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    PELP1在胃癌中的致瘤作用*

    2020-11-21 03:12:18顏洪竹孫燕玲孫元鵬劉于思韋先明劉尚勤肖武漢寧志豐劉復(fù)興
    關(guān)鍵詞:克隆胃癌芯片

    顏洪竹, 孫燕玲, 吳 喆, 孫元鵬, 劉于思, 韋先明, 馬 梓, 劉尚勤, 肖武漢, 寧志豐△, 劉復(fù)興△

    1湖北醫(yī)藥學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院,十堰 442000 湖北科技學(xué)院 2基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院 3臨床醫(yī)學(xué)院,咸寧 437100 武漢大學(xué)中南醫(yī)院 4中醫(yī)科 5血液科,武漢 430070 6中國(guó)科學(xué)院水生生物研究所魚(yú)類(lèi)低氧生物學(xué)學(xué)科組,武漢 430072

    胃癌是全球最常見(jiàn)的癌癥之一,也是癌癥致死的主要原因[1]。在中國(guó),由于老齡化以及不健康的生活方式,如鹽的攝取過(guò)多、吸煙、酗酒、幽門(mén)螺桿菌感染率高等,導(dǎo)致胃癌的發(fā)病率位列腫瘤發(fā)生率第2位[2]。近年來(lái),雖然胃癌的發(fā)病機(jī)制正在被逐步闡明,治療方法也得到進(jìn)一步改善,但進(jìn)展期胃癌患者的5年生存率和總生存時(shí)間依然徘徊在較低水平,復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移仍然是胃癌患者死亡的主要原因。

    脯氨酸-谷氨酸-亮氨酸富集蛋白1(proline-,glutamic acid-,and leucine-rich protein 1,PELP1)是雌激素受體非基因組作用的調(diào)節(jié)劑和雌激素受體的共調(diào)節(jié)劑,其基因定位于17號(hào)染色體的p13.2區(qū)域,編碼長(zhǎng)度為1130氨基酸的蛋白質(zhì)。編碼的蛋白質(zhì)氨基端為10個(gè)LXXLL基序(motif)(X為任意氨基酸殘基)組成的核受體結(jié)合區(qū),羧基端為富含谷氨酸的結(jié)構(gòu)域,并含有2個(gè)富含脯氨酸的結(jié)構(gòu)域。作為多種轉(zhuǎn)錄因子的共激活因子,PELP1參與許多生理[3-5]和病理過(guò)程[6],生物學(xué)功能廣泛。研究表明,PELP1是激素依賴性腫瘤如乳腺癌[7-8]、卵巢癌[9]、子宮內(nèi)膜癌[10-11]和前列腺癌[12]的原癌基因,此外,在激素非依賴性腫瘤如腦腫瘤[13]、肺癌[14]和結(jié)直腸癌[15-16]中亦有作用。本研究探討了PELP1與胃癌的關(guān)系,現(xiàn)報(bào)道如下。

    1 材料與方法

    1.1 細(xì)胞系和培養(yǎng)方法

    人胃腺癌細(xì)胞(AGS細(xì)胞和NCI-N87細(xì)胞)購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院(中國(guó)上海)典型培養(yǎng)物保藏中心,正常人胃上皮細(xì)胞(GES-1細(xì)胞)購(gòu)自美國(guó)典型培養(yǎng)物保藏中心(Manassas,VA,美國(guó))。上述細(xì)胞均培養(yǎng)于含10%胎牛血清(Gibco公司)、100 U/mL青霉素和100 μg/ mL鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)液中,置于37℃、5%CO2的飽和濕度細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

    1.2 PELP1通路信息預(yù)測(cè)及篩選

    從Oncomine(http://www.oncomine.org)和CCLE(Cancer Cell line Encyclopaedia)獲得PELP1在不同癌癥組織、不同類(lèi)型胃癌組織以及正常胃黏膜組織中mRNA表達(dá)情況。利用Biocarta數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)人類(lèi)細(xì)胞中的PELP1通路信息并篩選出Src-Erk通路,該通路是PELP1調(diào)節(jié)雌激素受體活性的重要通路(https://cgap.nci.nih.gov/Pathways/BioCarta_Pathways)。

    1.3 組織芯片及免疫組化技術(shù)檢測(cè)PELP1蛋白在胃癌及癌旁組織的表達(dá)

    胃癌及癌旁組織芯片(tissue microarray,TMA)購(gòu)自谷歌生物公司。該芯片包括36組胃癌組織及其相應(yīng)正常癌旁胃黏膜組織標(biāo)本,并含有全部36例患者的臨床病理資料和隨訪資料。所有標(biāo)本均經(jīng)4%甲醛固定、常規(guī)組織脫水處理、石蠟包埋。采用手工組織芯片點(diǎn)樣儀制作組織芯片。制備好的芯片以PELP1多克隆抗體(稀釋度1∶100,ABclonal,貨號(hào)A13414)進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色。組織芯片的免疫組織化學(xué)染色結(jié)果由病理醫(yī)師遵循雙盲原則進(jìn)行評(píng)判,在200倍光學(xué)顯微鏡下隨機(jī)計(jì)數(shù)5個(gè)視野,統(tǒng)計(jì)陽(yáng)性細(xì)胞所占百分比。統(tǒng)計(jì)計(jì)分從兩個(gè)方面來(lái)評(píng)價(jià),①染色陽(yáng)性細(xì)胞數(shù):<5%為0分,5%~為1分,25%~為2分,>50%為3分;②染色強(qiáng)度:無(wú)細(xì)胞著色計(jì)0分,呈淡黃色著色計(jì)1分,棕黃色著色計(jì)2分,深褐色著色計(jì)3分。將每例兩項(xiàng)得分相加即為該腫瘤陽(yáng)性表達(dá)得分。最低得分為0分,最高得分為6分;≤2分為陰性或弱表達(dá),3~4分為中度陽(yáng)性,5~6分為強(qiáng)陽(yáng)性。陽(yáng)性表達(dá)包括中度陽(yáng)性及強(qiáng)陽(yáng)性。同時(shí)每張切片取5個(gè)隨機(jī)視野,通過(guò)分析軟件(Image-pro plus 6.0)測(cè)定圖片的平均吸光度作為PELP1染色強(qiáng)度,以此半定量PELP1的組織表達(dá)水平。

    1.4 Western blot檢測(cè)細(xì)胞中PELP1的蛋白表達(dá)水平

    收集細(xì)胞,使用RIPA緩沖液[1%Triton X-100,50 mmol/L Tris-HCl(pH 7.2),0.1%SDS和1 mmol/L EDTA,150 mmol/L NaCl,1%脫氧膽酸鈉]提取總蛋白,使用二辛可寧酸定量。每個(gè)蛋白樣品取20~25 μg,經(jīng)SDS-PAGE凝膠電泳分離蛋白,將蛋白條帶轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,以含有5%牛血清白蛋白的TBST緩沖液洗膜約1 h,與下列一抗在4℃下孵育過(guò)夜:兔抗-PELP1抗體(稀釋度1∶1000,ABclonal,貨號(hào)A3189),抗c-Src抗體(稀釋度1∶1000,ABclonal,貨號(hào)A0324),抗Phospho-Src-Y529抗體(稀釋度1∶500,ABclonal,貨號(hào)AP0185)和小鼠多克隆GAPDH抗體(稀釋度1∶1000,Santa Cruz,貨號(hào)SC-47724)。一抗孵育結(jié)束以TBST洗膜,室溫下將膜與辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記的山羊抗兔IgG二抗(稀釋度1∶5000,Proteintech)或山羊抗小鼠IgG二抗(稀釋度1∶20000,Proteintech)孵育,顯影。利用Fujifilm LAS4000微型發(fā)光圖像分析儀和Multi Gauge V3.0圖像分析軟件(FujiFilm公司,日本)分析顯影條帶,以GAPDH為內(nèi)參。

    1.5 實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)細(xì)胞中PELP1 mRNA表達(dá)水平

    按照文獻(xiàn)[16]的方法提取細(xì)胞RNA并進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR(qRT-PCR)。收集細(xì)胞,用Trizol試劑從細(xì)胞中提取總RNA,定量后利用M-MLV反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA。隨后以cDNA為模板,使用QuantiTectSYBR?GreenRT-PCR試劑盒進(jìn)行qRT-PCR擴(kuò)增。以GAPDH為內(nèi)參,采用2-ΔΔCt方法計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。特定引物的序列見(jiàn)表1。

    1.6 PELP1-siRNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞

    利用Ambion網(wǎng)站設(shè)計(jì)3對(duì)PELP1-siRNA(表2),分別為PELP1-siRNA1、PELP1-siRNA2、PELP1-siRNA3,其陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照購(gòu)自GenePharma公司(中國(guó)上海)。通過(guò)鑒定,選擇干擾效果最好的PELP1-siRNA1進(jìn)行后續(xù)轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)。將密度為1×106/孔的AGS細(xì)胞接種于6孔板,37℃、5%CO2培養(yǎng)24 h,直至細(xì)胞融合達(dá)到70%~90%,使用Lipofectamine 2000(Invitrogen公司)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染48 h后,收集AGS胃癌細(xì)胞為實(shí)驗(yàn)組,未作處理的AGS胃癌細(xì)胞為對(duì)照組,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。使用的PELP1-siRNA序列見(jiàn)表2。

    表1 qRT-PCR引物序列Table 1 Primers for qRT-PCR

    表2 PELP1-siRNA序列Table 2 PELP1-siRNA sequence

    1.7 CCK-8檢測(cè)細(xì)胞增殖

    將細(xì)胞以1×103/孔的密度接種在96孔板中,培養(yǎng)24 h,分組處理48 h后吸去培養(yǎng)上清,加入10 μL CCK-8(Dojindo,日本),孵育4 h,分光光度儀(Molecular Devices,澳大利亞)測(cè)量450 nm波長(zhǎng)處的吸光度值(A450 nm)。

    1.8 平板克隆形成實(shí)驗(yàn)

    將細(xì)胞接種于6 cm平板(Costar),調(diào)整密度分別為50、100、200個(gè)細(xì)胞/板,以完全培養(yǎng)液、37℃、5%CO2培養(yǎng)約7 d。PBS洗滌細(xì)胞2次,甲醇固定15 min,0.1%結(jié)晶紫染色20 min,在光學(xué)顯微鏡下(×100)計(jì)數(shù)直徑超過(guò)50 μm的細(xì)胞克隆數(shù)。以克隆形成率表示細(xì)胞的增殖能力,克隆形成率=克隆數(shù)/接種細(xì)胞數(shù)×100%。

    1.9 劃痕實(shí)驗(yàn)

    選取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞植入6孔板中,每孔5×103個(gè)細(xì)胞,以無(wú)血清培養(yǎng)液培養(yǎng)過(guò)夜。換完全培養(yǎng)液,以10 μL加樣槍頭于皿底部中間劃痕,分別于0、12、24 h在倒置相差顯微鏡下觀察劃痕區(qū)域并拍照,利用Image J軟件計(jì)算劃痕面積和傷口愈合百分比。

    1.10 EdU細(xì)胞增殖活性測(cè)定

    將處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞以1×106個(gè)細(xì)胞/孔的密度接種于6孔板中的蓋玻片上,分組處理后將細(xì)胞與完全培養(yǎng)液和50 μmol/L EdU在37℃下孵育2 h。孵育結(jié)束以預(yù)冷的PBS洗滌蓋玻片,并在室溫下以4%甲醛水溶液固定30 min。固定后的細(xì)胞用100 μL Apollo染色溶液處理30 min,隨后在0.4%Triton X-100中洗滌3次,以100 μL Hoechst33342孵育30 min,PBS洗滌細(xì)胞3次后在熒光顯微鏡(×200,×400)下采用圖像分析軟件Image-pro plus 6.0進(jìn)行拍照和熒光強(qiáng)度分析,每個(gè)樣本至少選取5個(gè)視野,取其平均值。

    1.11 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期

    將細(xì)胞在4℃的70%乙醇中固定30 min,用磷酸鹽緩沖鹽水(PBS)洗滌后,將細(xì)胞用0.1%Triton 100(Sigma),20 μg/mL RNase A(Sigma)和10 μg/ mL碘化丙啶(Sigma)染色30 min,F(xiàn)ACScan流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期。

    1.12 Transwell侵襲和遷移實(shí)驗(yàn)

    細(xì)胞用無(wú)血清培養(yǎng)液以1×106/孔接種在Transwell小室(8 μm,BD Biosciences)上室[遷移實(shí)驗(yàn)不鋪基質(zhì)膠,侵襲實(shí)驗(yàn)用基質(zhì)膠(BD biosciences)填充上室的底部],下室中加入含有10%FBS的RPMI 1640培養(yǎng)液500 μL,培養(yǎng)16~24 h,用棉簽除去未遷移或侵入孔的細(xì)胞,固定膜下表面的遷移細(xì)胞,0.1%結(jié)晶紫染色。顯微鏡下取5個(gè)不同視野計(jì)數(shù)膜底部的細(xì)胞,并計(jì)算平均值。

    1.13 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    2 結(jié)果

    2.1 PELP1在人胃癌組織中顯著表達(dá)上調(diào)

    首先利用Oncomine數(shù)據(jù)庫(kù)評(píng)估不同癌癥組織、不同類(lèi)型胃癌組織以及正常胃黏膜組織中PELP1 mRNA表達(dá)情況(圖1),結(jié)果表明,相對(duì)于正常胃黏膜組織,PELP1 mRNA在胃癌組織中顯著表達(dá)上調(diào)。接著我們利用組織芯片對(duì)36例胃癌患者的胃癌組織及癌旁正常胃黏膜組織中PELP1的表達(dá)進(jìn)行免疫組織化學(xué)染色及半定量分析,結(jié)果(圖2)表明,PELP1在胃癌組織中的表達(dá)顯著高于癌旁組織[平均吸光度值(0.346±0.017)vs.(0.235±0.012),P<0.05]。

    A:PELP1 mRNA在不同癌組織中的表達(dá);B1~B4:PELP1 mRNA在正常胃組織與不同類(lèi)型胃癌組織中的表達(dá)圖1 Oncomine數(shù)據(jù)庫(kù)評(píng)估不同癌癥組織、不同類(lèi)型胃癌組織以及正常胃黏膜組織中PELP1 mRNA表達(dá)Fig.1 Expression of PELP1 mRNA in different cancer tissues,different types of gastric cancer tissues and normal gastric mucosa tissues evaluated by Oncomine database

    A:癌旁胃黏膜組織;B:胃癌組織圖2 免疫組織化學(xué)染色檢測(cè)組織芯片中胃癌組織及癌旁正常胃黏膜組織中PELP1的表達(dá)Fig.2 Detection of the expression of PELP1 in gastric cancer tissues and normal gastric mucosa tissues adjacent to cancer by immunohistochemical staining

    2.2 PELP1表達(dá)與胃癌患者臨床病理特征及預(yù)后的關(guān)系

    將組織芯片提供的患者臨床病理資料與其胃癌組織PELP1表達(dá)情況進(jìn)行相關(guān)分析(表3),結(jié)果提示胃癌組織中PELP1的表達(dá)與腫瘤分期和分級(jí)正相關(guān)(均P<0.05),而與患者年齡、性別、腫瘤大小均無(wú)明顯相關(guān)。

    為了明確PELP1表達(dá)與胃癌預(yù)后之間的關(guān)系,進(jìn)一步分析來(lái)自O(shè)ncomine的生物信息學(xué)數(shù)據(jù)。生存分析結(jié)果表明,PELP1表達(dá)水平較低患者的總生存期(overall survival,OS)優(yōu)于PELP1表達(dá)水平較高的患者(圖3A)。Box圖數(shù)據(jù)進(jìn)一步顯示PELP1水平與胃癌患者的腫瘤分級(jí)密切相關(guān)(圖3B)。對(duì)組織芯片提供的36例胃癌患者的臨床隨訪資料進(jìn)行生存期分析,結(jié)果也提示PELP1表達(dá)較低的患者有更長(zhǎng)的總生存期(圖3C)。

    A:利用Oncomine數(shù)據(jù)庫(kù)資料生成的生存曲線;B:利用Oncomine數(shù)據(jù)庫(kù)獲得胃癌等級(jí)箱形圖顯示PELP1的表達(dá)與腫瘤分級(jí)的關(guān)系;C:根據(jù)組織芯片提供的36例胃癌患者臨床隨訪資料繪制的生存曲線圖3 PELP1表達(dá)與胃癌患者生存預(yù)后的關(guān)系Fig.3 Correlation of PELP1 expression and prognosis of gastric cancer patients

    2.3 PELP1在不同胃細(xì)胞系中的表達(dá)

    通過(guò)CCLE數(shù)據(jù)庫(kù)得到PELP1 mRNA在不同胃細(xì)胞系中的表達(dá)情況(圖4)。進(jìn)一步選擇胃腺癌細(xì)胞系A(chǔ)GS、NCI-N87以及正常人胃上皮細(xì)胞GES-1,以Western blot和qRT-PCR分別檢測(cè)其中PELP1蛋白和mRNA的表達(dá),結(jié)果表明AGS細(xì)胞中PELP1的蛋白和mRNA表達(dá)均較正常胃上皮細(xì)胞GES-1顯著升高(圖5)。

    表3 利用組織芯片資料分析PELP1表達(dá)與胃癌 患者臨床病理特征的關(guān)系(例)Table 3 The relationship between PELP1 expression and clinicopathological characteristics of gastric cancer patients using tissue microarray data(n)

    圖4 CCLE數(shù)據(jù)庫(kù)中PELP1在不同胃細(xì)胞系的表達(dá)Fig.4 Expression of PELP1 mRNA in different gastric cell lines in CCLE database

    A:Western blot檢測(cè)PELP1蛋白表達(dá);B:qRT-PCR檢測(cè)PELP1 mRNA表達(dá),**P<0.01圖5 PELP1在正常胃上皮細(xì)胞及不同胃癌細(xì)胞株中的表達(dá)Fig.5 Detection of PELP1 expression in normal gastric epithelial cells and different gastric cancer cell lines

    2.4 沉默PELP1在體外抑制胃癌細(xì)胞的生長(zhǎng)、遷移和侵襲

    為確定PELP1的表達(dá)變化對(duì)胃癌細(xì)胞生長(zhǎng)、遷移和侵襲等生物學(xué)特征的影響,我們?cè)O(shè)計(jì)合成了3個(gè)PELP1-siRNA干擾AGS細(xì)胞中PELP1的表達(dá),其中PELP1-siRNA1干擾效率最高,Western blot和qRT-PCR結(jié)果均顯示PELP1-siRNA1轉(zhuǎn)染可顯著下調(diào)AGS細(xì)胞中PELP1的表達(dá)(圖6)。

    CCK-8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,敲低PELP1表達(dá)的AGS細(xì)胞(實(shí)驗(yàn)組,PELP1-siRNA組)較未轉(zhuǎn)染的AGS細(xì)胞(對(duì)照組,PELP1-control組)細(xì)胞增殖明顯減少(P<0.01,圖7);流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)顯示實(shí)驗(yàn)組S期細(xì)胞占比顯著高于對(duì)照組(P<0.05,圖8),提示PELP1敲低可阻止細(xì)胞周期從S期進(jìn)展到M期;EdU細(xì)胞增殖檢測(cè)的結(jié)果顯示實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞平均熒光強(qiáng)度較對(duì)照組降低(P<0.05,圖9),提示敲低PELP1表達(dá)后AGS細(xì)胞DNA復(fù)制減緩、增殖活性降低;平板克隆實(shí)驗(yàn)同樣證實(shí)敲低PELP1的表達(dá)抑制AGS細(xì)胞的增殖(圖10)。

    A:Western blot檢測(cè)siRNA轉(zhuǎn)染后PELP1的蛋白表達(dá);B:qRT-PCR檢測(cè)siRNA轉(zhuǎn)染后PELP1 mRNA的表達(dá),與對(duì)照組(PELP1-control)比較,**P<0.01圖6 PELP1-siRNA干擾AGS細(xì)胞中PELP1的表達(dá)Fig.6 Expression of PELP1 in AGS cells interfered by PELP1-siRNA

    劃痕實(shí)驗(yàn)顯示敲低PELP1表達(dá)抑制了AGS細(xì)胞的遷移(圖11);Transwell細(xì)胞遷移和侵襲實(shí)驗(yàn)也證明敲低PELP1表達(dá)減弱了AGS細(xì)胞的遷移和侵襲能力(圖12)。

    與對(duì)照組(PELP1-control)比較,**P<0.01圖7 CCK-8實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞增殖Fig.7 Detection of cell proliferation by CCK-8

    2.5 PELP1靶向Src、PI3K和Erk

    利用Biocarta數(shù)據(jù)庫(kù)預(yù)測(cè)人類(lèi)細(xì)胞中的PELP1通路信息并篩選出Src-Erk通路。通過(guò)siRNA敲降A(chǔ)GS細(xì)胞中PELP1表達(dá)后,采用qRT-PCR和Western blot檢測(cè)Src-Erk通路相關(guān)信號(hào)分子的表達(dá)。結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞c-Src和p-Src的蛋白表達(dá)水平降低(圖13A),c-Src、PI3K和Erk的mRNA表達(dá)水平也較對(duì)照組明顯降低(均P<0.01,圖13B、C、D)。

    A:PELP1-siRNA組流式代表圖;B:PELP1-control組流式代表圖;C:細(xì)胞周期各時(shí)期細(xì)胞占比直條圖,與對(duì)照組(PELP1-control)比較,*P<0.05圖8 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期Fig.8 Cell cycle analysis by flow cytometry

    A:熒光顯微鏡下代表圖;B:平均熒光強(qiáng)度直條圖,與對(duì)照組(PELP1-control)比較,*P<0.05圖9 EdU細(xì)胞增殖活性測(cè)定Fig.9 Detection of EdU cell proliferation

    ①接種50個(gè)細(xì)胞;②接種100個(gè)細(xì)胞;③接種200個(gè)細(xì)胞;A:不同接種密度的平板克隆形成情況;B:克隆形成率統(tǒng)計(jì),與對(duì)照組(PELP1-control)比較,**P<0.01圖10 平板克隆形成實(shí)驗(yàn)Fig.10 Colony formation assay

    A:倒置相差顯微鏡下劃痕典型代表圖(×100);B:劃痕面積統(tǒng)計(jì);C:傷口愈合百分比統(tǒng)計(jì)圖11 細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn)Fig.11 Wound healing assay

    與對(duì)照組(PELP1-control)比較,**P<0.01圖12 Transwell檢測(cè)細(xì)胞遷移和侵襲Fig.12 Detection of cell migration and invasion by Transwell assay

    A:Western blot檢測(cè)PELP1、c-Src、p-Src-Y529的表達(dá);B~D:qRT-PCR檢測(cè)c-Src(B)、PI3K(C)和Erk(D)的mRNA表達(dá)圖13 敲降A(chǔ)GS細(xì)胞中PELP1表達(dá)后其下游通路基因的表達(dá)變化Fig.13 Changes of downstream gene expression after knockdown of PELP1 in AGS cells

    3 討論

    胃癌是在全球范圍內(nèi)最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一[17]。雌激素受體(ERs)是類(lèi)固醇激素受體,研究證實(shí)其可調(diào)節(jié)胃癌的許多生理和病理過(guò)程[18-19],但是ERs在胃癌進(jìn)展過(guò)程中的確切作用以及胃癌患者中雌激素受體失調(diào)的臨床相關(guān)性尚未完全闡明。在本研究中,我們探討了雌激素共調(diào)節(jié)因子PELP1在胃癌惡性生物學(xué)行為中的作用。我們發(fā)現(xiàn)PELP1在胃癌細(xì)胞的增殖、侵襲和轉(zhuǎn)移中起促進(jìn)作用。我們的研究結(jié)果為胃癌的發(fā)病機(jī)制提供了獨(dú)特的視角[20-22]。

    PELP1是一種原癌基因,可作為一種關(guān)鍵的ERα共調(diào)節(jié)蛋白,促進(jìn)癌細(xì)胞的生長(zhǎng)[23-25]。早期研究證實(shí)PELP1在激素依賴性癌癥中過(guò)度表達(dá),Cortez等[26]利用轉(zhuǎn)基因小鼠在其乳腺中過(guò)表達(dá)PELP1,發(fā)現(xiàn)可激發(fā)體內(nèi)致癌潛力及有助于乳腺癌的進(jìn)展。隨后的研究發(fā)現(xiàn)PELP1致癌信號(hào)傳導(dǎo)涉及多種癌癥的進(jìn)展,包括乳腺癌、子宮內(nèi)膜癌、卵巢癌、唾液腺癌、前列腺癌、肺癌、胰腺癌和結(jié)腸癌等[11,15-16,27-32]。新近研究表明,ERs存在于胃腫瘤中,尤其是ERβ[33]。此外,對(duì)1162名侵襲性乳腺癌患者的組織活檢結(jié)果證明PELP1表達(dá)是特異性乳腺癌生存不佳的獨(dú)立預(yù)測(cè)因子,其表達(dá)可用于評(píng)估ESR1陽(yáng)性乳腺癌患者的預(yù)后[34]。PELP1表達(dá)也被證明對(duì)轉(zhuǎn)移性三陰性乳腺癌(TNBC)具有診斷價(jià)值,腫瘤中PELP1/ Ki-67雙高表達(dá)是預(yù)測(cè)三陰性乳腺癌患者預(yù)后不良的獨(dú)立因素[15,35]。對(duì)卵巢腫瘤組織陣列芯片的研究表明,PELP1在60%的卵巢腫瘤中過(guò)度表達(dá)2~3倍[29]。PELP1還被認(rèn)為可能在星形細(xì)胞腫瘤的進(jìn)展中起作用,其表達(dá)水平可作為預(yù)測(cè)預(yù)后的生物標(biāo)志物[13]。PELP1也被證實(shí)在非癌癥疾病如小兒哮喘發(fā)病中發(fā)揮重要作用[36]。本研究從多個(gè)角度證明了PELP1在胃癌中的致癌作用。

    腫瘤侵襲和轉(zhuǎn)移的過(guò)程復(fù)雜,詳細(xì)的分子機(jī)制仍有待闡明[37]。在非基因組途徑中,新出現(xiàn)的證據(jù)表明ERs與幾種途徑中的一些其他信號(hào)分子相互作用,例如PI3K/Akt或絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號(hào)傳導(dǎo)途徑。ERα和ERβ在基因組和非基因組途徑中發(fā)揮不同的作用,其中ERβ在亞飽和激素水平下作為ERα轉(zhuǎn)錄活性的反式顯性抑制劑/競(jìng)爭(zhēng)劑起作用[38]。此外,最新研究表明,乳腺癌細(xì)胞中的c-Src可作為ERα介導(dǎo)的雙相雌激素信號(hào)傳導(dǎo)途徑和STAT5/EGFR途徑的轉(zhuǎn)導(dǎo)信號(hào)[39]。據(jù)報(bào)道ERα也可與Src/Shc/EGFR復(fù)合物相互作用[40-41]??梢?jiàn)c-Src在乳腺癌中的作用方式與ERα陽(yáng)性胃癌相似。

    本研究表明,在胃癌細(xì)胞系中沉默PELP1表達(dá)后,其遷移和侵襲性減弱,說(shuō)明PELP1在胃癌的遷移和侵襲中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)沉默PELP1表達(dá)后Src-Erk通路相關(guān)信號(hào)分子表達(dá)降低,推測(cè)PELP1在胃癌中的作用機(jī)制可能與Src-Erk通路有關(guān),其具體的分子機(jī)制將是我們下一步的研究方向。

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