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    鼻咽癌STGC3基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件分析與鑒定*

    2020-12-31 08:08:26李素云吳冬梅劉慧晴袁靖哲尹菊梅賀修勝
    解剖學(xué)雜志 2020年6期
    關(guān)鍵詞:探針元件特異性

    李素云 吳冬梅 劉慧晴 唐 磊 袁靖哲 尹菊梅 賀修勝△

    (南華大學(xué)衡陽(yáng)醫(yī)學(xué)院,1 應(yīng)用解剖與生殖醫(yī)學(xué)研究所,2 腫瘤研究所, 3 2018級(jí)臨床醫(yī)學(xué)專業(yè),4 2017級(jí)臨床醫(yī)學(xué)專業(yè),衡陽(yáng) 421001)

    鼻咽癌(nasopharyngeal carcinoma, NPC)是常見(jiàn)的頭頸部惡性腫瘤之一,起源于鼻咽部黏膜上皮。STGC3 基因是本課題組前期通過(guò)ESTs(expressed sequence tags,ESTs),采用定位候選克隆方法,對(duì)鼻咽癌LOH 3p21 區(qū)域比對(duì)分析與鑒定,所得到的鼻咽癌抑瘤基因[1]。前期研究表明,STGC3 基因在正常鼻咽和鼻咽癌組織中的表達(dá)差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,是鼻咽癌表達(dá)下調(diào)的基因,但其表達(dá)調(diào)控機(jī)制不清楚[2-7]。本研究運(yùn)用生物信息學(xué),預(yù)測(cè)STGC3 基因核心啟動(dòng)子區(qū)轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn),采用電泳遷移率變動(dòng)分析(EMSA)和染色質(zhì)免疫共沉淀(ChIP)實(shí)驗(yàn),體內(nèi)外證實(shí)與STGC3 基因啟動(dòng)子特異性結(jié)合位點(diǎn),從而鑒定出STGC3 基因表達(dá)調(diào)控的元件,以期為研究STGC3基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制提供前期基礎(chǔ)。

    1 材料和方法

    1.1 生物信息學(xué)分析軟件

    AliBaba2.1:http://www.gene-regμLation.com/pub/programs/alibaba2/index.html。TESS:http://www.cbil.upenn.edu/tess。TFSEARCH:http://mbs.cbrc.jp/research/db/TFSEARCH.html。

    1.2 細(xì)胞

    人鼻咽癌細(xì)胞系(CNE2)由本研究所保存,用10 %新生小牛血清的RPMI1640 培養(yǎng)基,置于恒溫37℃、含5% CO2飽和濕度細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。

    1.3 實(shí)驗(yàn)試劑

    RPMI1640培養(yǎng)液、胎牛血清、青霉素、鏈霉素(雙抗)購(gòu)自Gibico公司;DMSO購(gòu)自杭州四季青公司;高保真DNA聚合酶購(gòu)自Fermentas公司;DNA Marker DL2000購(gòu)自廣州美津生物公司;胰酶購(gòu)自HyClone公 司;BCA Protein Assay Kit、核蛋白抽提試劑盒、LightShift Chemiluminescent EMSA Kit、Halt Protease Inhibition Cocktail Kit購(gòu)自Pierce公司;Sp1抗體、磁場(chǎng)、ChIP試劑盒購(gòu)自Millipore公司;正電荷尼龍膜購(gòu)自Amersham公司;RNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自O(shè)mega公司;2×Taq PCR Master Mix、EB購(gòu)自Sigma公司;瓊脂糖、無(wú)水乙醇、氯仿、甲醛分析純購(gòu)自國(guó)產(chǎn)分析純公司。

    1.4 引物設(shè)計(jì)

    運(yùn)用生物信息學(xué),預(yù)測(cè)STGC3基因核心啟動(dòng)子區(qū)轉(zhuǎn)錄因子Sp1結(jié)合位點(diǎn)所在序列為-832 ~ -807 bp,采用Primer 5.0設(shè)計(jì)ChIP實(shí)驗(yàn)、PCR實(shí)驗(yàn)中轉(zhuǎn)錄因子Sp1(Sp1)所需的引物,由上海生工公司合成(表1)。

    表1 PCR 引物序列與產(chǎn)物長(zhǎng)度Tab 1 PCR primer sequence and product size

    1.5 CNE2 細(xì)胞核蛋白抽提步驟

    取呈對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞;棄培養(yǎng)液,胰酶消化,將懸液轉(zhuǎn)移至1.5 mL無(wú)酶EP管;離心:4℃、1 500 r/min、10 min,棄上清;用預(yù)冷的PBS洗細(xì)胞,同條件離心,棄上清液;重復(fù)離心1次;加冰上預(yù) 冷 的CERⅠ200 μL(含Halt Protease Inhibitor, 2 μL),輕輕振搖15 s,重懸細(xì)胞,冰上置10 min;加冰上預(yù)冷的CERⅡ11 μL,輕輕振搖5 s,冰上置1 min;振搖5s后,離心:4 ℃、13 000 r/min、 5 min;迅速轉(zhuǎn)上清,即胞質(zhì)蛋白提取物,至一潔凈的冰上預(yù)冷的EP管中,標(biāo)記后,置于-80℃冰箱備用;向沉淀中加入冰上預(yù)冷的NER100 μL(含Halt Protease Inhibitor, 1 μL),輕輕振搖15 s,重懸細(xì)胞,冰上置10 min;離心:4℃、13 000 r/min、5 min;迅速轉(zhuǎn)上清,即胞核蛋白提取物,至另一冰上預(yù)冷的無(wú)酶EP管中;BCA法測(cè)定核蛋白濃度,存于-80℃冰箱備用。

    1.6 EMSA 檢測(cè)

    制備6%非變性聚丙烯酰胺凝膠;預(yù)電泳:用0.25×TBE 緩沖液,120 V 電壓、冰浴中預(yù)電泳 1 h;DNA-蛋白結(jié)合反應(yīng):以AliBaba 2.1 預(yù)測(cè)結(jié)果為基準(zhǔn),結(jié)果顯示STGC3 基因核心啟動(dòng)子區(qū) -825 bp ~-816 bp 區(qū)域只有Sp1 轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點(diǎn),截取該區(qū)域26 bp(-932 ~-807 bp)寡核苷酸序列制作特異性探針,探針序列為:

    Wt-Sp1, 5'-AAAAAGGCCGGGCGCGGTGG CTCACG-3', Mt-Sp1, 5'- AAAAAGGCCAAGCA TGGTGGCTCACG-3', 并對(duì)Wt-Sp1 和Mt-Sp1 結(jié)合的DNA 雙鏈探針的5'-端進(jìn)行生物素標(biāo)記,生物素標(biāo)記野生型和突變型探針,以及未標(biāo)記的野生型探針均由北京微奧基因科技有限公司合成;上樣;電泳及轉(zhuǎn)膜;紫外交聯(lián):轉(zhuǎn)膜完成后,將膜取出,置于一干燥的濾紙上,溴酚藍(lán)面向上,將膜放置于紫外燈(波長(zhǎng)254 nm)下約10 cm 處,紫外交聯(lián)10 min;化學(xué)發(fā)光檢測(cè)生物素標(biāo)記的DNA。

    1.7 ChIP 分析

    體內(nèi)交聯(lián)與裂解;超聲波斷裂DNA;免疫沉淀已交聯(lián)的蛋白/DNA 復(fù)合物;洗脫蛋白/DNA 復(fù)合物與解交聯(lián)蛋白/DNA 復(fù)合物使DNA 游離;Spin Columns 洗脫DNA;PCR 擴(kuò)增,其中PCR 擴(kuò)增反應(yīng):根據(jù)Primer 5.0 設(shè)計(jì)的引物,進(jìn)行PCR 擴(kuò)增,反應(yīng)條件為95℃預(yù)變性5 min 后循環(huán),94℃變性 30 s,54℃退火50 s,72℃延伸30 s,35 個(gè)循環(huán)后于72 ℃終延伸5 min,擴(kuò)增反應(yīng)結(jié)束后,取擴(kuò)增產(chǎn)物5 μL 與1 μL 6×上樣緩沖液混勻后,于1%瓊脂糖進(jìn)行凝膠電泳,檢測(cè)擴(kuò)增片段。

    2 結(jié)果

    2.1 STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè)

    AliBaba 2.1、TESS 和TFSEARCH 3 種在線軟件,預(yù)測(cè)并分析STGC3 基因核心啟動(dòng)子-934 ~ -653 bp 區(qū)域序列內(nèi)存在的轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件。結(jié)果顯示,該基因核心啟動(dòng)區(qū)域內(nèi)存在轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件較多,綜合分析預(yù)測(cè)結(jié)果,確定以AliBaba 2.1 軟件預(yù)測(cè)結(jié)果作為本實(shí)驗(yàn)結(jié)果。如圖1 所示,在軟件默認(rèn)參數(shù)條件下,即:Pairsim to known sites:50;Mat width in bp:10;Min num of sites:4;Min mat. Conservation:75%;Sim of seq to mat:1%;Factor class level:4,結(jié)果顯示,STGC3 基因核心啟動(dòng)區(qū)域存在AP-1、Sp1、GAL4、HNF-3B、USF、C/EBPalp 等21 個(gè)相關(guān)調(diào)控元件,其中9 個(gè)為Sp1 轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)。嚴(yán)格限定其參數(shù)后(Pairsim to known sites :64 ;Min mat. Conservation :80%),結(jié)果顯示,STGC3 基因核心啟動(dòng)區(qū)域有5個(gè)轉(zhuǎn)錄相關(guān)調(diào)控元件,其中2 個(gè)為Sp1 轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)(圖2)。

    圖1 參數(shù)默認(rèn)時(shí),STGC3 基因核心啟動(dòng)區(qū)轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè)結(jié)果Fig 1 The predicted result of transcription regulatory elements in the core promoter region of STGC3 gene by default

    2.2 EMSA 鑒定STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件

    根據(jù)生物信息預(yù)測(cè)結(jié)果,STGC3 基因存在轉(zhuǎn)錄因子Sp1 結(jié)合位點(diǎn),進(jìn)行EMSA 實(shí)驗(yàn),選擇STGC3 基因核心啟動(dòng)子區(qū)中轉(zhuǎn)錄因子Sp1 結(jié)合位點(diǎn)的26 bp(-832 ~-807 bp)寡核苷酸序列,人工合成5'末端生物素辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的野生型(Biotin-Wt Sp1)和突變型(Biotin-Mt Sp1)雙鏈探針,同時(shí)合成未生物素辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的野生型(Wt Sp1)探針,未標(biāo)記的野生型探針(Wt Sp1)作為特異性競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合反應(yīng)(圖3)。將所合成的探針與實(shí)驗(yàn)所提取的CNE2 細(xì)胞核蛋白質(zhì)進(jìn)行EMSA 實(shí)驗(yàn),以確定轉(zhuǎn)錄因子Sp1 與其特異性結(jié)合位點(diǎn)是否特異性結(jié)合。結(jié)果顯示,Sp1 探針與CNE2 細(xì)胞提取的核蛋白結(jié)合,形成特異性DNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物條帶 (圖4,第2 泳道);當(dāng)加入100倍和50 倍的末端未標(biāo)記野生探針(Wt Sp1)競(jìng)爭(zhēng)性探針后,特異性DNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物條帶消失(圖4,第3 ~4 泳道);加入突變探針,未形成特異性DNA-蛋白質(zhì)復(fù)合物條帶 (圖4,第5 泳道)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明STGC3 核心啟動(dòng)子區(qū)存在的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)。

    下劃線為Sp1 核心序列;方格中為突變堿基;Wt Sp1 為未標(biāo)記的野生型探針;Biotin-Mt Sp1 為生物素標(biāo)記的突變型探針;Biotin-Wt Sp1 為生物素標(biāo)記的野生型探針(圖3)。

    圖2 嚴(yán)格限定參數(shù)后,STGC3 基因核心啟動(dòng)區(qū)的轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè)結(jié)果Fig 2 The prediction result of transcription regulatory elements in the core promoter region of STGC3 gene after strictly defining parameters

    圖3 人工合成的Sp1 寡核苷酸雙鏈探針序列Fig 3 The synthetic SP1 oligonucleotide double strand probe sequence

    2.3 ChIP 鑒定STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件

    采用ChIP 進(jìn)一步鑒定STGC3 基因核心啟動(dòng)區(qū)存在轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件。實(shí)驗(yàn)中為排除可能出現(xiàn)假陽(yáng)性或假陰性結(jié)果,實(shí)驗(yàn)分5 組,分別是陽(yáng)性對(duì)照組,即沒(méi)有用抗體處理的含有總基因DNA 的imput,陰性對(duì)照組是用IgG 處理的DNA,同時(shí)設(shè)Anti-Polymerase Ⅱ和No antibody 組排除假陽(yáng)性及假陰性,結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)錄因子Sp1 抗體實(shí)驗(yàn)組與陽(yáng)性對(duì)照Input 組、假陽(yáng)性Anti-Polymerase Ⅱ組均檢測(cè)到與目的片段大小一致的200 bp 擴(kuò)增片段,而陰性IgG 組和假陰性No antibody 組均未產(chǎn)生目的條帶(圖5)。結(jié)果表明,STGC3 基因核心啟動(dòng)子區(qū)含有轉(zhuǎn)錄因子Sp1 結(jié)合位點(diǎn),STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè)正確。

    圖4 EMSA 鑒定STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件結(jié)果Fig 4 Transcription regulatory element of idenffied by EMSA

    圖5 ChIP 鑒定STGC3 基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件Fig 5 Transcription regulatory element of STGC3 gene identified by ChIP

    3 討論

    隨著生命科學(xué)技術(shù)的迅速發(fā)展,海量信息數(shù)據(jù)庫(kù)不斷完善,生物信息學(xué)已成為當(dāng)今基因結(jié)構(gòu)及功能研究中不可缺少的重要工具之一。生物信息學(xué)是一個(gè)龐大的系統(tǒng),可以對(duì)基因組中海量調(diào)控序列數(shù)據(jù)進(jìn)行研究,如啟動(dòng)子及轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)預(yù)測(cè) 分析[8]。

    激發(fā)轉(zhuǎn)錄的不可缺少的部分是核心啟動(dòng)子,核心啟動(dòng)子區(qū)域內(nèi)通常有一些重要的調(diào)控元件[9]。前期研究采用生物信息學(xué),預(yù)測(cè)STGC3 基因的啟動(dòng)子,將啟動(dòng)子構(gòu)建報(bào)告基因載體,對(duì)報(bào)告基因表達(dá)產(chǎn)物活性進(jìn)行雙熒光素酶活性檢測(cè),確定了STGC3 基因核心啟動(dòng)子區(qū)[10]。為揭示STGC3 基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控分子機(jī)制,運(yùn)用3 種不同的在線軟件AliBaba 2.1、TESS和TFSEARCH, 對(duì)STGC3基因核心啟動(dòng)子可能存在的轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè),結(jié)果表明,當(dāng)AliBaba 2.1 軟件默認(rèn)參數(shù)時(shí)預(yù)測(cè),顯示該核心啟動(dòng)子區(qū)存在多個(gè)重要調(diào)控元件如AP-1、Sp1、GAL4、HNF-3B、USF、C/EBPalp等,且Sp1轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)最多;嚴(yán)格調(diào)整其參數(shù),結(jié)果顯示,STGC3基因核心啟動(dòng)子區(qū)存在5個(gè)轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件,其中Sp1轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)同樣最多。Sp1普遍存在于生物各種細(xì)胞與組織中,是DNA 結(jié)合蛋白,能特異性與DNA 結(jié)合位點(diǎn)結(jié)合,調(diào)控富含GC序列的細(xì)胞和病毒基因啟動(dòng)子的轉(zhuǎn)錄[11-12]。

    EMSA 和ChIP 技術(shù),是當(dāng)前研究基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件的經(jīng)典方法,從體外、體內(nèi)驗(yàn)證轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件中轉(zhuǎn)錄因子和轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)及兩者的相互作用關(guān)系。EMSA 是體外檢測(cè)蛋白質(zhì)和DNA 序列相互結(jié)合的技術(shù),最初用于DNA 結(jié)合蛋白質(zhì)與相關(guān)DNA 結(jié)合序列相互作用,可定性和定量,現(xiàn)已用于RNA 結(jié)合蛋白和特異性RNA 序列結(jié)合研究[13]。由于有些轉(zhuǎn)錄因子不具有結(jié)合的特異性,即便轉(zhuǎn)錄因子和寡核苷酸探針結(jié)合,不能說(shuō)明在體情況下轉(zhuǎn)錄因子不能和其他寡核苷酸結(jié)合,有一定的局限性。ChIP 技術(shù)是體內(nèi)檢測(cè)與特異性蛋白結(jié)合的DNA 序列,此項(xiàng)技術(shù)最大的優(yōu)點(diǎn)是在活體狀態(tài)下,檢測(cè)蛋白質(zhì)和目的DNA 結(jié)合情況,減少了體外實(shí)驗(yàn)的誤差,在活體細(xì)胞中,首先對(duì)與調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)結(jié)合的DNA 分離,通過(guò)一定的方法隨機(jī)剪切染色質(zhì),用調(diào)節(jié)蛋白抗體沉淀目的染色質(zhì),再用PCR 檢測(cè)目的DNA 片段。

    EMSA結(jié)果證實(shí),STGC3核心啟動(dòng)區(qū)內(nèi)有轉(zhuǎn)錄因子Sp1結(jié)合位點(diǎn),其結(jié)合具有特異性。ChIP實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明STGC3基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件預(yù)測(cè)與實(shí)驗(yàn)吻合。上述實(shí)驗(yàn)說(shuō)明STGC3基因核心啟動(dòng)子區(qū)有轉(zhuǎn)錄因子Sp1結(jié)合位點(diǎn),STGC3基因核心啟動(dòng)子區(qū)轉(zhuǎn)錄結(jié)合位點(diǎn)為STGC3基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件。本實(shí)驗(yàn)對(duì)STGC3基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件的鑒定,將為STGC3基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控的相關(guān)分子機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

    參與文獻(xiàn)

    [1]賀修勝, 肖志強(qiáng), 陳主初, 等.STGC3 新基因的克隆及功能初步分析[J]. 癌癥,2004, 23(10): 1110-1115.

    [2]鄧敏, 賀修勝, 羅橋,等.Tet 調(diào)控STGC3 基因表達(dá)CNE2 細(xì)胞系的建立及其功能初步研究[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2006, 33(1):39-44.

    [3]胡波, 邱青朝,賀修勝,等.雌激素對(duì)轉(zhuǎn)STGC3 基因CNE2 細(xì)胞系生長(zhǎng)增殖的影響[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2007, 34(5):538-545.

    [4]邱青朝, 胡波, 賀修勝, 等.Tet 調(diào)控STGC3 基因表達(dá)的CNE2 細(xì)胞系裸鼠成瘤實(shí)驗(yàn)性研究[J].生物化學(xué)與生物物理進(jìn)展, 2007, 34(4):359-365.

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