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      穿龍薯蕷莖段組培體系的建立

      2021-01-16 13:07:00黨裳霓高潤(rùn)梅
      種子 2020年12期
      關(guān)鍵詞:薯蕷腋芽莖段

      黨裳霓, 劉 影, 高潤(rùn)梅

      (山西農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院, 山西 太谷 030801)

      穿龍薯蕷(Dioscoreanipponica)為薯蕷科(Dioscoreaceae)多年生纏繞草質(zhì)藤本,廣泛分布于我國(guó)東北、華北、西北(除新疆)及河南、山東、安徽、浙江、江西 (廬山) 、陜西 (秦嶺以北) 、四川等地[1]。其根狀莖是提取藥用成分薯蕷皂甙的重要原料[2]。目前對(duì)藥源材料的需求持續(xù)增加,但穿龍薯蕷野生資源量日趨減少,已處于瀕危狀態(tài),屬國(guó)家二級(jí)保護(hù)植物[3]。生產(chǎn)上雖可通過(guò)根狀莖繁殖或播種的方法解決對(duì)藥源材料的需求,但人工栽培存在許多不足,如以根狀莖繁殖,不僅要消耗大量的根狀莖,而且難以保證藥材質(zhì)量,繁殖速度較慢,人工栽培一般3年后采收;如采用種子進(jìn)行繁殖,不僅萌發(fā)率低,苗期長(zhǎng),且定植5年后才可采收[4-6]。組織培養(yǎng)技術(shù)已廣泛應(yīng)用于植物良種培育與快速繁殖,為穿龍薯蕷的大規(guī)模種植開(kāi)辟了新途徑,對(duì)解決生產(chǎn)中種苗缺乏的突出矛盾,提高穿龍薯蕷的產(chǎn)量和品質(zhì)具有重要意義[7]。本試驗(yàn)以穿龍薯蕷幼嫩帶節(jié)莖段為試材,分析消毒時(shí)間、培養(yǎng)基激素配比對(duì)該種腋芽誘導(dǎo)、繼代培養(yǎng)和生根培養(yǎng)等的影響,以期建立穩(wěn)定、高效的穿龍薯蕷離體再生體系,實(shí)現(xiàn)穿龍薯蕷生產(chǎn)的產(chǎn)業(yè)化,促進(jìn)穿龍薯蕷種植產(chǎn)業(yè)的健康發(fā)展。

      1 材料和方法

      1.1 植物材料

      穿龍薯蕷植株引種自山西省陽(yáng)城縣蟒河國(guó)家級(jí)自然保護(hù)區(qū),2015年春栽種于山西農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院苗圃。

      2016年6月,取生長(zhǎng)健壯的穿龍薯蕷植株幼嫩莖段,剪成長(zhǎng)1.5~2 cm的帶芽莖段,置于飽和洗衣粉溶液的燒杯中清洗后流水持續(xù)沖洗30 min,再用蒸餾水沖洗3遍。將供試材料放入超凈工作臺(tái)進(jìn)行消毒[8]。

      1.2 外植體消毒

      75%酒精外植體表面消毒30 s后,以0.1% HgCl2進(jìn)行消毒處理,分別設(shè)置3 min、5 min和8 min的處理時(shí)間,比較不同時(shí)間處理的消毒效果。接種30 d后,統(tǒng)計(jì)莖段的褐化死亡率、污染率和萌芽率。其中外植體無(wú)污染、未褐變視之為成活,之后有效回收HgCl2[9]。

      1.3 莖段離體培養(yǎng)

      試驗(yàn)所用的培養(yǎng)基中均添加蔗糖30 g·L-1,瓊脂7 g·L-1,pH調(diào)至6.0,121 ℃高壓滅菌30 min。所有培養(yǎng)物均于(25±1)℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),光照強(qiáng)度1 500 lx,光暗各12 h。

      1.3.1誘導(dǎo)培養(yǎng)基激素配比

      采用3因素3水平的正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)。3個(gè)因素為基本培養(yǎng)基、NAA、6-BA,其中,選取3種培養(yǎng)基MS、B5、1/2 MS;NAA選取0、0.1 mg·L-1和0.2 mg·L-13個(gè)濃度水平;6-BA選取0、1.0 mg·L-1和2.0 mg·L-13個(gè)濃度水平,試驗(yàn)共有9種組合培養(yǎng)基。外植體按適宜消毒時(shí)間處理后,分別接種于上述9種培養(yǎng)基中,每種培養(yǎng)基接種20瓶,每瓶接種3個(gè)外植體,接種30 d后統(tǒng)計(jì)莖段的污染率、褐化死亡率及萌芽率。

      1.3.2增殖培養(yǎng)基激素配比

      采用2因素3水平實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。將初代培養(yǎng)得到的瓶苗剪成1~2 cm帶一葉一節(jié)的莖段轉(zhuǎn)接到增殖培養(yǎng)基中。2因素為NAA、6-BA,其中,NAA選取0.1 mg·L-1、0.2 mg·L-1和0.3 mg·L-13個(gè)濃度;6-BA選取1.0 mg·L-1、2.0 mg·L-1和3.0 mg·L-13個(gè)濃度水平,試驗(yàn)共有9種組合。每個(gè)處理方式接種20瓶,每瓶接種3株。以30 d為1個(gè)繼代周期,繼代3次后轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)基,統(tǒng)計(jì)增殖系數(shù)和叢生芽數(shù),觀察芽的長(zhǎng)勢(shì)。

      1.3.3生根培養(yǎng)基激素配比

      以1/2 MS為基本培養(yǎng)基,添加不同濃度的IBA、6-BA、NAA于培養(yǎng)基中,進(jìn)行生根培養(yǎng)。將生長(zhǎng)至3~4 cm長(zhǎng)勢(shì)較為健壯的芽苗轉(zhuǎn)入不同生根培養(yǎng)基中進(jìn)行根誘導(dǎo)。其中,NAA選取0.1 mg·L-1、0.2 mg·L-1、0.5 mg·L-1和1.0 mg·L-14個(gè)梯度;6-BA濃度設(shè)置為1.0 mg·L-1;IBA濃度設(shè)置為0.5 mg·L-1。每種培養(yǎng)基接種30瓶,每瓶接種3株,60 d后觀察不同處理之間的生長(zhǎng)狀況、生根率、根數(shù)、根長(zhǎng)及株高情況。

      1.3.4瓶苗移栽

      由于組培苗幼嫩,一直處于可控的環(huán)境下生長(zhǎng),抗性較低。所以移栽前要先煉苗,提高其成活率。

      將生根培養(yǎng)后生長(zhǎng)良好的試管苗移至(25±1)℃、50%~70%遮陰度的大棚內(nèi),進(jìn)行光培煉苗,自然光下閉瓶煉苗3 d[10]。再將封口膜取下2~3 d,煉苗過(guò)程中,每天選擇光照弱的時(shí)候通風(fēng)2次,每次30 min[11]。取出幼苗,洗去根部瓊脂,移栽于蛭石∶腐殖土∶河沙=1∶1∶1的基質(zhì)中[12]。并在移栽后滿足組培苗所需水分,保持較高的濕度,每天噴霧噴施適量水,20 d后統(tǒng)計(jì)移栽成活率。

      1.4 數(shù)據(jù)分析

      采用Microsoft Excel、SPSS、DPS軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,顯著水平為0.05和0.01。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 消毒時(shí)間對(duì)外植體的影響

      以污染率、褐化死亡率和萌芽率為評(píng)價(jià)指標(biāo),分析0.1% HgCl2不同消毒時(shí)間對(duì)外植體的影響,見(jiàn)表1。

      表1 消毒時(shí)間對(duì)外植體滅菌效果的影響

      由表1可知,HgCl2消毒不同時(shí)間,對(duì)萌芽率的影響達(dá)顯著水平(p<0.01),隨著滅菌時(shí)間的增加,污染率逐漸降低,在5 min時(shí)外植體萌芽率最高(83.33%)。由于材料較幼嫩,消毒時(shí)間繼續(xù)延長(zhǎng),外植體褐化死亡現(xiàn)象加重,萌芽率顯著下降,在8 min時(shí)死亡率達(dá)36.67%,萌芽率降到58.33%。可見(jiàn),以0.1% HgCl2作為腋芽誘導(dǎo)外植體消毒溶液,消毒時(shí)間以5 min為宜。

      2.2 蕷莖段腋芽誘導(dǎo)NAA與6-BA濃度的優(yōu)化

      以萌芽率為評(píng)價(jià)指標(biāo),結(jié)合腋芽生長(zhǎng)情況,分析不同處理對(duì)腋芽萌發(fā)的影響,結(jié)果見(jiàn)表2。

      表2 不同濃度NAA與6-BA組合對(duì)腋芽萌發(fā)的影響

      由表2可知,基本培養(yǎng)基類(lèi)型、2種外源激素NAA和6-BA的濃度對(duì)腋芽誘導(dǎo)效果存在顯著差異(p<0.01),2.0 mg·L-16-BA對(duì)腋芽萌發(fā)的效果較好,1.0 mg·L-1次之。在MS、1/2 MS和B5培養(yǎng)基中,2.0 mg·L-16-BA時(shí)萌芽率較高,分別為86.67%、75.00%和73.33%。因此,在0~2.0 mg·L-1的6-BA濃度范圍內(nèi),萌芽率隨6-BA濃度增加呈上升趨勢(shì),且MS培養(yǎng)基是腋芽誘導(dǎo)的適宜培養(yǎng)基。結(jié)合萌芽率和生長(zhǎng)狀況等,不定芽誘導(dǎo)的適宜培養(yǎng)基為MS+0.2 mg·L-1NAA+2.0 mg·L-16-BA,萌芽率為86.67%,且生長(zhǎng)勢(shì)好,葉色濃綠。

      2.3 腋芽繼代培養(yǎng)

      對(duì)不同激素配比培養(yǎng)條件下不定芽的增殖情況進(jìn)行極差分析,如表3所示。

      由表3可知,6-BA對(duì)穿龍薯蕷再生苗的增殖影響大于NAA的影響。從不同處理的平均萌芽率(k)的大小可以看出,穿龍薯蕷不定芽增殖培養(yǎng)的適宜水平激素組合為 0.2 mg·L-1NAA+ 3.0 mg·L-16-BA,增殖系數(shù)為4.58;6-BA濃度為1.0 mg·L-1和2.0 mg·L-1時(shí),苗弱發(fā)黃,長(zhǎng)勢(shì)較弱;6-BA濃度為3.0 mg·L-1時(shí),不僅增殖率高,而且幼苗健壯,葉色淡綠,生長(zhǎng)速度快。因此,較低的NAA/6-BA濃度比顯著促進(jìn)穿龍薯蕷芽增殖。

      表3 不同濃度NAA與6-BA組合對(duì)增殖系數(shù)影響的極差分析

      2.4 生根培養(yǎng)

      將經(jīng)繼代培養(yǎng)后高達(dá)3 cm的小植株,接種于添加不同激素的1/2 MS生根培養(yǎng)基上。10 d左右開(kāi)始出現(xiàn)白色根原基,20 d左右組培苗莖段底部逐漸出現(xiàn)白色根,一個(gè)月后小苗生根趨于穩(wěn)定。

      方差分析結(jié)果(表4)表明,添加單一激素NAA生根效果明顯優(yōu)于其它處理。與其它處理相比,1號(hào)培養(yǎng)基生根效果最好,誘導(dǎo)的根系粗壯且生長(zhǎng)較快,葉色濃綠,有明顯主根,生根率達(dá)到峰值73.34%。而對(duì)照的生根率僅次于1號(hào)培養(yǎng)基,說(shuō)明在不添加外源激素的情況下,同樣可以誘導(dǎo)生根,生根率為60.02%,但根較細(xì)弱,葉色黃綠,無(wú)明顯的主根,多為須根。隨著NAA濃度增加,穿龍薯蕷根的長(zhǎng)勢(shì)表現(xiàn)出先增后減的趨勢(shì)。NAA濃度為0.1 mg·L-1和0.5 mg·L-1時(shí)利于芽苗生根,濃度過(guò)高(1.0 mg·L-1)生根率會(huì)降低,影響生根效果。在NAA基礎(chǔ)上添加6-BA或IBA時(shí),生根率低,且株高、根數(shù)和根長(zhǎng)均低于含單一激素NAA(處理1、2、3)和對(duì)照。

      表4 不同植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)生根培養(yǎng)的影響

      生根后的幼苗在上述6種培養(yǎng)基培養(yǎng)10 d、20 d、45 d和60 d后,株高見(jiàn)圖1 。

      由圖1可知,生根培養(yǎng)前20 d內(nèi),培養(yǎng)基濃度對(duì)幼苗株高影響差異不顯著(p<0.05),但對(duì)培養(yǎng)45 d(C)和60 d(D)的幼苗株高存在顯著影響(p<0.05)。不同的培養(yǎng)時(shí)間段,1號(hào)培養(yǎng)基幼苗株高均高于其他5種處理:10 d的株高為2.48 cm,20 d的株高為5.05 cm,45 d的株高為7.51 cm,60 d時(shí)株高達(dá)8.68 cm,生長(zhǎng)狀況最好,株高增幅顯著;其次是ck、2號(hào)和3號(hào)培養(yǎng)基;45 d和60 d幼苗株高1號(hào)培養(yǎng)基比ck分別高3.42 cm和4.02 cm。由此可見(jiàn),生根率和生根情況以及平均株高可作為綜合評(píng)價(jià)組培苗的指標(biāo)體系。在NAA基礎(chǔ)上,添加IBA和6-BA對(duì)促進(jìn)芽苗生根的影響作用較小。

      注:不同小寫(xiě)字母示處理間在0.05水平上差異顯著。下同。

      對(duì)60 d內(nèi)不同濃度生根培養(yǎng)基的組培苗的根數(shù)和根長(zhǎng)進(jìn)行方差分析,結(jié)果見(jiàn)圖2。由圖2可知,不同組培苗之間生根數(shù)和根長(zhǎng)存在一定差異。平均根數(shù)和根長(zhǎng)在不同濃度的培養(yǎng)基間的差異顯著(p<0.05)。其中1號(hào)培養(yǎng)基的平均根數(shù)13.2條,而5號(hào)培養(yǎng)基僅3.4條(圖2 A);1號(hào)培養(yǎng)基的根長(zhǎng)達(dá)2.79 cm,而5號(hào)培養(yǎng)基根長(zhǎng)僅0.8 cm(圖2 B)。因此,單一激素NAA與2種激素組合相比,前者誘導(dǎo)生根的效果明顯優(yōu)于后者。由于穿龍薯蕷地下生物量和地上生物量成正比關(guān)系,NAA濃度為0.1 mg·L-1時(shí),生根率達(dá)到峰值,株高、根數(shù)和根長(zhǎng)增幅顯著,生長(zhǎng)狀況較好。因此適宜生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.1 mg·L-1NAA。

      圖2 不同濃度的激素組合對(duì)生根數(shù)和根長(zhǎng)的影響

      2.5 瓶苗移栽

      本次試驗(yàn)選用腐質(zhì)土∶蛭石∶河沙=1∶1∶1混合物作為移栽基質(zhì),煉苗后移栽時(shí)基質(zhì)的選擇對(duì)組培苗能否成活起著重要作用。而腐質(zhì)土、蛭石和河沙的混合物是較為理想的基質(zhì),通透性與保水性較好,將基質(zhì)混合均勻且在121 ℃滅菌30 min。移栽初期,組培苗幼嫩,不適應(yīng)新環(huán)境,呈現(xiàn)萎蔫狀態(tài)。移栽14 d左右,組培苗恢復(fù)正常,并長(zhǎng)出1~2片新葉,長(zhǎng)勢(shì)良好,移栽存活率可達(dá)63.20%(見(jiàn)圖3)。

      注:A為初代培養(yǎng)芽誘導(dǎo)(MS+0.2 mg·L-1 NAA+2.0 mg·L-1 6-BA);B為第1次繼代培養(yǎng)(MS+0.2 mg·L-1 NAA+3.0 mg·L-1 6-BA);C為第2次繼代培養(yǎng) (MS+0.2 mg·L-1 NAA +3.0 mg·L-1 6-BA);D為第3次繼代培養(yǎng)(MS+0.2 mg·L-1 NAA+3.0 mg·L-1 6-BA);E為生根培養(yǎng)(1/2 MS+ 0.1 mg·L-1 NAA );F為移栽成活的試管苗。

      3 討論與結(jié)論

      3.1 討 論

      對(duì)于處于瀕危狀態(tài)的物種通過(guò)組織培養(yǎng)技術(shù)進(jìn)行大規(guī)模繁殖,利于其種質(zhì)資源的保存,但不同的物種其培養(yǎng)條件各異[13]。

      取大田栽培的穿龍薯蕷地上幼嫩帶節(jié)莖段,較難獲得無(wú)菌外植體。消毒時(shí)間的選擇也需謹(jǐn)慎,因?yàn)椴牧陷^幼嫩,若消毒時(shí)間過(guò)短,則會(huì)出現(xiàn)大面積的污染,從而失去寶貴的試驗(yàn)材料,增加成本;若消毒時(shí)間過(guò)長(zhǎng),雖可降低污染率,但同時(shí)會(huì)導(dǎo)致接入培養(yǎng)基后存活率的降低或抑制其生長(zhǎng),加重外植體死亡與褐化現(xiàn)象的發(fā)生[14]。且HgCl2毒性大,易殘留,環(huán)境污染風(fēng)險(xiǎn)高,對(duì)使用和回收要求高[15-16]。

      生長(zhǎng)素和細(xì)胞分裂素相互配合在植物離體培養(yǎng)中能夠?qū)?xì)胞的分裂與分化、形態(tài)建成、控制器官的分化均有著重要的調(diào)節(jié)作用[17],并且不同組培階段所需的外源激素種類(lèi)、濃度和配比不完全相同,對(duì)試驗(yàn)結(jié)果有相當(dāng)大的影響[18-20]。在一定濃度范圍內(nèi),細(xì)胞分裂素與生長(zhǎng)素的濃度比是關(guān)鍵指標(biāo),對(duì)芽與根的萌發(fā)與發(fā)育有重要的影響。生長(zhǎng)素與細(xì)胞分裂素比值高時(shí),會(huì)導(dǎo)致植株的膨大生長(zhǎng),減弱芽生長(zhǎng),利于生根,比值較低時(shí)相反[21],有研究甚至提出對(duì)帶芽莖段萌芽率誘導(dǎo)的比值為10時(shí),腋芽萌發(fā)率最高[22]。本研究中,細(xì)胞分裂素對(duì)芽誘導(dǎo)和芽增殖影響顯著,而生長(zhǎng)素對(duì)2個(gè)培養(yǎng)階段無(wú)明顯影響。芽誘導(dǎo)的適宜培養(yǎng)基NAA和6-BA激素濃度的比值為10。根誘導(dǎo)是植物組織培養(yǎng)過(guò)程中的關(guān)鍵環(huán)節(jié),只有誘導(dǎo)出健壯、發(fā)達(dá)的根,組培苗才能成功移栽。本次試驗(yàn)中,通過(guò)比較生根率、根數(shù)和根長(zhǎng),并結(jié)合組培苗的株高與生長(zhǎng)狀況,認(rèn)為單一激素NAA的生根效果優(yōu)于2種激素組合。

      光是植物生長(zhǎng)不可缺少的條件,光照強(qiáng)度對(duì)植物生長(zhǎng)率、葉片數(shù)量和株高有重要意義[23]。研究表明,光照強(qiáng)度低時(shí),植物會(huì)通過(guò)消耗自身的物質(zhì)來(lái)擴(kuò)大接收光能的面積,同時(shí)光合作用的速度減慢,光合作用產(chǎn)物的積累變少,不利于植物生長(zhǎng)[24]。由于光照強(qiáng)度影響光合色素合成,葉綠素含量與葉色顯著相關(guān)[25]。因此,光照強(qiáng)度對(duì)植物組培苗的影響主要體現(xiàn)在苗色變化上[26]。本研究發(fā)現(xiàn),穿龍薯蕷腋芽誘導(dǎo)的芽苗轉(zhuǎn)接到增殖培養(yǎng)基后,苗色由深綠變?yōu)闇\綠。芽苗繼代培養(yǎng)與初代培養(yǎng)相比,需要更強(qiáng)的光照,本試驗(yàn)的苗色變化可能是由光照強(qiáng)度減弱引起的,所以一個(gè)繼代周期后,選擇透光性好的培養(yǎng)瓶,芽苗接收光照更充分,苗色逐漸恢復(fù)。

      3.2 結(jié) 論

      本研究以穿龍薯蕷幼嫩帶芽莖段為外植體,通過(guò)對(duì)消毒時(shí)間、誘導(dǎo)培養(yǎng)基、繼代培養(yǎng)基和生根培養(yǎng)基激素配比進(jìn)行對(duì)比優(yōu)化,構(gòu)建莖段再生體系如下:

      1) 以0.1% HgCl2作為腋芽誘導(dǎo)外植體消毒溶液的消毒時(shí)間以5 min為宜。

      2) MS+0.2 mg·L-1NAA+2.0 mg·L-16-BA為誘導(dǎo)腋芽的適宜培養(yǎng)基。

      3) MS+0.2 mg·L-1NAA+3.0 mg·L-16-BA芽增殖分化效果好。

      4) 1/2 MS+0.1 mg·L-1NAA為適宜生根培養(yǎng)基。

      5) 腐殖土∶蛭石∶沙河=1∶1∶1作為移栽基質(zhì),幼苗成活率高。

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