加 6 mL甲醇-水(7︰3)超聲提取45 min,12 000×g離心10 min后取上清,用提取液補足原體積后過0.22 μm濾膜用于HPLC成分測定。

    2.3.2 對照品溶液的制備 測定的酚酸類成分包括迷迭香酸、丹酚酸B和丹酚酸A,丹參酮類成分包括隱丹參酮、丹參酮I和丹參酮IIA。精確稱量對照品粉末,水溶性成分對照品用甲醇-水(7︰3)溶解,脂溶性成分對照品用甲醇溶解。各對照品溶液按比例混合,使混合液中迷迭香酸、丹酚酸B、丹酚酸A、隱丹參酮、丹參酮I和丹參酮IIA的終質(zhì)量濃度分別為0.125、0.685、0.130、0.048、0.050、0.042 5 mg/mL。

    2.3.3 色譜條件 色譜條件為以乙腈(A)和0.01%磷酸水溶液(B)為流動相進行二元梯度洗脫:0~10 min,5%~20% A;10~15 min,20%~25% A;15~25 min,25%~20% A;25~28 min,20%~30% A;28~40 min,30% A;40~45 min,30%~45% A;45~50 min,45%~50% A;50~58 min,50%~58% A;58~67 min,58%~50% A;67~70 min,50%~60% A;70~80 min,60%~65% A;80~85 min,65%~100%A,體積流量1.0 mL/min,柱溫30 ℃。色譜圖見圖1。

    圖1 對照品 (A) 和丹參樣品 (B) 的HPLC圖Fig.1 HPLC chromatogram of standards (A) and samples(B)

    2.3.4 方法學考察 以葉面噴施對照組樣品為材料進行方法學考察,精密度、穩(wěn)定性、重復性試驗RSD值均小于3%,6個成分的平均加樣回收率為96.59%~99.48%,RSD值為0.92%~1.86%,均符合實驗要求。

    2.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    酚酸類成分含量、丹參酮類成分含量、根系形態(tài)指標等的差異顯著性分析利用PASW Statistics 25進行,每組實驗從處理的20株中隨機選取6株作為生物學重復(n=6),數(shù)據(jù)以±s表示,P<0.05為差異顯著。

    3 結(jié)果與分析

    3.1 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參地上部分形態(tài)學指標的影響

    測定了不同處理組中葉片數(shù)、冠幅、株高和地上部分鮮質(zhì)量(圖2)。結(jié)果表明,不同質(zhì)量濃度的IAA噴施處理后,只有20 mg/L處理組中葉片數(shù)顯著增加(P<0.05),為對照組(0 mg/L)中的1.23倍。較高濃度的IAA噴施增加了丹參植株的冠幅,如20 mg/L和30 mg/L處理組中冠幅分別為對照組的1.24倍和1.30倍。株高在IAA噴施處理后變化不大,只在30 mg/L處理組得到了顯著的提高(P<0.05)。地上部分鮮質(zhì)量隨著IAA質(zhì)量濃度的增加呈現(xiàn)先降低后升高的趨勢,30 mg/L處理組為對照組的1.21倍。一定質(zhì)量濃度的IAA澆灌處理后,上述形態(tài)學指標值也得到了一定程度的提高,如5 mg/L處理組中葉片數(shù)是對照組的1.93倍。10 mg/L處理組中冠幅和地上部分鮮質(zhì)量分別是對照組的1.40倍和1.35倍。

    圖2 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參地上部分形態(tài)學指標的影響 (n=6)Fig.2 Effects of different concentrations of IAA and application methods on acrial part morphology of S.miltiorrhiza (n=6)

    3.2 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參根系形態(tài)的影響

    IAA處理顯著改變了丹參的根系形態(tài)(圖3)。IAA噴施處理后,一級側(cè)根數(shù)在5 mg/L處理組和20 mg/L處理組中顯著降低(P<0.05),分別為對照組的45.50%和72.75%。一級側(cè)根直徑和一級側(cè)根長度則顯著提高(P<0.05),如20 mg/L處理組中一級側(cè)根直徑和一級側(cè)根長度分別為對照組的1.36倍和1.18倍。IAA噴施處理顯著(P<0.05)提高了丹參的二級側(cè)根數(shù)目,如20 mg/L處理組中二級側(cè)根數(shù)為對照組的2.00倍,二級側(cè)根直徑和長度則無明顯變化。蘆頭直徑受IAA噴施處理的影響不大,根鮮質(zhì)量則在處理后顯著提高(P<0.05),如20 mg/L處理組中根鮮質(zhì)量為對照組的1.55倍。IAA澆灌處理后,一級側(cè)根數(shù)目無顯著變化(P>0.05),一級側(cè)根直徑和長度則顯著提高(P<0.05),如10 mg/L處理組中一級側(cè)根直徑和一級側(cè)根長度分別為對照組的1.19倍和2.11倍。一定質(zhì)量濃度的IAA澆灌處理同樣促進了丹參二級側(cè)根的發(fā)育,如5 mg/L處理組中二級側(cè)根數(shù)是對照組的1.54倍,20 mg/L處理組中二級側(cè)根直徑是對照組的1.40倍,30 mg/L處理組中二級側(cè)根長度是對照組的1.72倍。除個別處理組外,IAA澆灌處理對丹參蘆頭直徑和根鮮質(zhì)量影響不大。

    圖3 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參根系形態(tài)的影響 (n=6)Fig.3 Effect of different concentrations of IAA and application methods on root morphology of S.miltiorrhiza (n=6)

    3.3 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參地上部分酚酸類成分積累的影響

    IAA噴施處理大幅提高了丹參地上部分迷迭香酸的含量,4個處理組中迷迭香酸的量分別為對照組中的2.07、3.56、3.28、3.48倍(圖4-A)。丹參地上部分丹酚酸B的積累同樣受IAA噴施處理上調(diào),4個處理組中的含量分別為對照組的1.17、1.61、1.77、1.33倍(圖4-B)。丹酚酸A的量在IAA噴施處理后則未呈現(xiàn)一定的規(guī)律性,除20 mg/L處理組外,其余處理組中丹酚酸A的量顯著降低(P<0.05,(圖4-C)。IAA澆灌處理后,5 mg/L處理組和20 mg/L處理中地上部分迷迭香酸的含量顯著提高(P<0.05),分別為對照組的1.40倍和1.54倍(圖4-A)。地上部分丹酚酸B的含量則在IAA澆灌處理后顯著降低(P<0.05),20 mg/L處理組中的含量僅為對照組的42.34%(圖4-B)。地上部分丹酚酸A的含量在IAA澆灌處理后未呈現(xiàn)規(guī)律性(圖4-C)。

    圖4 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參地上部分迷迭香酸 (A)、丹酚酸B (B)、丹酚酸A (C) 積累的影響 (n=6)Fig.4 Effects of different concentrations of IAA and application methods on accumulation of rosmarinic acid (A),salvianolic acid B (B) and salvianolic acid A (C) in acrial part of S.miltiorrhiza (n=6)

    3.4 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參根中酚酸類成分積累的影響

    IAA噴施處理有利于丹參根系中酚酸類成分的積累。迷迭香酸的含量在4個IAA濃度處理組中均顯著提高(P<0.05),其中5 mg/L處理組中含量最高,為對照組的1.60倍(圖5-A)。和迷迭香酸的積累情況相似,根系中丹酚酸B和丹酚酸A的含量也在IAA噴施處理后顯著提高(P<0.05),如20 mg/L處理組中丹酚酸B的含量是對照組的1.77倍,30 mg/L處理組中丹酚酸A的含量是對照組的2.42倍(圖5-B、C)。

    IAA澆灌處理降低了根系中迷迭香酸的積累量,如30 mg/L處理組中迷迭香酸的含量為對照組的68.35%(圖5-A)。除30 mg/L處理組中含量顯著降低外,IAA澆灌處理對根中丹酚酸B的積累影響不大(圖5-B)。根中丹酚酸A的含量則在IAA澆灌處理后大幅提高,5 mg/L處理組中丹酚酸A的含量為對照組的3.25倍(圖5-C)。

    圖5 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參根系迷迭香酸 (A)、丹酚酸B (B)、丹酚酸A (C) 積累的影響 (n=6)Fig.5 Effects of different concentrations of IAA and application methods on accumulation of rosmarinic acid (A),salvianolic acid B (B) and salvianolic acid A (C) in roots of S.miltiorrhiza (n=6)

    3.5 不同質(zhì)量濃度的IAA及施加方式對丹參根中丹參酮類成分積累的影響

    IAA噴施處理顯著提高(P<0.05)了丹參根中丹參酮類成分的含量,10 mg/L處理組中隱丹參酮、丹參酮Ⅰ和丹參酮ⅡA的含量分別是對照組的1.83、1.92、1.23倍,20 mg/L處理組中3種成分的含量則分別為對照組的1.83、1.92、1.49倍。與IAA噴施處理相似,IAA澆灌處理同樣大幅提高了丹參根中丹參酮類成分的含量,10 mg/L處理組中隱丹參酮、丹參酮Ⅰ和丹參酮IIA的含量分別是對照組的3.17、1.92、1.94倍,20 mg/L處理組中3種成分的含量則分別為對照組的2.25、1.75、2.23倍(圖6)。

    圖6 不同濃度的IAA及施加方式對丹參根系隱丹參酮 (A)、丹參酮I (B)、丹參酮IIA (C) 積累的影響 (n=6)Fig.6 Effects of different concentrations of IAA and application methods on accumulation of cryptotanshinone (A),tanshinone I (B),tanshinone IIA (C) in roots of S.miltiorrhiza (n=6)

    4 討論

    IAA對植物側(cè)根發(fā)育的調(diào)控機制目前已經(jīng)基本明確。植物主根基部分生組織區(qū)域的中柱鞘細胞在IAA的振蕩調(diào)節(jié)下脫分化形成側(cè)根建成細胞,側(cè)根建成細胞受IAA及其下游基因的調(diào)控,進行多次的垂周分裂和平周分裂形成側(cè)根原基。側(cè)根原基繼續(xù)分裂,并釋放果膠裂解酶等來改造其周圍皮層或表皮細胞的細胞壁,助其突破皮層和表皮細胞而露出[10]。IAA對側(cè)根發(fā)育的調(diào)控具有復雜性,如在側(cè)根發(fā)生起始階段發(fā)揮作用的IAA主要來源于根尖部位,而側(cè)根露出過程中發(fā)揮作用的IAA則主要來源于地上部分的莖芽[15]。有研究表明,外源IAA同樣可以影響植物側(cè)根的發(fā)育和形態(tài)建成,且其調(diào)控作用與IAA質(zhì)量濃度密切相關(guān)。如10 μmol/L IAA可以促進北柴胡的側(cè)根發(fā)育,當IAA質(zhì)量濃度升高到100 μmol/L時則呈現(xiàn)出了顯著的抑制作用[16]。本研究中,葉面噴施和根部澆灌IAA均顯著影響了丹參的根系形態(tài)??傮w上來說,2種施加方式均增加了一級側(cè)根的數(shù)目和長度,促進了二級側(cè)根的發(fā)育,說明外源IAA被丹參不同的器官吸收后均會被運輸?shù)礁邪l(fā)揮作用。IAA不同的施加方式對丹參根系的影響又有不同之處,如一定質(zhì)量濃度的IAA葉面噴施后可以降低丹參一級側(cè)根數(shù)目,澆灌處理后則未發(fā)現(xiàn)類似變化。這可能是由于葉面噴施的IAA需要運輸才能到達根部細胞,兩種施加方式對根部細胞中內(nèi)源IAA質(zhì)量濃度的影響程度不同。但具體的機制有待于進一步深入研究。

    除調(diào)控植物側(cè)根發(fā)育外,IAA還在多種植物中影響次生代謝產(chǎn)物的積累。如在0.1~1.0 mg/L的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),IAA可顯著提高蕎麥Fagopyrum esculentumL.芽中蘆丁的含量[17]。IAA處理可以提高擬南芥Arabidopsis thalianaL.中槲皮素和山柰酚的含量,并使類黃酮生源途徑上的關(guān)鍵酶基因CHS、FLS和F3'H的表達量提高3.00倍以上[18]。對桃Prunus persicaL.果實施加外源IAA可以提高生長素信號途徑上PpPIN和PpTIR1基因的表達,并提高果皮中花青素的含量增加果皮的著色率[19]。本研究中葉面噴施和根部澆灌IAA均影響了丹參中酚酸類成分的的含量,但相較于根部澆灌,葉面噴施IAA能更加高效地促進丹參地上部分和根中酚酸類成分的積累。與酚酸類成分積累情況不同的是,2種IAA施加方式雖然均顯著提高了丹參根中丹參酮類成分的含量,但根部澆灌方式的促進效果更加明顯。說明丹參中2類主要有效成分對IAA的響應機制不同,其具體的調(diào)控通路有待于進一步深入研究。

    利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突

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