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    胸腺肽誘導(dǎo)Hela細胞死亡的研究

    2021-02-25 09:25:30李亞琳史秀超
    生物學(xué)雜志 2021年1期
    關(guān)鍵詞:胸腺肽誘導(dǎo)生長

    李亞琳, 魏 睿, 史秀超

    (渭南師范學(xué)院 環(huán)境與生命科學(xué)學(xué)院, 渭南 714009)

    胸腺肽是胸腺組織分泌的具有生理活性的一組多肽,胸腺肽主要活性成分是由28個氨基酸組成的胸腺肽α1(Thymosin alpha 1,Tα1)。臨床上常用的Tα1是從小牛胸腺分離并經(jīng)提純的有非特異性免疫效應(yīng)的小分子多肽,它能誘導(dǎo)刺激T細胞分化和發(fā)育,維持機體免疫平衡狀態(tài),增強T細胞對抗原的反應(yīng),從而提高機體抵抗疾病的能力[1]。臨床上也有用Tα1輔助治療腫瘤如肝癌和腎母細胞瘤的報道[2-4],然而Tα1在治療癌癥方面的研究還不是很多,其對腫瘤細胞本身的效應(yīng)也不清楚。Hela細胞源自于人類宮頸癌細胞,宮頸癌是女性較為常見的惡性腫瘤,其發(fā)病率和死亡率在女性中居第二,僅次于乳腺癌[5]。

    本研究選取注射用Tα1作為腫瘤治療試劑,以人宮頸癌Hela細胞作為研究對象。用不同濃度的Tα1處理體外培養(yǎng)的Hela細胞,觀察其對Hela細胞生長增殖及死亡的影響,并進一步調(diào)查Tα1誘導(dǎo)自噬相關(guān)因子lc3的表達情況,從而探索Tα1在體外誘導(dǎo)腫瘤細胞死亡的機制,為Tα1抗腫瘤研究提供實驗依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    人 Hela細胞株(購于第四軍醫(yī)大學(xué)動物實驗中心);注射用Tα1(西安迪賽生物藥業(yè)有限責(zé)任公司);反轉(zhuǎn)錄酶(TaKaRa公司);定量PCR試劑盒(TaKaRa公司);LC3抗體(Sigma,USA);HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG;ECL發(fā)光液;蛋白提取試劑盒(碧云天);lc3和β-actin引物由Invitrogen合成;ABI stepone plus實時熒光定量PCR儀;BHP9504-02化學(xué)發(fā)光儀。

    1.2 方法

    1.2.1 顯微鏡觀察細胞死亡

    將處于對數(shù)生長期的Hela細胞制成單細胞懸液,按1×103個/mL,接種于6孔板,培養(yǎng)24 h后,更換新鮮培養(yǎng)液并加入不同濃度的Tα1(10、20和30 μg/mL)作用48 h后,直接在顯微鏡下觀察細胞形態(tài)。

    1.2.2 MTT法檢測HeLa細胞的生長率

    取對數(shù)生長期的細胞, 用完全培養(yǎng)液調(diào)整細胞數(shù)為1×102個/mL,接種于96孔板,24 h后分別加入終濃度為:10、20、30、40、50、60和70 μg/mL 的Tα1作用24 h或48 h,同時設(shè)置正常對照組,每組6個復(fù)孔。藥物作用24 h或48 h后,每孔加入5 mg/mL MTT 10 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,吸出上清液,同時每孔加入DMSO 100 μL,搖床混勻 10 min,室溫靜置 20 min 后,用酶標(biāo)儀(波長= 540 nm)測吸光值。

    1.2.3 實時定量PCR檢測lc3基因的表達

    Hela細胞以1×104個/mL接種于6孔板,按照上述方法用不同濃度的Tα1(10、20和30 μg/mL)處理細胞48 h后,對細胞進行RNA抽提并檢測其純度和濃度,用特異性引物進行反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成cDNA第一鏈。用Power SYBR Green Master Mix(Applied Biosystems)進行定量PCR,檢測不同濃度處理下lc3基因的表達情況,以β-actin作為內(nèi)參。lc3引物如下:正向5′-CCACACCCAAAGTCCTCACT-3′,反向5′-CACTGCTGCTTT CCGTAACA-3′,產(chǎn)物長度220 bp。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃變性5 s,58 ℃退火30 s,共40個循環(huán)。用β-actin作為內(nèi)參來量化lc3的相對表達量。

    1.2.4 Western Blot法檢測LC3的表達

    不同濃度的Tα1(10、20和30 μg/mL)處理Hela細胞48 h后,用蛋白提取試劑盒提取細胞總蛋白,進行體積分數(shù)為10%的SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)并轉(zhuǎn)膜。用脫脂牛奶室溫封閉1 h,加入一抗(1∶1 000),4 ℃冰箱中孵育過夜。第2天取出膜,洗凈后加入HRP標(biāo)記的山羊抗兔IgG(1∶4 000), 室溫雜交1 h。加入ECL顯色,暗室曝光,顯影,定影。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)處理

    2 結(jié)果與分析

    2.1 顯微鏡觀察細胞死亡

    在正常情況下Hela細胞呈梭形,比較飽滿,大小均一。用不同濃度(10、20和30 μg/mL)的Tα1處理后,明顯發(fā)現(xiàn)胞體變圓,細胞體積縮小,不再發(fā)生增殖等特征。并且隨著Tα1濃度的增加,細胞死亡、萎縮的程度越明顯(圖1)。

    (a)Control;(b)10 μg/mL Tα1;(c)20 μg/mL Tα1;(d)30 μg/mL Tα1

    2.2 MTT法檢測HeLa 細胞的死亡率

    圖2和圖3是不同濃度的Tα1(10、20、30、40、50、60和70 μg/mL)處理細胞24 h和48 h后,由MTT法檢測得到的細胞OD值。與正常細胞比較,藥物處理后,測得的OD值明顯降低,并且低濃度處理組降幅更大。處理24 h后,與正常對照組比較,20 μg/mL和30 μg/mL的Tα1處理組具有顯著性差異。

    圖2 Tα1處理Hela細胞24 h后MTT檢測細胞生長率

    圖3 Tα1處理Hela細胞48 h后MTT檢測細胞生長率

    2.3 實時定量PCR檢測lc3基因的表達

    用不同濃度的Tα1處理Hela細胞48 h后,RT-PCR檢測lc3基因的表達。如圖4所示,在一定濃度范圍內(nèi),Tα1處理后,lc3的表達明顯升高,且隨著處理濃度的增加,lc3的表達量也在升高,具有劑量依賴性。

    圖4 RT-PCR檢測lc3基因的表達

    2.4 Western Blot法檢測LC3的表達

    不同濃度的Tα1(10、20和30 μg/mL)處理Hela細胞48 h后,Western Blot法檢測LC3蛋白的表達,結(jié)果如圖5所示。與Real time-PCR有一致的效應(yīng),Tα1處理后,自噬相關(guān)蛋白的表達也顯著增加,并與處理濃度呈正相關(guān)。與正常對照組比較,Tα1處理后LC3的表達具有顯著性差異。

    圖5 Western Blot檢測LC3的表達

    3 討論與結(jié)論

    Tα1主要通過活化機體免疫細胞,增加機體免疫力來治療包括腫瘤在內(nèi)的多種疾病[6]。有研究證明了Tα1也可以抑制乳腺癌細胞的增殖,誘導(dǎo)細胞凋亡,阻止乳腺癌生長[7-8]。也有報道顯示Tα1能抑制食管鱗狀細胞癌和肺癌的發(fā)展[9-10],所有這些報道均是通過體內(nèi)試驗來驗證的。在本研究中,在體外通過形態(tài)學(xué)觀察、MTT檢測、RT-PCR檢測以及Western Blot檢測調(diào)查了Tα1對Hela細胞生長增殖的抑制,并簡單分析了其誘導(dǎo)細胞死亡的機制,試圖揭示Tα1在體外對宮頸癌Hela細胞的殺傷效應(yīng)。

    顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),用不同濃度的Tα1處理Hela 細胞后,細胞均出現(xiàn)一些形態(tài)學(xué)改變,如貼壁能力下降、胞體變圓、增殖減慢或停止。這些現(xiàn)象說明Tα1能夠抑制Hela細胞的生長增殖,誘導(dǎo)其死亡。

    為了進一步探討Tα1對Hela細胞生長的抑制效應(yīng),試驗用MTT測試法檢測了細胞的生長情況。隨著Tα1濃度的升高,測得的細胞吸光度值也逐漸減小,說明Tα1確實能夠抑制Hela細胞的增殖并殺死Hela 細胞。由圖2和圖3也可以看出,10、20和 30 μg/mL的低濃度Tα1處理對Hela的生長抑制作用更為明顯,這也是本試驗在RT-PCR和Western Blot中所使用的Tα1濃度。MTT結(jié)果表明:Hela細胞對低濃度的藥物刺激比較敏感,而較高濃度Tα1對細胞的生長抑制作用并不是很強;Tα1的這種抑制作用與處理的時間呈正相關(guān)。有文章揭示了在病理條件下血清Tα1的水平明顯低于健康對照組[11],這個結(jié)論或許能解釋Hela細胞對高濃度Tα1不敏感的原因。

    自噬是20世紀(jì)60年代發(fā)現(xiàn)的生物現(xiàn)象,它是指細胞內(nèi)的溶酶體降解自身細胞器和其他大分子的過程[12]。自噬主要降解長半衰期蛋白,是細胞能夠完整降解細胞器的唯一途徑[13],是一種由基因控制的自主性死亡過程[14]。LC3蛋白是細胞中自噬體的標(biāo)記蛋白[15],因此實驗進一步用RT-PCR和Western Blot檢測了自噬相關(guān)基因lc3在基因水平和蛋白水平的表達,結(jié)果表明Tα1無論在哪個水平均能夠誘導(dǎo)lc3的表達,并且隨著Tα1濃度的提高,lc3的相對表達量也逐漸增加。

    在腫瘤治療過程中,Tα1作為一個輔助治療因子能夠提高患者的免疫能力,但該藥物對于腫瘤細胞的作用不是很清楚。本研究僅以Hela細胞為例,證明了Tα1至少在體外對該細胞具有抑制其生長增殖的作用,并進一步調(diào)查了Tα1通過自噬的方式誘導(dǎo)Hela細胞死亡。該結(jié)果為Tα1在腫瘤治療方面的臨床應(yīng)用提供了試驗基礎(chǔ),也為拓寬腫瘤治療的方法提供了新的生物治療思路。

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