秦建兵,李 雯,衣 昕,田美玲,何 輝,金國(guó)華*
(南通大學(xué)醫(yī)學(xué)院人體解剖學(xué)系,南通 226001)
細(xì)胞周期是指細(xì)胞從一次細(xì)胞分裂形成子細(xì)胞開始到下一次形成子細(xì)胞為止,在此過程中,細(xì)胞的遺傳物質(zhì)復(fù)制并均勻地分配到兩個(gè)子細(xì)胞。通過流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)DNA 含量來進(jìn)行細(xì)胞周期的分析在細(xì)胞生物學(xué)以及腫瘤生物學(xué)領(lǐng)域已愈來愈普遍。雖然此方法比較簡(jiǎn)單,但是因?yàn)椴僮髡叩氖炀毘潭纫约安煌膶?shí)驗(yàn)方法,導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)結(jié)果的重復(fù)性及數(shù)據(jù)的可信度下降。本文針對(duì)這一問題展開研究,探討不同實(shí)驗(yàn)條件對(duì)流式細(xì)胞術(shù)細(xì)胞周期結(jié)果的影響。
1.1 主要試劑和儀器 大鼠C6 腦膠質(zhì)細(xì)胞株(吉?jiǎng)P基因)、DMEM/F12 培養(yǎng)基(Corning)、胎牛血清、胰酶(Gibco)、碘化丙啶(propidium iodide,PI)/核糖核酸酶(ribonuclense,RNase)染色液(BD)、20×磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffered saline,PBS)(上海生工生物)、流式細(xì)胞儀(BD FACS Calibur)。
1.2 影響因素及實(shí)驗(yàn)分組
1.2.1 乙醇濃度對(duì)細(xì)胞周期的影響 大鼠C6 細(xì)胞株貼壁培養(yǎng)至75 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶底面積80%左右,胰酶消化,1 000 r/min 離心5 min,0.01 mol/L PBS洗2 遍,細(xì)胞計(jì)數(shù)后按1×106/管將細(xì)胞分配到若干離心管中。按照乙醇濃度分為低(50%)、中(75%)、高(100%)組。置于-20 ℃固定24 h 后檢測(cè)。
1.2.2 固定方式對(duì)細(xì)胞周期的影響 按照固定方式分為細(xì)胞沉淀滴入預(yù)冷75%乙醇組、預(yù)冷75%乙醇滴入細(xì)胞沉淀組、1 mL PBS 重懸細(xì)胞后滴入3 mL預(yù)冷無水乙醇組、3 mL 預(yù)冷無水乙醇滴入1 mL PBS 重懸細(xì)胞組。置于-20 ℃固定24 h 后檢測(cè)。
1.2.3 染色時(shí)間對(duì)細(xì)胞周期的影響 用1 mL PBS重懸細(xì)胞后滴入3 mL 預(yù)冷無水乙醇,-20 ℃固定24 h,按染色時(shí)間分為5 min、15 min、30 min、1 h、2 h、4 h、6 h、12 h、1 d、2 d、3 d、7 d 組。
1.2.4 固定時(shí)間對(duì)細(xì)胞周期的影響 用1 mL PBS重懸細(xì)胞后滴入3 mL 預(yù)冷無水乙醇,按照乙醇固定時(shí)間分為2 h、1 d、7 d、28 d 組,分別放置-20 ℃保存后檢測(cè)。
1.2.5 樣品流速對(duì)細(xì)胞周期的影響 用1 mL PBS重懸細(xì)胞后滴入3 mL 預(yù)冷無水乙醇,-20 ℃固定24 h,分為高流速組(60 μL/min)、中流速組(35 μL/min)、低流速組(12 μL/min)。
1.2.6 細(xì)胞濃度對(duì)細(xì)胞周期的影響 用1 mL PBS重懸細(xì)胞后滴入3 mL 預(yù)冷無水乙醇,-20 ℃固定24 h,分為高濃度組(1×107/mL)、中濃度組(2×106/mL)、低濃度組(0.4×106/mL)。
1.3 染色及上機(jī)檢測(cè) 各組細(xì)胞1 000 r/min 離心5 min,小心吸除固定液,加入4 mL 0.01 mol/L PBS重懸細(xì)胞,1 000 r/min 離心5 min,重復(fù)1 次,小心吸除PBS,室溫下避光加入0.5 mL PI/RNase 染液重懸細(xì)胞后待上機(jī)檢測(cè)。BD FACSCalibur 流式細(xì)胞儀,以FSC-H 為橫坐標(biāo),SSC-H 為縱坐標(biāo),設(shè)置門R1,以FL2-A 為橫坐標(biāo),F(xiàn)L2-W 為縱坐標(biāo),設(shè)置門R2,共收集R2 門內(nèi)20 000 個(gè)細(xì)胞。
1.4 細(xì)胞周期分析 利用儀器自帶Modfit 軟件(版本號(hào)3.3.11)分析DNA 面積直方圖,得出各個(gè)細(xì)胞周期的百分比和變異系數(shù)(coefficient of variance,CV)。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 各組數(shù)據(jù)用SPSS 21.0 軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì),數(shù)據(jù)以表示,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 乙醇濃度對(duì)細(xì)胞周期的影響 由圖1 可見,細(xì)胞的G2/M 期細(xì)胞與雙黏體細(xì)胞分離界限清楚,說明儀器的分辨率良好。流式散點(diǎn)圖可見無水乙醇組、50%乙醇組細(xì)胞碎片明顯增多,無水乙醇組細(xì)胞FSC 和SSC 信號(hào)減小,說明細(xì)胞脫水固縮,細(xì)胞黏連明顯,直方圖可見兩組較75%乙醇組峰寬明顯增加,CV 值增大(P<0.05),因此,后續(xù)實(shí)驗(yàn)均采用75%乙醇固定細(xì)胞。
2.2 固定方式對(duì)細(xì)胞周期的影響 1 mL PBS 重懸細(xì)胞后滴入3 mL 預(yù)冷無水乙醇組、3 mL 預(yù)冷無水乙醇滴入1 mL PBS 重懸細(xì)胞組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);細(xì)胞沉淀滴入預(yù)冷75%乙醇組、預(yù)冷75%乙醇滴入細(xì)胞沉淀組細(xì)胞黏連體增多,周期分析統(tǒng)計(jì)結(jié)果差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05),見圖2。
2.3 染色時(shí)間對(duì)細(xì)胞周期的影響 5~30 min 間各組S 期和G2/M 期數(shù)值變化較大,隨著染色時(shí)間的延長(zhǎng)直方圖中的峰變窄,CV 值也明顯減小(P<0.05),1~12 h 各組間數(shù)值基本平穩(wěn)(P>0.05),1 d 以上組細(xì)胞周期數(shù)值與1~12 h 各組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖3。
2.4 固定時(shí)間對(duì)細(xì)胞周期的影響 細(xì)胞經(jīng)75%乙醇固定后放置-20 ℃保存2 h、1 d、7 d、28 d 組之間除2 h 組CV 值稍高外,周期分析統(tǒng)計(jì)結(jié)果差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖4。
2.5 樣品上樣速度對(duì)細(xì)胞周期的影響 低流速組與高流速組及中流速組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),S 期和G2/M 期數(shù)值變化較大。且隨著流速的增大,直方圖中的峰變寬,CV 值也明顯增加(P<0.05),見圖5。
2.6 細(xì)胞濃度對(duì)細(xì)胞周期的影響 周期分析統(tǒng)計(jì)學(xué)處理結(jié)果顯示,高濃度組與低濃度組及中濃度組之間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖6。
在細(xì)胞周期的不同時(shí)期,DNA 含量存在差異,正常細(xì)胞G0/G1期具有二倍體細(xì)胞的DNA 含量(2N),G2/M 期具有四倍體細(xì)胞的DNA 含量(4N),而S期DNA 含量介于二倍體和四倍體之間[1]。PI 是一種常用的細(xì)胞核熒光染料,能嵌入堿基對(duì)之間實(shí)現(xiàn)與雙鏈DNA 結(jié)合,DNA 含量多,嵌入的染料多,熒光強(qiáng)度就高;嵌入的DNA 含量少,熒光強(qiáng)度就低。但PI 無膜通透性,不能透過活細(xì)胞膜,乙醇可通過沉淀、失活起到固定作用,同時(shí)可溶解脂質(zhì)起到破膜作用[2]。因此,經(jīng)乙醇固定,再行PI 染色,用流式細(xì)胞術(shù)分析已成為當(dāng)前一種簡(jiǎn)單、經(jīng)濟(jì)的檢測(cè)細(xì)胞周期的方法[3-7]。雖然此方法步驟簡(jiǎn)單,但由于各種實(shí)驗(yàn)條件下實(shí)驗(yàn)結(jié)果的穩(wěn)定性較差,導(dǎo)致數(shù)據(jù)平行性不好,同時(shí)樣品處理不當(dāng)導(dǎo)致周期分析的CV 值增大,從而使數(shù)據(jù)的可信度下降[8-11]。本文從細(xì)胞周期檢測(cè)過程中可能出現(xiàn)的各種影響因素和實(shí)驗(yàn)條件的變化,觀察其對(duì)細(xì)胞周期分析結(jié)果的影響,以期為廣大的流式實(shí)驗(yàn)人員,特別是初學(xué)者提供實(shí)驗(yàn)條件參考。
本研究將乙醇作為固定破膜劑使用,它簡(jiǎn)便、經(jīng)濟(jì)、無毒性,觀察到75%乙醇的固定效果無論是從細(xì)胞周期各時(shí)期的分析結(jié)果,還是CV 值大小來看,均明顯優(yōu)于無水乙醇或50%乙醇。這可能是無水乙醇濃度過高,快速固定而致固定不均勻,細(xì)胞發(fā)生脫水,發(fā)硬易碎,樣品的碎片增加,DNA 的釋放又導(dǎo)致細(xì)胞間黏連加大從而使分析結(jié)果出現(xiàn)偏差,而50%乙醇由于固定不充分也影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果。在乙醇加入方式的研究中,先將細(xì)胞團(tuán)塊用1 mL PBS 重懸后,無論是加入3 mL 預(yù)冷無水乙醇混勻還是無水乙醇加入懸液混勻,分析結(jié)果均無差異。細(xì)胞沉淀不用PBS 重懸直接加入乙醇可能因?yàn)榧?xì)胞沒有迅速分散而結(jié)團(tuán)、細(xì)胞固定不佳導(dǎo)致分析結(jié)果偏差。在染色時(shí)間的研究中,染色的初始階段因染料的結(jié)合未充分而影響了細(xì)胞周期中各期細(xì)胞百分比值,尤其是對(duì)S 期和G2/M 期的影響,經(jīng)過1 h 左右染色基本充分,各期數(shù)值在12 h 內(nèi)變化不大。乙醇固定時(shí)間的長(zhǎng)短對(duì)細(xì)胞周期的各期細(xì)胞數(shù)百分比影響不明顯,因此可以收集不同時(shí)期處理的樣品置-20 ℃保存,待收集完畢后同時(shí)上機(jī)檢測(cè),以減少實(shí)驗(yàn)誤差。流式細(xì)胞上樣的速度對(duì)分析結(jié)果影響顯著,由于流速的增加導(dǎo)致樣品流液柱直徑變大,有部分細(xì)胞通過激光束時(shí)偏離光斑中心,受到激發(fā)的能量下降,信號(hào)減弱,表現(xiàn)為直方圖的峰增寬,CV 值增大,數(shù)據(jù)可信度下降。因此流式檢測(cè)細(xì)胞周期一定要低速上樣。試劑說明書推薦染色合適的細(xì)胞濃度為2×106/mL,本研究用5 倍量的細(xì)胞染色發(fā)現(xiàn)樣品的結(jié)果偏差較大,有可能是染色不充分導(dǎo)致。細(xì)胞濃度過低時(shí)對(duì)結(jié)果影響不明顯,但大大增加了樣品的收集時(shí)間而影響實(shí)驗(yàn)的效率,若加大上樣速度又影響實(shí)驗(yàn)分析的結(jié)果,因此染色前對(duì)細(xì)胞的計(jì)數(shù)顯得尤為重要,建議最后一遍PBS 重懸細(xì)胞用流式細(xì)胞儀簡(jiǎn)單計(jì)數(shù)細(xì)胞,再離心去除PBS 加入合適量的染液。最后由于PI 染料黏附管路對(duì)儀器的性能影響較大,表現(xiàn)為CV 值的增大,因此每次檢測(cè)結(jié)束的清洗和定期的大維護(hù)也顯得非常重要。
綜上所述,建議在儀器設(shè)備狀態(tài)良好的前提下,推薦采用先將細(xì)胞沉淀用PBS 重懸成單細(xì)胞懸液,然后緩慢加入3 倍體積的預(yù)冷無水乙醇,輕輕混勻打散細(xì)胞后置于-20 ℃固定24 h 以上,按每1×106個(gè)細(xì)胞加0.5 mL 染液室溫避光染色1 h 以上,以低流速上樣檢測(cè)為最佳選擇。