楊曉娜,陳自宏,謝雯穎,吳春燕,張星和
保山學(xué)院資源與環(huán)境學(xué)院(保山 678000)
花色苷是植物次生代謝過(guò)程中產(chǎn)生的類黃酮物質(zhì),它是花色素與糖以糖苷鍵結(jié)合而成的天然色素,不僅安全,且在動(dòng)脈粥樣硬化、炎癥、癌癥等疾病中有一定的治療作用[1]。國(guó)內(nèi)外科研工作者已對(duì)不同植物花色苷的提取工藝做了大量的研究,微波加熱使細(xì)胞內(nèi)極性物質(zhì)吸收微波能,產(chǎn)生熱量,破壞植物細(xì)胞壁,并將胞內(nèi)物質(zhì)釋放出來(lái)[3]。經(jīng)查閱文獻(xiàn),植物花色苷微波輔助提取及其抗氧化性研究成果較多,主要集中在紫洋蔥[4]、石榴[5]、紅米[6]、紫薯[7]、紫馬鈴薯[8]、黑果枸杞[9]等植物,但是微波輔助提取鐵皮石斛花色苷及其抗氧化性研究鮮有報(bào)道。
云南省保山市是我國(guó)蘭科石斛屬植物分布較集中的地區(qū)之一,獨(dú)特的氣候條件和多樣的生態(tài)環(huán)境,為石斛屬植物的生長(zhǎng)提供了有利條件[2]。目前,對(duì)石斛的研究主要集中在資源、繁殖生長(zhǎng)、活性成分及功能、組織培養(yǎng)、資源鑒定與評(píng)價(jià)、化學(xué)成分、內(nèi)生菌、藥理作用等方面。通過(guò)對(duì)保山不同品種石斛的調(diào)研,發(fā)現(xiàn)鐵皮石斛葉鞘富含天然色素花色苷。
因此,此次試驗(yàn)在傳統(tǒng)浸泡法基礎(chǔ)上,加以微波輔助提取鐵皮石斛花色苷,并對(duì)其進(jìn)行抗氧化性研究,以了解鐵皮石斛花色苷用微波輔助提取的工藝及其對(duì)清除DPPH自由基和羥自由基的抗氧化能力,為石斛天然色素開發(fā)提供理論依據(jù)和技術(shù)支持。
鐵皮石斛采自龍陵縣龍江鄉(xiāng)石斛人工種植基地,選用長(zhǎng)勢(shì)好、無(wú)病蟲害的鐵皮石斛葉鞘作為試材,自然干燥后用粉碎機(jī)粉碎,過(guò)60目篩,密封保存,備用。無(wú)水乙醇、鹽酸、1, 1-二苯基-2-三硝基苯肼、水楊酸、過(guò)氧化氫等均為分析純。
DFY-800 g搖擺式高速萬(wàn)能粉碎機(jī)(溫嶺市林大機(jī)械有限公司);DK-8AX電熱恒溫水槽(上海一恒科技儀器有限公司);G70F20N2L-DG(SO)微波(廣東格蘭仕微波爐電器制造有限公司);N-1001旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海愛朗儀器有限公司);HC-2062離心機(jī)(安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司);SHZ-DⅢ循環(huán)水真空泵(鞏義市子華儀器有限責(zé)任公司);UV5100紫外/可見分光光度計(jì)(安徽皖儀科技股份有限公司);CP114電子天平:奧豪斯儀器(上海)有限公司。
1.3.1 鐵皮石斛花色苷含量測(cè)定及最大吸收波長(zhǎng)的確定方法
稱取1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,加入30 mL 0.1%鹽酸乙醇(乙醇體積分?jǐn)?shù)為40%)浸泡1 h,然后在微波輻射功率406 W、輻射時(shí)間60 s條件下處理,抽濾,將提取液置于紫外-可見分光光度計(jì)200~700 nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)掃描,確定最大吸收波長(zhǎng)[10]。
用pH示差法測(cè)定花色苷的含量[11],分別用pH 1.0的KCl和pH 4.5的乙酸鈉緩沖液定容至25 mL,室溫下平衡20 min,測(cè)定2份樣品在λmax和700 nm波長(zhǎng)處的吸光度。吸光度及紫皮石斛提取液中花色苷含量按式(1)和(2)計(jì)算。
式中:V為提取液總體積,mL;n為稀釋倍數(shù);M為矢車菊-3-葡萄糖苷的相對(duì)分子質(zhì)量,449.4;ε為矢車菊素-3-葡萄糖苷摩爾消光系數(shù),26 900;m為樣品質(zhì)量,g。
1.3.2 浸泡時(shí)間
稱取6份1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,加入30 mL 0.1%鹽酸乙醇(乙醇體積分?jǐn)?shù)為40%),分別浸泡0,1,2,3,4和5 h,然后在微波輻射功率406 W、輻射時(shí)間60 s條件下處理,抽濾,測(cè)定提取液中花色苷的含量,方法同1.3.1。
1.3.3 乙醇體積分?jǐn)?shù)
稱取5份1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,分別加入30 mL 0.1%鹽酸乙醇,乙醇體積分?jǐn)?shù)分別為30%,40%,50%,60%和70%,浸泡1 h,然后在微波輻射功率406 W,輻射時(shí)間60 s條件下處理,抽濾,測(cè)定提取液中花色苷的含量,方法同1.3.1。
1.3.4 料液比
稱取5份1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,分別加入20,25,30,35和40 mL 0.1%鹽酸乙醇(乙醇體積分?jǐn)?shù)均為40%),浸泡1 h,然后在微波輻射功率406 W、輻射時(shí)間60 s條件下處理,抽濾,測(cè)定提取液中花色苷的含量,方法同1.3.1。
1.3.5 輻射時(shí)間
稱取5份1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,加入30 mL 0.1%鹽酸乙醇(乙醇體積分?jǐn)?shù)為40%),浸泡1 h,然后在微波輻射功率406 W、輻射時(shí)間分別為30,60,90,120和150 s條件下處理,抽濾,測(cè)定提取液中花色苷的含量,方法同1.3.1。
1.3.6 輻射功率
稱取4份1 g鐵皮石斛葉鞘粉末,加入30 mL 0.1%鹽酸乙醇(乙醇體積分?jǐn)?shù)為40%),浸泡1 h,然后在輻射時(shí)間60 s,微波輻射功率分別為126,406,567和700 W條件下處理,抽濾,測(cè)定提取液中花色苷的含量,方法同1.3.1。
1.3.7 正交試驗(yàn)方法
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選擇浸泡時(shí)間、乙醇體積分?jǐn)?shù)、料液比、輻射時(shí)間、輻射功率進(jìn)行五因素四水平正交試驗(yàn)設(shè)計(jì),采用L16(45)正交表進(jìn)行試驗(yàn),以提取液中花色苷含量為考察指標(biāo),確定最佳工藝參數(shù)。
表1 正交因素水平
1.3.8 DPPH清除自由基能力的測(cè)定方法
稱取0.019 7 g DPPH,用無(wú)水乙醇定容至100 mL,避光保存,備用。將花色苷溶液用二倍稀釋法稀釋5組,備用。按表2中試驗(yàn)內(nèi)容,在比色管中將溶液混勻,避光室溫保存30 min后,定容至10 mL,在517 nm波長(zhǎng)處測(cè)吸光度,重復(fù)3次試驗(yàn),計(jì)算清除率=[1-(A1-A2)/A0]×100%和IC50值清除率。采用VC作對(duì)照,VC的濃度和花色苷相同,同樣采用二倍稀釋法配制5組不同濃度的VC溶液。操作步驟和計(jì)算公式與花色苷一致。
表2 DPPH清除自由基能力測(cè)定方法
1.3.9 羥自由基清除能力的測(cè)定方法
分別配置6 mmol/L水楊酸(稱取0.041 4 g水楊酸,用無(wú)水乙醇定容50 mL)、6 mmol/L硫酸亞鐵(稱取0.083 4 g硫酸亞鐵,用蒸餾水定容50 mL)和0.3%過(guò)氧化氫溶液(移取0.5 mL 30%過(guò)氧化氫,用蒸餾水定容50 mL,現(xiàn)配)。用A0組的混合液在200~700 nm下測(cè)定最大吸收波長(zhǎng)。按表3的試驗(yàn)內(nèi)容在比色管中將A0組、A1組、A2組溶液加好后,在37 ℃進(jìn)行水浴加熱30 min,再用蒸餾水定容至10 mL,在紫外/可見分光光度計(jì)測(cè)λmax的吸光度A,重復(fù)3次試驗(yàn),計(jì)算清除率= [1-(A1-A2)/A0]×100%和IC50值清除率。采用VC作對(duì)照,VC的濃度和花色苷相同,同樣采用二倍稀釋法配制5組不同濃度的VC溶液。操作步驟和計(jì)算公式與花色苷一致。
表3 羥自由基清除能力測(cè)定方法
從圖1可以看出,鐵皮石斛最大吸收波長(zhǎng)為530 nm。王立江等[12]以黑馬鈴薯鮮樣為試驗(yàn)材料,采用微波輔助有機(jī)溶劑提取法對(duì)黑馬鈴薯中花色苷的提取工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,黑馬鈴薯花色苷的最大吸收波長(zhǎng)在536 nm處。蔣海偉等[13]采用酸化乙醇作為提取劑,微波輔助提取紅米中花色苷,其最大吸收波長(zhǎng)在517 nm。任虹等[14]研究蒸汽加熱和微波加熱處理對(duì)紫甘藍(lán)花色苷及其清除自由基活性的影響,紫甘藍(lán)花色苷最大吸收波長(zhǎng)在500 nm處。根據(jù)文獻(xiàn)可知花色苷及其色素元在可見光465~550 nm波長(zhǎng)范圍內(nèi)有吸收峰[15]。由此可以判斷鐵皮石斛色素屬花色苷[16]。
圖1 鐵皮石斛花色苷可見光譜圖
2.2.1 浸泡時(shí)間對(duì)花色苷提取的影響
由圖2可知,當(dāng)浸泡時(shí)間小于4 h時(shí),隨著浸泡時(shí)間的增加,鐵皮石斛花色苷的提取含量逐漸增大;當(dāng)浸泡時(shí)間超過(guò)4 h后,鐵皮石斛花色苷的含量又開始下降,其原因可能是浸泡時(shí)間過(guò)長(zhǎng),提取劑過(guò)多進(jìn)入細(xì)胞,加以微波輔助提取,細(xì)胞內(nèi)其他物質(zhì)不斷被提取出來(lái),影響花色苷的含量。所以,浸泡時(shí)間4 h為提取鐵皮石斛花色苷最適宜的浸泡時(shí)間。
2.2.2 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)花色苷提取的影響
由圖3可知,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)在30%~50%之間,鐵皮石斛花色苷提取含量隨乙醇體積分?jǐn)?shù)增大而增大,且當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%時(shí),鐵皮石斛花色苷的含量最高。但當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)超過(guò)50%時(shí),增大乙醇體積分?jǐn)?shù),花色苷含量反而呈下降趨勢(shì)。其原因可能是乙醇體積分?jǐn)?shù)過(guò)高,將鐵皮石斛中其他易溶于乙醇的有機(jī)物也一起提取出來(lái)。所以,乙醇體積分?jǐn)?shù)50%作為提取鐵皮石斛花色苷的最佳提取劑乙醇體積分?jǐn)?shù)。
圖2 浸泡時(shí)間對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
圖3 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
2.2.3 料液比對(duì)花色苷提取的影響
由圖4可知,料液比在1∶20~1∶25(g/mL)內(nèi),隨著提取劑體積的增加,花色苷含量逐漸增大,且上升很大。但是繼續(xù)增加提取劑體積,花色苷含量緩慢下降。其原因可能是料液比大,提取劑體積大,加熱時(shí)間長(zhǎng),溫度高,使得花色苷降解。倘若一開始料液比過(guò)大,則不利于下一步的濃縮分離以及增加后面的工作能耗,所以結(jié)合經(jīng)濟(jì)角度考慮,選擇1∶25(g/mL)作為最佳料液比。
2.2.4 輻射時(shí)間對(duì)花色苷提取的影響
由圖5可知,當(dāng)輻射時(shí)間為30~60 s時(shí),花色苷含量呈上升趨勢(shì)。在60~120 s,花色苷含量呈下降趨勢(shì);但在120 s之后,增大輻射時(shí)間,花色苷含量又上升。其原因可能是在輻射時(shí)間在60~120 s時(shí),加熱時(shí)間過(guò)長(zhǎng),加熱溫度升高,使花色苷受到一定的破壞;在150 s,花色苷含量又增大,可能是因?yàn)槲⒉ㄌ崛∵^(guò)程中,電磁波把能量直接傳遞到鐵皮石斛內(nèi)部并快速加熱,使溫度快速升高,使得一些未溶于提取劑的其他色素溶解一并被提取出來(lái),增大花色苷含量。但是從節(jié)約資源、省時(shí)、省電角度考慮,150 s耗時(shí)過(guò)長(zhǎng),而且后期提純工藝較繁瑣,所以選擇60 s作為最適提取時(shí)間。
圖4 料液比對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
圖5 輻射時(shí)間對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
2.2.5 輻射功率對(duì)花色苷提取的影響
由圖6可知,微波功率在126~567 W內(nèi),隨著微波提取功率的增加,鐵皮石斛花色苷含量呈逐漸上升的趨勢(shì),且在567 W時(shí)花色苷含量最高。但是,繼續(xù)增加微波提取功率,其含量增加呈緩慢下降的趨勢(shì),這是由于微波功率過(guò)大易造成溫度過(guò)高,使部分花色苷分解,進(jìn)而降低花色苷的提取含量。所以選擇567 W為提取最適功率。
由表4可知,采用微波輔助提取鐵皮石斛花色苷,在5個(gè)單因素影響中,乙醇體積分?jǐn)?shù)極差為0.037,是對(duì)提取花色苷含量影響最小的,而料液比極差最大,影響也最大,為主要影響因素,各因素對(duì)提取花色苷含量的影響依次是料液比>輻射時(shí)間>浸泡時(shí)間>乙醇體積分?jǐn)?shù)>輻射功率。綜合所有試驗(yàn)結(jié)果,試驗(yàn)最終確定的最佳參數(shù)為乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%,料液比為1∶20(g/mL),輻射功率為406 W,輻射時(shí)間為90 s,浸泡時(shí)間為4 h。從表5中可以看出,4個(gè)因素顯著水平值均為極顯著,說(shuō)明這4個(gè)因素對(duì)試驗(yàn)的結(jié)果有顯著影響。
圖6 微波功率對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
表5 方差分析
表4 正交試驗(yàn)及結(jié)果
根據(jù)正交試驗(yàn)可知,最佳提取工藝參數(shù)為A2B1C2D3E4,即乙醇體積分?jǐn)?shù)為50%,料液比為1∶25(g/mL),微波功率為406 W,輻射時(shí)間90 s,浸泡時(shí)間4 h,按此試驗(yàn)條件再進(jìn)行3次重復(fù)試驗(yàn),提取鐵皮石斛花色苷含量為0.452,0.435和0.392 mg/g,3組鐵皮石斛花色苷含量與正交試驗(yàn)中第5組含量相差不大,說(shuō)明該組試驗(yàn)提取穩(wěn)定,因此確定A2B1C2D3E4為最佳提取工藝。
由圖7可知,當(dāng)提取條件為A2B1C2D3E4時(shí),提取2次,鐵皮石斛花色苷含量最高,為1.052 mg/g,花色苷質(zhì)量濃度為35.07 mg/L;提取3次時(shí),花色苷含量又降低,但含量比提取1次含量高。提取3次,鐵皮石斛花色苷含量有所下降的原因可能是:提取2次,鐵皮石斛濾渣已呈無(wú)色,第3次同樣條件提取,提取液幾乎呈無(wú)色,花色苷色素幾乎提取完畢,再次提取,反而將濾渣中的多糖或者其他成分提取出來(lái),影響最終的花色苷的含量。所以3最終確定以提取次數(shù)2次最佳。
圖7 提取次數(shù)對(duì)鐵皮石斛花色苷含量的影響
羥自由基是人體內(nèi)危害性較強(qiáng)的一種自由基,與機(jī)體內(nèi)分子失電子或電子轉(zhuǎn)移,來(lái)影響機(jī)體正常的生理功能。硫酸亞鐵被過(guò)氧化氫氧化為Fe3+,再與水楊酸反應(yīng)形成紫色絡(luò)合物,加入自由基清除劑后,紫色絡(luò)合物顏色變淺,且清除劑濃度越高,顏色越淺。由圖8可知,鐵皮石斛花色苷質(zhì)量濃度在2.2~35.07 μg/mL范圍內(nèi),花色苷質(zhì)量濃度增大,清除率越大,呈上升趨勢(shì),而VC的清除率趨于平緩,當(dāng)花色苷質(zhì)量濃度達(dá)到35.07 μg/mL時(shí),清除率達(dá)到97.8%。用SPSS 18.0軟件分析IC50得:鐵皮石斛花色苷的IC50(7.61 μg/mL)>VC的IC50(5.56×1020μg/mL)。鐵皮石斛花色苷具有較強(qiáng)的清除羥自由基的能力,抗氧化能力強(qiáng)于VC。
DPPH是一種紫紅色物質(zhì),DPPH自由基溶于乙醇且能穩(wěn)定存在,當(dāng)有自由基清除劑加入與之結(jié)合,會(huì)使顏色變淺,且與清除劑濃度呈一定的量效關(guān)系。由圖2可知,鐵皮石斛花色苷質(zhì)量濃度在0.3~35.07 μg/mL范圍內(nèi),花色苷濃度增大,清除率越大,呈上升趨勢(shì),而VC的清除率趨于平緩,當(dāng)花色苷質(zhì)量濃度達(dá)到35.07 μg/mL時(shí),清除率達(dá)到97.8%,VC清除率為56.7%。用SPSS 18.0軟件分析IC50得:鐵皮石斛花色苷的IC50(0.53 μg/mL)>VC的IC50(74.46 μg/mL)。鐵皮石斛花色苷具有較強(qiáng)的清除DPPH自由基的能力,抗氧化能力強(qiáng)于VC。
圖8 鐵皮石斛花色苷及VC對(duì)羥自由基的清除能力比較
圖9 鐵皮石斛花色苷及VC對(duì)DPPH的清除能力
此次試驗(yàn)利用浸泡-微波輔助聯(lián)合方法提取鐵皮石斛花色苷,得出鐵皮石斛花色苷的最大吸收波長(zhǎng),為530 nm;由單因素試驗(yàn)及正交試驗(yàn)結(jié)果可知,各因素對(duì)提取花色苷含量的影響依次是料液比>輻射時(shí)間>浸泡時(shí)間>輻射功率>乙醇體積分?jǐn)?shù)。最佳提取參數(shù)為乙醇體積分?jǐn)?shù)50%,料液比為1∶20(g/mL),輻射功率406 W,輻射時(shí)間90 s,浸泡時(shí)間4 h,提取次數(shù)2次。此時(shí),鐵皮石斛花色苷含量最高,為1.052 mg/g,花色苷質(zhì)量濃度為35.07 mg/L。通過(guò)軟件分析IC50,鐵皮石斛花色苷對(duì)清除羥自由基和DPPH自由基的IC50分別為7.61和0.53 μg/mL。VC對(duì)清除羥自由基和DPPH自由基IC50分別為5.56×1020和74.46 μg/mL。鐵皮石斛花色苷對(duì)DPPH自由基和羥自由基均有較強(qiáng)的抗氧化能力,抗氧化效果均強(qiáng)于VC,且抗氧化能力與花色苷濃度顯現(xiàn)出一定的正比關(guān)系,但對(duì)DPPH自由基的抗氧化能力要強(qiáng)于羥自由基。