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      雙孢蘑菇來源非特異性過氧合酶在畢赤酵母中的表達(dá)及生化表征

      2021-01-19 02:37:04龐能威楊博王永華
      現(xiàn)代食品科技 2021年1期
      關(guān)鍵詞:過氧合酶底物

      龐能威,楊博,王永華

      (1.華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510006)

      (2.華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510640)

      非特異性過氧合酶(Unspecific peroxygenase,UPO,EC 1.11.2.1)屬于血紅素氧化酶超家族的一員[1],與單加氧酶 P450的催化功能相似,它能對(duì)一系列底物進(jìn)行氧化并表現(xiàn)產(chǎn)物的出位置選擇性和立體選擇性。P450的催化反應(yīng)需要利用O2分子作為供氧劑,同時(shí)依賴 NAD(P)H輔助催化氧化過程的發(fā)生。而UPO可直接催化轉(zhuǎn)移H2O2中的氧分子到底物中,無需額外的輔因子參與,所以 UPO具有更高的工業(yè)應(yīng)用價(jià)值。除了催化有機(jī)化合物的非活性C-H鍵之外,UPO還可以實(shí)現(xiàn)鹵代芳香化合物的氧化[2]、含有C=C鍵化合物的環(huán)氧化[3]和硫化物的氧化[4]等,因此其在食品原料加工[5]、醫(yī)藥行業(yè)[6]和環(huán)境治理[7]等領(lǐng)域有巨大的應(yīng)用潛力。

      研究發(fā)現(xiàn),UPO主要存在于雙核菌亞界(Dikarya)和高等真菌界的子囊菌門(Ascomycota)和擔(dān)子菌門(Basidiomycota)中[1]。由于真菌孢子難以實(shí)現(xiàn)高密度發(fā)酵,從而導(dǎo)致大規(guī)模獲得野生型UPO十分困難,目前只有少數(shù) UPO被表達(dá)和鑒定。因此異源宿主重組表達(dá)是獲得 UPO重要的途徑之一,然而異源宿主重組表達(dá)具有活力的非特異性過氧合酶一直是巨大的挑戰(zhàn)[8,9],目前報(bào)道的十余種UPO,僅有六種UPO實(shí)現(xiàn)了異源表達(dá)。隨著高通量基因組測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,大量微生物基因組信息被儲(chǔ)存在公共生物數(shù)據(jù)中。利用生物信息學(xué)方法從海量數(shù)據(jù)中獲得假定的酶基因序列,是獲得有價(jià)值酶制劑的重要途徑之一。

      雙孢蘑菇(Agaricus bisporus)是自然界中的一種常見食用菌,它具有較強(qiáng)降解腐殖質(zhì)的能力,因此能更好地適應(yīng)復(fù)雜的營(yíng)養(yǎng)環(huán)境。但是,目前尚不完全了解雙孢蘑菇利用各種養(yǎng)分資源的機(jī)制。此前Emmanuelle Morina等[10]提出假說:雙孢蘑菇可能已經(jīng)進(jìn)化出了其特有的代謝策略和生態(tài)適應(yīng)性,這都源于它具有的獨(dú)特的底物轉(zhuǎn)化酶,而 UPO正是該類物種特有的酶之一。本研究實(shí)現(xiàn)了來自Agaricus bisporus var. bisporus的非特異性過氧合酶(AbvbUPO)基因在畢赤酵母GS115進(jìn)行異源分泌表達(dá)并初步研究了其催化特性,為繼續(xù)探究其底物特異性揭示解其環(huán)境適應(yīng)性的可能原因打下基礎(chǔ),以期獲得生物化工和食品化工領(lǐng)域應(yīng)用的UPO酶制劑。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 菌種與質(zhì)粒

      畢赤酵母表達(dá)菌株GS115,質(zhì)粒pPIC9K均為本實(shí)驗(yàn)室保存,大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)自唯地生物科技有限公司。

      1.1.2 生化試劑

      限制性內(nèi)切酶BamHI,高保真DNA聚合酶購(gòu)自TaKaRa大連生物工程公司;無縫克隆試劑盒購(gòu)自中美泰和生物技術(shù)(北京)有限公司;質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自生工生物工程(上海)股份有限公司;Westernblot的一抗為小鼠抗His-tag單克隆抗體,二抗為山羊抗小鼠IgG(H&L)二抗(HRP標(biāo)記),均購(gòu)自金瑞斯生物科技公司。

      1.1.3 主要儀器設(shè)備

      EDG-810型PCR儀,東勝創(chuàng)新生物技術(shù)科技有限公司;生化培養(yǎng)箱,重慶市永生試驗(yàn)儀器廠;DYY-8C型電泳儀,北京市六一儀器廠;SKY2102C型搖床,SUKUN;全自動(dòng)凝膠成像儀,BIO-RAD;7000D型 GC-TQ/MS,安捷倫科技有限公司;HP-INNOWax色譜柱,安捷倫科技有限公司。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 非特異性過氧合酶AbvbUPO序列的合成和分析

      AbvbUPO基因序列(XP_006457061.1)委托上海生工生物工程有限公司合成。使用DNAMAN軟件進(jìn)行序列的對(duì)比,使用ESPript[11](網(wǎng)站)呈現(xiàn)同源比對(duì)結(jié)果。

      1.2.2 非特異性過氧合酶AbvbUPO的基因克隆

      利用 PCR擴(kuò)增技術(shù)獲得目的基因片段(上游引物:5’-GAGGCTGAAGCTTACGTAGAATCACCAGG TGCTCCTCCTGGA-3’;下游引物:5’-TTAATGATGA TGATGATGATGGGATCCTTAATTGTCATTCCCATA GGG-3’),擴(kuò)增條件如下:98 ℃ 5 min,98 ℃ 15 s、55 ℃ 15 s、72 ℃ 1 min 共30 個(gè)循環(huán),循環(huán)結(jié)束后 72 ℃保持5 min。將BamHI單酶切后的pPIC9K載體與擴(kuò)增得到的目的基因進(jìn)行連接,轉(zhuǎn)至DH5α大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中并涂布至含有100 μg/mL氨芐青霉素的固體LB平板。次日,提取重組質(zhì)粒并送往上海生工公司測(cè)序。

      1.2.3 重組蛋白AbvbUPO的表達(dá)

      (1)重組酵母的搖瓶發(fā)酵:將重組質(zhì)粒pPIC9K-AbvbUPO電轉(zhuǎn)化至P. pastorisGS115中,種子液按10%接種量接種至100 mL的BMGY液體培養(yǎng)基中30 ℃、200 r/min培養(yǎng)。24 h后將發(fā)酵液低溫離心,去除上清液后加入100 mL的BMMY培養(yǎng)基進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),每隔24 h補(bǔ)加0.5 mL的甲醇。甲醇誘導(dǎo)72 h后停止培養(yǎng),將發(fā)酵液進(jìn)行低溫離心,收集上清液,利用 10 ku截留超濾管進(jìn)行濃縮,濃縮后用SDS-PAGE凝膠電泳和Western blot檢測(cè)AbvbUPO在P. pastorisGS115中的表達(dá)情況。

      (2)重組酵母的發(fā)酵罐發(fā)酵:二級(jí)種子液按10%接種量接種,30 ℃、200 r/min培養(yǎng)24 h。將培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的二級(jí)種子液按 10%(V/V)接種到經(jīng)過高壓滅菌的5 L發(fā)酵罐中(含3 L基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基:26.7 mL/L的85%磷酸,0.93 g/L的CaSO4·2H2O,14.9 g/L的MgSO4·7H2O,18.2 g/L的K2SO4,7.13 g/L 的KOH,40 g/L的甘油,滅菌后加入 PTM1微量元素至 12 mL/L),30 ℃、800 r/min培養(yǎng)。當(dāng)基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基的甘油被消耗完時(shí),用 50%(V/V)的甘油進(jìn)行補(bǔ)料(含12 mL/L的PTM1微量元素),流速根據(jù)溶氧(DO)調(diào)整,使溶解氧濃度保持在40%左右。當(dāng)濕重達(dá)到160 g/L時(shí)停止補(bǔ)料并饑餓培養(yǎng)1 h,饑餓培養(yǎng)結(jié)束后,將溫度設(shè)為22 ℃,pH控制在6.0左右。流加甲醇進(jìn)行低溫誘導(dǎo)使其溶氧控制在40%左右至132 h。酶液用10 ku切向流超濾膜包進(jìn)行濃縮后檢測(cè)重組蛋白的表達(dá)情況和酶活力。

      1.2.4 UPO活力檢測(cè)

      本實(shí)驗(yàn)用2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS)作為底物檢測(cè)AbvbUPO的酶活[12]。1個(gè)酶活力單位定義為:在25 ℃和pH 4.0條件下,每分鐘水解1 μmol底物(ABTS)生成對(duì)應(yīng)產(chǎn)物(ABTS自由基)所需的酶量為1個(gè)酶活單位(U)。

      1.2.5 SDS-PAGE和Westernblot檢驗(yàn)

      SDS-PAGE:將蛋白質(zhì)樣品用5%的濃縮膠濃縮,并通過 10%的分離凝膠進(jìn)行不同分子量蛋白質(zhì)的分離,最后將分離凝膠用考馬斯藍(lán)R250染色。

      Westernblot:將裝有SDS-PAGE凝膠和0.2 μm聚偏二氟乙烯膜(PVDF)的電轉(zhuǎn)印夾放入電泳槽中低溫轉(zhuǎn)印。轉(zhuǎn)印結(jié)束后,PVDF膜用 5%(m/V,TBST溶解)脫脂奶粉室溫封閉2 h,然后與小鼠抗His標(biāo)簽抗體(Genscript,中國(guó)上海)一起低溫過夜孵育,孵育結(jié)束后用TBTS緩沖液清洗,隨后用山羊抗小鼠IgG(H&L)二抗(HRP標(biāo)記)孵育,最后用DAB顯色液(Solarbio,中國(guó)上海)顯色以驗(yàn)證重組 His-tag-AbvbUPO蛋白。

      1.2.6AbvbUPO的酶學(xué)性質(zhì)表征

      1.2.6.1 粗酶液的緩沖液置換

      為了避免酶發(fā)酵液中離子成分對(duì)酶活力造成影響,進(jìn)行酶活性評(píng)估前需對(duì)原有的緩沖液進(jìn)行置換。利用10 ku孔徑截留的超濾管置換緩沖液,按照粗酶液與20 mM的磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)的比例為1:10添加磷酸鹽緩沖液,置換緩沖液多次至發(fā)酵罐緩沖液成分為微量為止。

      1.2.6.2 最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性

      最適反應(yīng)溫度:按照方法1.2.4的活性檢測(cè)方法,檢測(cè)25~42 ℃范圍內(nèi)AbvbUPO酶液催化ABTS的活性變化。緩沖體系為 100 mM 的磷酸鈉緩沖液(pH 4.0),反應(yīng)時(shí)間為10 min。熱穩(wěn)定性:測(cè)定AbvbUPO酶液在30、35和40 ℃下孵育10~120 min下的殘余酶活力。

      1.2.6.3 最適反應(yīng)pH

      以ABTS為底物,在pH范圍為3.0~7.0的緩沖液下測(cè)酶活性的變化,其他條件保持不變。其中 pH 3.0~5.0范圍所使用緩沖液為100 mM的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,pH 6.0~7.0的范圍所使用緩沖液為100 mM磷酸鹽緩沖液。

      1.2.6.4 過氧化氫耐受性

      將AbvbUPO酶液與不同濃度(2、5、10、20 mM)的H2O2進(jìn)行等體積孵育,孵育5 min后按照反應(yīng)體系內(nèi)H2O2等量的原則調(diào)整加入H2O2的量進(jìn)行殘余活力測(cè)定。

      1.2.6.5 酶級(jí)聯(lián)催化反應(yīng)及產(chǎn)物檢測(cè)

      向5 mL旋蓋玻璃瓶中依次添加400 μL的50 mM磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)、100 μL的1 M氯化膽堿溶液,充氧后,加入50 μL的100 μM膽堿氧化酶(AnChOx)酶液,400 μL的AbvbUPO酶液,5 mM乙基苯,最后用50 mM的磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)補(bǔ)足1 mL。玻璃瓶放置于恒溫油浴鍋,于反應(yīng)溫度為 30 ℃、攪拌速度為500 r/min條件下反應(yīng),反應(yīng)結(jié)束后用乙酸乙酯萃取,離心后取上層有機(jī)層進(jìn)行GC-MS檢測(cè)分析。

      GC-MS檢測(cè)升溫條件:以10 ℃/min的升溫速率從最初的50 ℃升溫至190 ℃,保持3 min,以5 ℃/min的升溫速率從190 ℃升溫至230 ℃,然后保持6 min。

      產(chǎn)物濃度的計(jì)算:精確稱取β-苯乙醇,配置成1、2、3、4、5 mM的β-苯乙醇溶液,通過對(duì)標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行GC-MS檢測(cè),根據(jù)氣相色譜圖的吸收峰繪制β-苯乙醇的濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線。將萃取物中保留時(shí)間與產(chǎn)物相對(duì)應(yīng)的吸收峰代入標(biāo)準(zhǔn)曲線即得產(chǎn)物濃度,苯乙酮的含量?jī)H為相對(duì)定量。

      1.2.7 數(shù)據(jù)處理

      用Origin 8.5軟件作圖并用SPSS 9.0進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 非特異性過氧合酶AbvbUPO序列比對(duì)分析

      對(duì)目前報(bào)道的UPO酶基因進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)UPO催化保守序列為 Pro-Cys-Pro(PCP)、Glu-Gly-Asp(EGD)和酸堿催化劑對(duì) Arg-Glu(R-E),其中 Arg和Glu充當(dāng)酸堿對(duì)在過氧化物酶催化活性中間體的形成起著重要的穩(wěn)定作用[8]。AbvbUPO成熟肽基因的分子量為984 bp,編碼328個(gè)氨基酸,蛋白分子量理論值大小為 35 ku,DNAMAN軟件序列比對(duì)分析發(fā)現(xiàn)AbvbUPO 與Agrocybe aegeritaUPO(AaeUPO)、Coprinus radiansUPO和Coprinopsis cinereaUPO中氨基酸序列存在38.64%~62.93%的相似性。同源序列對(duì)比如圖1所示,AbvbUPO具有UPO的催化保守序列,即 Pro81-Cys82-Pro83,Glu168-Gly169-Asp170和Arg235-Glu242,提示AbvbUPO可能具有UPO的催化特性。

      圖1 AbvbUPO的序列比對(duì)及同源性分析Fig.1 Multiple sequence alignment of AbvbUPO and its homologs

      2.2 非特異性過氧合酶AbvbUPO基因克隆及表達(dá)

      質(zhì)粒譜圖如圖2所示,基因片段與帶有組氨酸標(biāo)簽的pPIC9K載體連接后轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α感受態(tài)中。菌落PCR呈陽(yáng)性的轉(zhuǎn)化子送往測(cè)序中心測(cè)序,進(jìn)一步確認(rèn)AbvbUPO成功克隆到pPIC9K載體上。

      真核表達(dá)系統(tǒng)具有完善的翻譯后修飾功能,可有效提升異源表達(dá)的蛋白可溶性及活性,因此選用了畢赤酵母GS115作為表達(dá)宿主。然而畢赤酵母重組菌在搖瓶發(fā)酵中,沒有檢測(cè)出目的蛋白條帶及酶活,故將畢赤酵母重組菌在 5 L發(fā)酵罐中進(jìn)行高密度發(fā)酵,Western blot結(jié)果顯示AbvbUPO在畢赤酵母GS115中表達(dá)的分子量為 35 ku(圖 3)。濃縮酶液具有氧化ABTS底物的酶活力,其 132 h發(fā)酵單位活力為45399.26 U/L。實(shí)驗(yàn)結(jié)果與Miguel Alcalde等[9]的研究結(jié)果一致,克隆至畢赤酵母X33的野生型AaeUPO在小型發(fā)酵中,表達(dá)量幾乎無法達(dá)到檢測(cè)限,提示野生型UPO的表達(dá)量低,小型發(fā)酵無法達(dá)到UPO的蛋白質(zhì)及酶活的檢測(cè)水平。目前,僅有AaeUPO在酵母中得以表征,Miguel Alcalde等[13]在畢赤酵母中,利用發(fā)酵罐高密度發(fā)酵AaeUPO定向進(jìn)化后的突變體PaDa-I,培養(yǎng)6 d酶活可達(dá)232000 U/L。

      圖2 質(zhì)粒譜圖和瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)菌落PCRFig.2 Plasmid and agarose gel electrophoresis of colony PCR

      圖3 SDS-PAGE和Western blot檢測(cè)重組蛋白在P. pastoris GS115中表達(dá)Fig.3 SDS-PAGE and western blot analysis of the expression of the recombinant protein in P. pastoris GS115

      2.3 AbvbUPO的酶學(xué)性質(zhì)表征

      2.3.1 溫度對(duì)AbvbUPO活力的影響

      圖4 非特異性過氧合酶AbvbUPO最適反應(yīng)溫度Fig.4 Optimum temperature of AbvbUPO

      本實(shí)驗(yàn)針對(duì)酶反應(yīng)時(shí)的最適溫度和熱穩(wěn)定性進(jìn)行考察。如圖4所示,AbvbUPO酶液的最適反應(yīng)溫度為35 ℃、30 ℃和 40 ℃可保持最大活力的 73.39~78.40%(圖4)。目前被研究最透徹的AaeUPO的最適反應(yīng)溫度為30 ℃[14,15],其余關(guān)于UPO催化研究的報(bào)道,但研究設(shè)計(jì)溫度普遍設(shè)置在 23~40 ℃之間[3,16,17],提示 UPO無法在高溫下實(shí)現(xiàn)高效催化反應(yīng),AbvbUPO亦然。

      酶的熱穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)顯示,AbvbUPO在不同溫度孵育10 min后,酶活性急劇降低,40 ℃下孵育10 min之后,僅呈現(xiàn) 52.97%的活性(圖 5),這表明該酶蛋白解折疊所需要的能量較低,推測(cè)是 UPO的普遍特征。Diana等[18]對(duì)AaeUPO的熱孵育實(shí)驗(yàn)也表明UPO的熱不穩(wěn)定性,在63 ℃孵育5 min后,AaeUPO的活力下降超過80%。提高UPO的最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性,對(duì)于UPO的研究有著重大意義。

      圖5 非特異性過氧合酶AbvbUPO熱穩(wěn)定性Fig.5 Thermostability of AbvbUPO

      2.3.2 溶液pH對(duì)AbvbUPO活力影響

      圖6 AbvbUPO催化ABTS底物的最適pHFig.6 Optimum pH of AbvbUPO catalyzing ABTS

      酶活檢測(cè)體系不變,僅對(duì)緩沖液的pH進(jìn)行調(diào)整,由于pH小于3.0時(shí),反應(yīng)體系內(nèi)會(huì)出現(xiàn)蛋白質(zhì)析出的現(xiàn)象,故僅對(duì)pH大于3.0的緩沖液進(jìn)行比較(圖6)。結(jié)果顯示,AbvbUPO催化ABTS的最適pH為3.0~4.0,與AaeUPO[9]和Marasmius rotulaUPO(MroUPO)[19]的最適pH一致,表明該酶為酸性條件下催化ABTS活性更佳。

      2.3.3AbvbUPO過氧化氫耐受性

      UPO是血紅素氧化物酶(HTP),需要H2O2作為共底物,然而氨基酸可能會(huì)被 H2O2氧化,從而影響酶的活性[20],此外,H2O2可能將血紅素氧化為α-內(nèi)消旋-羥基-血紅素,導(dǎo)致HTP的不可逆失活[21]。所以利用UPO作為生物催化劑時(shí)往往需要探索適當(dāng)?shù)腍2O2濃度以降低酶活力的損失。結(jié)果表明,AbvbUPO不適宜在高濃度 H2O2的環(huán)境下長(zhǎng)時(shí)間進(jìn)行生物催化,AbvbUPO被5 mM的H2O2孵育5 min后,酶活力僅為初始活性的54.98%(圖7)。據(jù)報(bào)道[8],在不同濃度H2O2與AaeUPO共底物的催化實(shí)驗(yàn)中,當(dāng)H2O2濃度大于2.5 mM時(shí),產(chǎn)物的生成率會(huì)隨著過氧化氫濃度的升高而降低,Karich Alexander等[22]提出,UPO的活性的降低與血紅素的丟失有關(guān),推斷是由于反應(yīng)中的羥基自由基使血紅素形成綠色素和膽綠素進(jìn)而終止催化反應(yīng)。為了更真實(shí)地反映其底物選擇性和催化潛力,需要建立一種降低反應(yīng)體系中 H2O2濃度的辦法來降低其在催化過程中的酶活損失。

      圖7 AbvbUPO過氧化氫耐受性Fig.7 H2O2-tolerance of AbvbUPO

      2.4 AbvbUPO參與的級(jí)聯(lián)催化反應(yīng)體系建立

      圖8 AbvbUPO酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)示意圖Fig.8 Figure of AbvbUPO enzymatic cascade reaction

      表1 AbvbUPO酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)產(chǎn)物得率表Table 1 Productyield of AbvbUPO enzymatic cascade reaction

      如上文所述,AbvbUPO不耐受高濃度的H2O2,因此采用原位生成 H2O2的酶級(jí)聯(lián)反應(yīng)代替一次性加入過量的H2O2作為共底物[14,23]。本實(shí)驗(yàn)原位生成H2O2方法(圖 8)是使用氯化膽堿作為電子供體,通過來自煙草節(jié)桿菌來源的膽堿氧化酶還原分子氧來產(chǎn)生H2O2。β-苯乙醇是一種重要的食用香精香料,被廣泛地應(yīng)用在食品風(fēng)味提升工藝之中[24],而它的底物乙基苯也是 UPO的常用底物[14],因此利用該催化反應(yīng)驗(yàn)證AbvbUPO級(jí)聯(lián)催化反應(yīng)活性可行性。氣質(zhì)聯(lián)用分析結(jié)果表明(圖9),保留時(shí)間為4.74 min、9.07 min和9.15 min的產(chǎn)物分別為乙基苯、β-苯乙醇及苯乙酮。AbvbUPO能夠氧化乙基苯為β-苯乙醇,且4 h內(nèi)轉(zhuǎn)化率可達(dá)14.40%,但隨后轉(zhuǎn)化率逐漸降低,推測(cè)是該酶熱穩(wěn)定性弱,長(zhǎng)時(shí)間30 ℃孵育會(huì)造成酶活力的損失,同時(shí)產(chǎn)物中伴有副產(chǎn)物苯乙酮,因?yàn)榉磻?yīng)過程中苯乙醇產(chǎn)物被AbvbUPO繼續(xù)氧化,導(dǎo)致了苯乙酮的生成。Frank Hollmann等人[5]研究AaeUPO羥基化乙基苯的反應(yīng)實(shí)驗(yàn)表明,反應(yīng)前期苯乙酮會(huì)大量增加,因?yàn)楸揭掖嫉姆e累抑制了過氧化,在反應(yīng)30~60 min時(shí)苯乙酮增長(zhǎng)速率開始下降并且趨于穩(wěn)定。本實(shí)驗(yàn)表明,AbvbUPO能與膽堿氧化酶實(shí)現(xiàn)級(jí)聯(lián)催化反應(yīng),使AbvbUPO在有機(jī)合成及相關(guān)領(lǐng)域具有很大的應(yīng)用潛力。

      圖9 GC-MS檢測(cè)AbvbUPO酶級(jí)聯(lián)催化反應(yīng)Fig.9 GC-MS analysis data of AbvbUPO enzyme cascade reaction

      3 結(jié)論

      本研究將來源于Agaricus bisporus var. bisporus的非特異性過氧合酶AbvbUPO為目標(biāo)蛋白,在畢赤酵母GS115中成功異源表達(dá),并研究其催化ABTS的最適pH,最適溫度和熱穩(wěn)定性。除此之外,針對(duì)血紅素氧化酶不耐受H2O2的問題進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)AbvbUPO的H2O2耐受性較差,故通過原位H2O2生成技術(shù),降低反應(yīng)體系中H2O2的濃度,再串聯(lián)AbvbUPO催化底物的氧化。本文研究結(jié)果為非特異性過氧合酶的異源表達(dá)和進(jìn)一步研究其底物選擇性搭建了可行的平臺(tái)。

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