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    基于效應(yīng)子E38識別與NB-LRR富集測序挖掘抗晚疫病馬鈴薯資源

    2021-05-26 07:47:06段艷鳳文國宏ArmstrongMR李廣存金黎平
    中國馬鈴薯 2021年2期
    關(guān)鍵詞:隴薯晚疫病抗病

    段艷鳳,文國宏,Armstrong MR,李廣存,金黎平*

    (1.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蔬菜花卉研究所,北京 100081;2.甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院馬鈴薯研究所,甘肅 蘭州 730070;3.英國鄧迪大學(xué)/詹姆斯赫頓研究所植物科學(xué)系,英國 鄧迪 DD2 5DA)

    馬鈴薯是世界上繼小麥、玉米和水稻之后的第4大糧食作物,也是中國重要的糧菜飼兼用作物[1]。由致病疫霉(Phytophthora infestans)引起的晚疫病是馬鈴薯生產(chǎn)上最具毀滅性的病害[2]。目前,生產(chǎn)上對晚疫病的防治措施主要應(yīng)用殺菌劑,不僅會導(dǎo)致抗藥性菌株的產(chǎn)生,還增加了環(huán)境污染及對人類健康帶來風(fēng)險。實踐證明,培育抗病品種是防治晚疫病的根本手段[3]。然而,由于栽培馬鈴薯抗源缺乏,抗病基因(R基因)容易被高度進(jìn)化的晚疫病菌株克服,致使抗晚疫病育種進(jìn)程緩慢。因此,尋找優(yōu)異晚疫病抗源材料,挖掘新的R基因,對于促進(jìn)馬鈴薯抗晚疫病育種具有重要意義。

    致病疫霉基因組容量高達(dá)240 Mb,編碼了大量的效應(yīng)蛋白,其中最大的效應(yīng)蛋白家族為RXLR類蛋白,大約有560多個[2]。目前,所有被報道的致病疫霉效應(yīng)蛋白(AVR)均屬于RXLR類蛋白,并且都排列在基因稀疏、重復(fù)序列較高的區(qū)域,例如AVR1[4]、AVR2[5]、AVR3a[6]、AVR4[7]及AVR-blb2[8]等。目前已經(jīng)克隆的馬鈴薯晚疫病R基因有近30個,均屬于NB-LRR類抗病基因[9]?;谥参锱c病菌識別的ETI理論,這些R基因編碼的蛋白可以通過識別致病疫霉中RXLR類AVR蛋白產(chǎn)生過敏性反應(yīng)(Hypersensitive response,HR),從而使馬鈴薯產(chǎn)生抗病性[10]。效應(yīng)子組學(xué)策略由Vleeshouwers等[11]在2008年提出,即通過效應(yīng)子與抗病基因的識別鑒別馬鈴薯資源中是否含有潛在抗病基因,該方法大大提高了抗病資源的評價及抗病基因的鑒定和利用效率。

    近年來一種基于NB-LRR序列富集測序(Resistance gene enrichment Sequencing,RenSeq)技術(shù)發(fā)展成熟。該技術(shù)可以精確地對植物基因組中NB-LRR基因序列進(jìn)行進(jìn)一步注釋,通過該技術(shù)研究者們將馬鈴薯基因組中的NB-LRR基因數(shù)目從438個增加到了755個[12]。RenSeq技術(shù)可以快速有效地對R基因進(jìn)行定位和分離。Jupe等[12]利用該技術(shù)分別以野生種Solanum berthaultii和S.ruiz-ceballosii分離群體為材料,成功鑒定到了上述兩個群體中與晚疫病抗性位點共分離的標(biāo)記。RenSeq還可以作為一種快速診斷工具(dRenSeq),對通過磁珠富集的片段測序后與已知的R基因進(jìn)行比對,可以快速確定被檢測的材料是否含有已知的R基因[13]。

    本研究所用的晚疫病菌效應(yīng)子E38由西北農(nóng)林科技大學(xué)實驗室提供,該實驗室在前期研究中發(fā)現(xiàn)在馬鈴薯栽培品種‘隴薯12號’中過表達(dá)E38可引發(fā)過敏性壞死反應(yīng)(HR),揭示了在‘隴薯12號’中可能存在特異識別E38的抗病基因。本研究以‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’為材料,通過晚疫病抗性鑒定、效應(yīng)子識別及dRenSeq等分析,并以‘隴薯12號’與‘L05Nsr-j-1’的分離群體為材料,以期解析其抗性遺傳基礎(chǔ),為‘隴薯12號’的利用及抗晚疫病基因克隆等后續(xù)研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 植物材料

    ‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’均為四倍體,F(xiàn)1雜交后代分離群體共計215個單株,以上材料由甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院馬鈴薯研究所提供。試管苗在MS培養(yǎng)基(20 g/L蔗糖,5 g/L含維生素MS,8 g/L瓊脂,pH 5.8)上,23℃、16 h/8 h光暗培養(yǎng)兩周后,移植于日光溫室營養(yǎng)缽中生長,期間進(jìn)行澆水、施肥等日常管理?!]薯12號’、‘L05Nsr-j-1’及F1分離群體在移植后4~5周時選取健康、幼嫩完全展開的葉片進(jìn)行病菌效應(yīng)子分析。晚疫病菌接種鑒定在移植后8~10周時進(jìn)行。

    1.2 晚疫病菌株及抗性鑒定

    用于接種的晚疫病菌株為428-2、T30-4、90128和CN152(表1),其中CN152可以克服很多已知的抗晚疫病基因,包括廣譜抗病基因Rpi-blb1/RB,被稱為“超級生理小種”。晚疫病菌株于液氮保存,待接種時于黑麥培養(yǎng)基上活化?;罨木暝诿咕囵B(yǎng)箱18℃黑暗培養(yǎng)7~14 d,待菌絲長滿培養(yǎng)皿時加適量無菌水于4℃誘導(dǎo)游動孢子3~6 h,利用血球計數(shù)器統(tǒng)計游動孢子數(shù)量并稀釋到接種濃度,準(zhǔn)備接種。

    接種方法采用離體葉片法[16],并略加改動。從植株頂部計起,選取第3~5片展開葉,背面朝上置于雙層濕潤滅菌濾紙上,在每個葉片背面主葉脈兩側(cè)各接種1滴濃度為5×104個游動孢子/mL的孢子懸浮液,每滴10μL。接種后將容器封好,置于18℃培養(yǎng)箱內(nèi),在每日光照16 h,黑暗8 h,相對濕度100%條件下培養(yǎng)。接種后6~7 d調(diào)查發(fā)病情況。對于接種的每個菌株,每份材料從3個植株上各選取一個葉片進(jìn)行接種,每個接種試驗重復(fù)3次。本研究以‘CPH1-14’為抗病對照,‘Desiree’為感病對照。

    表1 晚疫病抗性鑒定所用菌株Table 1 Isolates used for late blight resistance evaluation

    1.3 重組質(zhì)粒及轉(zhuǎn)化質(zhì)粒的鑒定

    重組質(zhì)粒pMDC83-E38由西北農(nóng)林科技大學(xué)實驗室提供;pBINPLUS-R3a和pK7WG2-Avr3a重組質(zhì)粒由荷蘭瓦赫寧根大學(xué)實驗室提供;空載體pMDC83由本實驗室保存(表2)。將以上質(zhì)粒通過凍融法[17]轉(zhuǎn)至農(nóng)桿菌GV3101中。將轉(zhuǎn)入質(zhì)粒的農(nóng)桿菌分別在含有相應(yīng)抗生素的LB平板培養(yǎng)基上活化,28℃靜置培養(yǎng)2 d。挑取單克隆接入1 mL含有相應(yīng)抗生素的LB液體培養(yǎng)基,28℃,200 r/min,培養(yǎng)過夜,菌液DNA進(jìn)行PCR驗證,經(jīng)過驗證的菌液加20%滅菌甘油保存在-80℃冰箱。

    R3a[18]和Avr3a[19]特異引物序列來源于參考文獻(xiàn),E38和pMDC83引物序列通過軟件Primer premier 5.0設(shè)計(表3)。PCR反應(yīng)體系:菌液DNA模板1μL、上游引物(5μmol)0.3μL、下游引物(5μmol)0.3μL、2×Taq mix 8μL、ddH2O 6.4μL。PCR反應(yīng)程序:94℃變性30 s,Tm退火30 s,72℃延伸45 s,35個循環(huán)。第一個循環(huán)之前94℃預(yù)變性5 min,最后72℃延伸7 min。

    1.4 基于農(nóng)桿菌介導(dǎo)的基因瞬時表達(dá)分析(Agroinfiltrationassay)

    采用Vossen等[20]的方法,每個植株選取3片幼嫩、健康和完全展開的葉片進(jìn)行基因瞬時表達(dá)分析,設(shè)置3次生物學(xué)重復(fù)。將于-80℃貯存的農(nóng)桿菌菌液在含有相應(yīng)抗生素的3 mL LB液體培養(yǎng)基中28℃過夜培養(yǎng)。第2 d,將這些培養(yǎng)物接種到含有相應(yīng)抗生素的15 mL YEB培養(yǎng)基中(1 L蒸餾水中添加5 g牛肉浸膏、5 g蛋白胨、5 g蔗糖、1 g酵母提取物及2 mL 1 mol MgSO4),另加10μL/L 200 mol乙酰丁香酮(Acetosyringone,AS)及1 000μL/L 1 mol 2-氮嗎啉乙烷磺酸[2-(N-Morpholino)ethanesulfonic acid,MES],28℃,200 r/min,培養(yǎng)過夜。第3 d,16℃、4 000 r/min離心8 min收集細(xì)胞,用MMA緩沖液(1 L蒸餾水中添加20 g蔗糖、5 g MS及1.95 g MES,用NaOH調(diào)節(jié)pH至5.6,另外添加1 mL/L 200 mol溶于DMSO的AS)重懸浮至OD600達(dá)到0.2。將含有R3a和Avr3a基因懸菌液1∶1混合,室溫靜置3 h后,用1 mL無針頭注射器以點注射方式(直徑1 cm左右)在葉片上注射作為陽性對照。空載體pMDC83、農(nóng)桿菌GV3101為陰性對照。3~4 d后觀察、統(tǒng)計表型。試驗設(shè)置3次生物學(xué)重復(fù)和3次試驗重復(fù)。

    表2 用于農(nóng)桿菌瞬時表達(dá)的質(zhì)粒Table 2 Vectors used for agroinfiltration

    表3 用于PCR驗證的引物Table 3 Primers used for PCR validation

    1.5 基因組DNA提取及d RenSeq分析

    采用改良的CTAB法[21]提取‘隴薯12號’及‘L05Nsr-j-1’基 因 組DNA,利 用Nanodrop ND-100型分光光度計檢測DNA的質(zhì)量及濃度。

    dRenSeq分析參考Armstrong等[22]的方法進(jìn)行。利用‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’的DNA分別構(gòu)建基因組DNA測序文庫,與標(biāo)記有NB-LRR基因保守序列的磁珠雜交富集。將雜交上的DNA洗脫,并基于Illumina MiSeq測序平臺測序。將測序的reads與已知的馬鈴薯晚疫病R基因以1%和2%的錯配率進(jìn)行比對。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 ‘隴薯12號’可能含有未知晚疫病抗病基因

    利用包括超級生理小種CN152(13_A2型)在內(nèi)的4個來源不同、毒力不同的晚疫病菌株對‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’進(jìn)行了接種鑒定。結(jié)果如圖1所示,‘隴薯12號’對CN152表現(xiàn)為感病,對90128、T30-4及428-2 3個菌株表現(xiàn)為抗??;‘L05Nsr-j-1’則對4個菌株均表現(xiàn)為感病。結(jié)合4個菌株的生理小種類型,推測‘隴薯12號’可能含有晚疫病抗病基因R2、R9或其他抗病基因。

    2.2 病原效應(yīng)子E38可以激發(fā)‘隴薯12號’特異的HR反應(yīng)

    目前,已公布的馬鈴薯R基因均是通過識別致病疫霉中一類含有RXLR結(jié)構(gòu)域的效應(yīng)子從而激發(fā)抗病功能。本研究采用效應(yīng)子E38分別在‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’中進(jìn)行農(nóng)桿菌瞬時表達(dá)分析,結(jié)果表明‘隴薯12號’可以識別效應(yīng)子E38產(chǎn)生特異的HR,預(yù)示‘隴薯12號’存在識別E38的潛在R基因(圖2)。而‘L05Nsr-j-1’則不能識別E38,未產(chǎn)生特異的HR。

    圖1 ‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’的晚疫病抗性鑒定Figure 1 Late blight resistance identification of'Longshu 12'and'L05Nsr-j-1'

    圖2 效應(yīng)子E38在‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’葉片上的識別表現(xiàn)Figure2 Recognition performanceof Agrobacterium-mediated transformation of'Longshu 12'and'L05Nsr-j-1'with effector E38

    2.3 dRenSeq檢測揭示‘隴薯12號’中存在未知晚疫病抗病基因

    ‘隴薯12號’除對“超級生理小種”CN152表現(xiàn)為感病外,對90128、T30-4及428-2 3個菌株均表現(xiàn)為抗病,‘L05Nsr-j-1’則對以上4個菌株均表現(xiàn)為感病。為確認(rèn)‘隴薯12號’的抗性是否來源于已知的NB-LRR基因,采用了R基因診斷技術(shù)dRenSeq對‘隴薯12號’進(jìn)行了富集分析,結(jié)果顯示,在容許1%和2%錯配率時,‘隴薯12號’的reads沒有完全覆蓋所檢測的任一基因(表4,圖3)。因此推測,‘隴薯12號’的抗性可能來源于這些基因外的其他基因或同源基因。

    2.4 F1分離群體大部分基因型對農(nóng)桿菌敏感

    為了挖掘‘隴薯12號’中含有的特異識別效應(yīng)子E38的潛在抗病基因,本研究將E38在‘隴薯12號’和‘L05Nsr-j-1’雜交的F1分離群體215個單株上進(jìn)行農(nóng)桿菌瞬時表達(dá)分析,理論上攜帶潛在抗病基因的個體會識別效應(yīng)子E38進(jìn)而出現(xiàn)細(xì)胞壞死的表型。結(jié)果顯示F1群體145個(67%)單株陰性對照出現(xiàn)細(xì)胞壞死,表現(xiàn)出假陽性反應(yīng);70個(33%)單株陽性對照和陰性對照均正常,其中23個單株能被E38識別產(chǎn)生HR,47個單株不能被E38識別產(chǎn)生HR(圖4)。

    表4 ‘隴薯12號’NLR基因的覆蓋率Table 4 NLRcoveragein'Longshu 12'

    圖3 d RenSeq分析‘隴薯12號’中的NLR基因Figure 3 d RenSeq analysis of NLR genes on'Longshu 12'

    圖4 效應(yīng)子E38在F1群體基因型進(jìn)行農(nóng)桿菌接種的實例Figure 4 Examples of agroinfiltration in F1 population genotypes with effector E38

    3 討論

    晚疫病是馬鈴薯的第一大病害,嚴(yán)重制約中國乃至世界馬鈴薯產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。尋找優(yōu)異抗源材料,挖掘和利用新的R基因,對于促進(jìn)馬鈴薯抗晚疫病育種尤為重要。盡管國內(nèi)外研究者進(jìn)行了大量研究,在馬鈴薯中克隆了近30個晚疫病R基因[9],但這些基因全部來自野生種,且很多抗性已經(jīng)被克服,包括R pi-blb1/RB、Rpi-sto1和Rpi-pta1[23]等一些廣譜抗性基因抗性被快速進(jìn)化的生理小種克服。馬鈴薯野生種中具有豐富的等位基因多態(tài)性,利用于遺傳育種,可以拓展育種材料的遺傳基礎(chǔ)[24]。然而,野生種與栽培種之間普遍具有雜交不親和、胚乳敗育、雄性不育等生殖障礙[25],導(dǎo)致野生資源利用難度增大。馬鈴薯普通栽培種經(jīng)過長期的適應(yīng)性選擇,聚集了高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)等優(yōu)良的農(nóng)藝性狀,其中不乏一些晚疫病抗性強(qiáng)的材料。如果能在普通栽培種中篩選到優(yōu)良抗源材料、挖掘R基因,將顯著提高馬鈴薯抗晚疫病育種效率。

    本研究所用材料普通栽培種品種‘隴薯12號’植株在田間高抗晚疫病[26],室內(nèi)接種鑒定對“超級生理小種”CN152外的其余3個菌株表現(xiàn)為高抗或免疫,通過系譜分析發(fā)現(xiàn)‘隴薯12號’含有‘小白花’、‘渭會4號’、‘中德6號’及‘大西洋’的血緣,其中‘小白花’為中國農(nóng)家品種,在1983年出版的《全國馬鈴薯品種資源編目》中記載具有較強(qiáng)晚疫病抗性。近年來,逐漸發(fā)展起來的效應(yīng)子組學(xué)策略大大提高了抗病資源的評價和篩選及R基因的鑒定和利用效率[27]。本研究中晚疫病菌效應(yīng)子E38可以激發(fā)‘隴薯12號’產(chǎn)生特異的HR反應(yīng),dRenSeq檢測其未包含已知的R基因。然而通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時表達(dá)在F1群體進(jìn)行E38的識別,67%的材料出現(xiàn)假陽性反應(yīng),表明群體不適合采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的瞬時表達(dá)進(jìn)行效應(yīng)子識別挖掘抗病基因,這與Chen等[13]結(jié)果相符,在其研究中野生種S.verrucosum群體不適合用農(nóng)桿菌或PVX介導(dǎo)的瞬時表達(dá)進(jìn)行高通量的效應(yīng)子組學(xué)篩選和鑒定。

    本研究通過晚疫病抗性鑒定、效應(yīng)子E38識別及dRenSeq等方法鑒定獲得‘隴薯12號’為含有未知R基因的優(yōu)良抗源材料,對F1群體采用效應(yīng)子E38識別挖掘抗病基因,但大部分材料出現(xiàn)背景反應(yīng),證實并非所有材料均適合效應(yīng)子組學(xué)策略識別鑒定。本研究鑒定得到的‘隴薯12號’能夠識別效應(yīng)子E38激發(fā)過敏反應(yīng),預(yù)示‘隴薯12號’存在潛在抗病基因,為以后克隆其抗病基因、抗病育種實踐和開展馬鈴薯與晚疫病菌分子互作奠定了基礎(chǔ)。

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